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Kit d’expression Pichia EasySelect™

The EasySelect™ Pichia Expression Kit provides all needed components for protein production in the yeast Pichia pastoris.
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RéférenceQuantité
K1740011 kit
Référence K174001
Prix (EUR)
3 230,00
Each
Quantité:
1 kit
Prix (EUR)
3 230,00
Each
Le kit d’expression EasySelect™ Pichia contient l’ensemble des composants nécessaires à la production de protéines dans les levures Pichia pastoris. Le kit EasySelect™ contient des souches de levures Pichia, des vecteurs d’expression et des réactifs qui permettent la transformation des cellules Pichia. La version avec l’antibiotique Zéocine™ permet de sélectionner facilement un nombre élevé de copies des variants transformés.

Avantages du système d’expression Pichia pastoris :
• Cultivez des cellules Pichia aussi facilement que E. coli
• Obtenez une densité cellulaire plus élevée qu’avec d’autres systèmes d’expression microbienne.
• Générez plus de protéines par cellule que d’autres systèmes d’expression microbienne.
• Profitez du traitement des protéines eucaryotes, du repliement des protéines et des modifications post-traductionnelles.
• Passez facilement de flacons agitateurs à une fermentation à l’échelle industrielle.

Un système d’expression de protéines éprouvé
Au cours de ces 30 dernières années, la levure Pichia pastoris a été utilisée par les laboratoires et les industries du monde entier pour produire des centaines de protéines différentes de nombreuses espèces, y compris humaines (Réf. 1, 2, 3). Pichia pastoris peut être cultivée aussi facilement que des bactéries (E. coli) ou des levures (Saccharomyces cerevisiae), mais offre de nombreux avantages par rapport à ces systèmes (Réf. 4). Pichia pastoris peut atteindre des densités cellulaires beaucoup plus élevées que les bactéries ou d’autres levures. Pichia pastoris est capable de se développer sur du méthanol comme seule source de carbone, ce qui permet de passer à des niveaux industriels de manière relativement peu coûteuse.

Le pouvoir du promoteur AOX1
Le kit d’expression EasySelect™ Pichia utilise le promoteur du gène d’alcool-oxydase Pichia 1 (AOX1) pour stimuler la production de votre protéine. Pichia pastoris est capable de se développer sur le méthanol comme seule source de carbone. Lorsqu’il se développe sur du méthanol comme seule source de carbone, l’ARMm AOX1 représente jusqu’à 5 % de l’ARNm total et l’enzyme AOX1 peut représenter jusqu’à 30 % du poids cellulaire (Réf. 5).

Le système d’expression EasySelect™ Pichia est fourni avec les vecteurs pPICZ et pPICZα. Les vecteurs pPICZ et pPICZα contiennent un site de clonage multiple (MCS) et permettent l’insertion de votre gène sous le contrôle du promoteur AOX1. Les vecteurs pPICZ et pPICZα contiennent également un “tag” c-Myc pour faciliter la détection et un “tag” polyhistidine (6xHis) pour faciliter la détection et la purification de votre protéine.

Étant donné que Pichia pastoris sécrète naturellement peu de protéines, vous pouvez utiliser la séquence de signalisation extracellulaire dans les vecteurs pPICZα pour forcer la sécrétion de votre protéine dans le milieu de culture afin de simplifier la purification en aval.

Intégration d’un nombre élevé de copies avec l’antibiotique Zéocine™ Antibiotique
Le kit d’expression EasySelect™ Pichia utilise l’antibiotique Zéocine™ pour sélectionner les cellules Pichia transformées. Les vecteurs pPICZ et pPICZα contiennent le gène de bléomycine de Streptoalloteichus hindustanus (Sh ble) qui confère une résistance à l’antibiotique Zéocine™. Les vecteurs pPICZ et pPICZα peuvent être intégrés de manière stable au génome Pichia. En augmentant la concentration en antibiotique Zéocine™, vous pouvez facilement sélectionner les clones qui présentent le plus grand nombre d’intégrants et les niveaux d’expression protéique les plus élevés.

Le kit d’expression EasySelect™ Pichia contient les composants suivants :
• Stabilisez vos flacons de souches Pichia pastoris et E. coli pour le démarrage de vos cultures.
• Solutions qui permettent de créer des cellules Pichiaaptes à la transformation.
• Vecteurs pPICZ et pPICZα pour la fusion de votre gène avec le promoteur AOX1.
• Amorces de séquençage pour confirmer l’insertion de votre gène dans les vecteurs pPICZ.
• Antibiotique Zéocine™ pour sélectionner les cellules Pichia transformées.

À des fins de recherche uniquement. Non destiné à être utilisé lors de procédures de diagnostic.

Liens connexes
Affichez l’insert de produit pour les vecteurs pPICZ A, B, C (PDF).
Affichez l’insert du produit pour les vecteurs pPICZα A, B, C (PDF).
Affichez l’insert du produit pour l’antibiotique Zeocin™ (PDF).
En savoir plus sur l’utilisation de Pichia pastoris dans les protocoles Pichia, 1re édition disponible chez Invitrogen.
En savoir plus sur les autres systèmes d’expression Pichia Invitrogen.

Références

1. Cereghino JL, Cregg JM. Expression de protéines hétérologues dans la levure méthylotrophe Pichia pastoris. FEMS Microbiol Rev. 2000 Jan;24(1):45-66. [PubMed]
2. Cereghino GP, Cereghino JL, Ilgen C, Cregg JM. Production de protéines recombinantes dans des cultures fermenteuses de la levure Pichia pastoris. Curr Opin Biotechnol. Août 2002;13(4):329-32. [PubMed]
3. Cregg JM. Introduction: distinctions between Pichia pastoris and other expression systems. Methods Mol Biol. 2007;389:1-10. [PubMed]
4. Cregg JM, Tolstorukov I, Kusari A, Sunga J, Madden K, Chappell T. Expression in the yeast Pichia pastoris. Methods Enzymol. 2009;463:169-89. [PubMed]
5. Cregg JM, Madden KR, Barringer KJ, Thill GP, Stillman CA. Functional characterization of the two alcohol oxidase genes from the yeast Pichia pastoris. Mol Cell Biol. 1989 Mar;9(3):1316-23. [PubMed]
Usage exclusivement réservé à la recherche. Ne pas utiliser pour des procédures de diagnostic.
Spécifications
Résistance aux antibiotiques des bactériesZéocine™ (ZeoR)
Souche bactérienne ou de levuresGS115, KM71H, X-33
Méthode de clonageEnzyme de restriction / MCS
Mécanisme d’expressionExpression à base de cellules
Système d’expressionLevures
À utiliser avec (application)Expression de protéines
Gamme de produitsEasySelect
Type de produitKit d’expression
Marqueur de protéine“Tag” his (6x), “tag” d’épitope c-Myc
Quantité1 kit
Agent de sélection (eucaryotique)Zéocine
Type de celluleCellules de levure
FormatKit
AccélérateurAOX1
EspècesP. pastoris
VectorpPIC
Unit SizeEach
Contenu et stockage
Le kit d’expressin EasySelect Pichia inclut 20 µg de chacun des plasmides pPICZ A, B, C et pPICZα A, B et C ; des souches de Pichia pastoris X-33 (de type sauvage), GS115 (his4), KM71H (arg4 aox1::ARG4) et des souches de contrôle pour l’expression intracellulaire et inductible ; 250 mg d’antibiotique Zéocine™ ; un milieu (YP et YNB), un kit de transformation EasyComp™ Pichia, 2 µg de chaque amorce de séquençage 5´ AOX1, AOX1 et à α-facteur. Les vecteurs pPICZ et pPICZα sont également disponibles séparément. Un contrôle d’expression positive lacZ est fourni avec le pPICZ.

Stocker les souches à +4°C. Stockage des vecteurs et amorces à -20°C. La stabilité de tous les composants est garantie pendant 6 mois lorsque ceux-ci sont correctement stockés.

Foire aux questions (FAQ)

When selecting for blasticidin-resistant transformants in the X-33 strain using pPIC6/pPIC6α vectors, why do I get large and small colonies on YPD plates containing 300 µg/ml blasticidin?

Generally, large colonies represent transformants containing pPIC6/pPIC6α integrants, while small colonies represent transformants containing pPIC6/pPIC6α non-integrants. These non-integrants have transduced the pPIC6/pPIC6α plasmid, and therefore, exhibit a low level of blasticidin resistance in the initial selection process. Upon subsequent screening, these non-integrant transformants do not retain blasticidin resistance.

When choosing a blasticidin-resistant transformant for your expression studies, we recommend that you pick blasticidin-resistant colonies from the initial transformation plate and streak them on a second YPD plate containing the appropriate concentration of blasticidin. Select transformants that remain blasticidin-resistant for further studies.

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My transformation is not working. Do you have any suggestions?

Here are some suggestinos:

- Make sure that you have harvested cells during log-phase growth (OD <1.0 generally).
- If electroporation is being used, see the electroporator manual for suggested conditions. Vary electroporation parameters if necessary.
- Use more DNA.
- Use freshly made competent cells.
- If the LiCl transformation method is being used, try boiling the carrier DNA.

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My spheroplasting of Pichia worked twice, but hasn't worked since. The OD of the culture simply does not drop.

Here are some things to consider:

- If the OD of cells that are used is too high, they will not spheroplast. Do not overgrow cells.
- Do not use old cells and make sure that they are in log phase of growth.
- Make sure to mix zymolyase well before using. Zymolyase is more of a suspension than a solution.
- Make the PEG solution fresh each time and check the pH.

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What are the different kinds of media used for culturing Pichia pastoris and S. cerevisiae?

Following are the rich and minimal media used for culturing Pichia pastoris and S. cerevisiae:

Rich Media:
S. cerevisiae and Pichia pastoris
YPD (YEPD): yeast extract, peptone, and dextrose
YPDS: yeast extract, peptone, dextrose, and sorbitol

Pichia pastoris only
BMGY: buffered glycerol-complex medium
BMMY: buffered methanol-complex medium

Minimal Media (also known as drop-out media):
S. cerevisiae
SC (SD): Synthetic complete (YNB, dextrose (or raffinose or galactose), and amino acids)

Pichia pastoris
MGY: minimal glycerol medium
MD: minimal dextrose
MM: minimal methanol
BMGH: buffered minimal glycerol
BMMH: buffered minimal methanol

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Is there a recommended protocol for fermentation using constitutive expression vectors such as pGAPZ?

Use the following high cell density protocol for pGAP clones. Feed carbon until the desired density is reached (300 to 400 g/L wet cell weight (WCW)). If the protein is well-behaved in the fermenter, increase to 300-400 g/L WCW as with methanol inducible clones. These densities can be reached in less than 48 hours of fermentation. We have fermented constitutive expressers on glycerol using these protocols with good results. Some modifications to the Fermentation Basal Salts Medium that you might want to make are:

1) Substitute 2% dextrose for the 4% glycerol in the batch medium.
2) Substitute 40% dextrose for the 50% glycerol in the fed-batch medium.
3) Feed the 40% dextrose at 12 mL/L/hr (Jim Cregg has published data on expression using several carbon sources as substrates; dextrose gave the highest levels of expression).
4) Yeast extract and peptone may be added to the medium for protein stability.

One warning: If you are working with His- strains, they remain His- after transformation with pGAPZ. Fermentation in minimal medium will require addition of histidine to the fermenter.

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Citations et références (10)

Citations et références
Abstract
Fas ligand deficiency in HIV disease.
Authors:Sieg S, Smith D, Yildirim Z, Kaplan D
Journal:Proc Natl Acad Sci U S A
PubMed ID:9159165
'Apoptosis is postulated to be involved as an anti-viral immune mechanism by killing infected cells before viral replication has occurred. The Fas-Fas ligand interaction is a powerful regulator of T cell apoptosis and could potentially act as a potent anti-viral immune mechanism against T cell tropic virus such as human ... More
A composite Ets/Pit-1 binding site in the prolactin gene can mediate transcriptional responses to multiple signal transduction pathways.
Authors:Howard PW, Maurer RA
Journal:J Biol Chem
PubMed ID:7673116
'Binding sites for the tissue-specific transcription factor, Pit-1, are required for basal and hormonally induced prolactin gene transcription. Although Pit-1 is phosphorylated in response to several signaling pathways, the mechanism by which Pit-1 contributes to hormonal induction of gene transcription has not been defined. Recent reports suggest that phosphorylation of ... More
Expression and secretion of a biologically active glycoprotein hormone, ovine follicle stimulating hormone, by Pichia pastoris.
Authors:Fidler AE, Lun S, Young W, McNatty KP
Journal:J Mol Endocrinol
PubMed ID:9845673
'The methylotrophic yeast, Pichia pastoris, has been used to co-express recombinant genes formed by fusion of the mating factor-alpha (MFalpha) leader and ovine follicle stimulating hormone (oFSH) alpha and beta subunit coding sequences. Pichia strains carrying single copies of the two fusion genes secreted recombinant oFSH (roFSH) to concentrations of ... More
Improved tumour targeting by disulphide stabilized diabodies expressed in Pichia pastoris.
Authors:FitzGerald K, Holliger P, Winter G,
Journal:Protein Eng
PubMed ID:9488147
'Diabodies are dimeric antibody fragments held together by associated heavy and light chain variable domains present on different polypeptide chains. To improve their stability we have introduced cysteine residues into the V-domains to promote the disulphide crosslinking of the dimer. A crosslinked bivalent diabody against carcinoembryonic antigen (CEA) and a ... More
High-level expression of recombinant Aplysia ADP-ribosyl cyclase in offhia pastoris by fermentation.
Authors:Munshi C, Lee HC
Journal:Protein Expr Purif
PubMed ID:9325145
'Cyclic ADP-ribose (cADPR), a Ca2+ mobilizing cyclic nucleotide derived from NAD+, is rapidly emerging as an endogenous modulator of Ca2(+)- induced Ca2+ release mechanisms in various cellular systems. ADP ribosyl cyclase, first isolated from the marine invertebrate Aplysia californica, cyclizes NAD+ to cADPR. In this study we have utilized the ... More