Zero Blunt™ PCR Cloning Kit
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Zero Blunt™ PCR Cloning Kit

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RéférenceQuantité
K27002020 réactions
K27004040 réactions
Référence K270020
Prix (EUR)
548,65
Online Exclusive
584,00
Économisez 35,35 (6%)
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Quantité:
20 réactions
Prix (EUR)
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Le kit de clonage de PCR Zero Blunt™ permet de cloner facilement et efficacement (>80 %) les produits de PCR aux extrémités franches, qui ont été amplifiés par des ADN polymérases thermostables à activité correctrice. Le kit de clonage de PCR Zero Blunt™ s’appuie sur le vecteur de clonage multifonctions PCR™-Blunt et la ligase d’ADN ExpressLink™ T4 de façon à générer à température ambiante et en cinq minutes un produit de ligature.

Caractéristique du kit Zero Blunt™ Cloning™ avec vecteur PCR™-Blunt :
Rapide et pratique—ligature en 5 minutes à température ambiante
Efficacité—le gène ccdB comme sélecteur positif permet d’obtenir >80 % de clones avec le bon insert
Flexible—résistance à la kanamycine ou à la Zeocin™, offrant ainsi le choix de l’antibiotique souhaité

Le vecteur pCR™-Blunt fournit :
• Sites EcoR I encadrant le site d’insertion du produit de PCR, pour une excision des inserts
• Site promoteur / amorce T7 pour la transcription et le séquençage de l’ARN in vitro
• Sites d’amorces sens et antisens M13 pour le séquençage ou la sélection PCR

Comment fonctionne le clonage par PCR Zero Blunt™
Le kit de clonage de PCR Zero Blunt™ a été conçu pour cloner des fragments de PCR aux extrémités franches (ou tout fragment d’ADN aux extrémités franches) avec un faible fond de non recombinants. Le vecteur PCR™-Blunt contient le gène létal E. coliccdB fusionné à l’extrémité carboxylique du fragment LacZα (Bernard et al., 1994). La ligature d’un fragment de PCR aux extrémités franches perturbe l’expression du gène de fusion lacZα-ccdB, permettant seulement la croissance des recombinants positifs après transformation. Les cellules contenant un vecteur non-recombinant sont tuées lorsque le mélange de transformation est plaqué.

Configurations du kit
Le kit de clonage de PCR Zero Blunt™ est disponible dans plusieurs configurations : avec les cellules chimiquement compétentes One Shot™ TOPO10 E. coli (K2700-20 et K2700-40) et sans les cellules chimiquement compétentes (K2750-20 et K2750-40) dans des configurations de kits à 20 ou 40 réactions.
Usage exclusivement réservé à la recherche. Ne pas utiliser pour des procédures de diagnostic.
Spécifications
Souche bactérienne ou de levuresTOP10
Méthode de clonageBlunt PCR
Gamme de produitsZero Blunt
Type de produitKits de clonage PCR
AccélérateurT7
Quantité20 réactions
VecteurVecteurs de clonage d’ADN Blunt
FormatKit
Unit SizeEach
Contenu et stockage
Les kits de clonage par PCR Zero Blunt™ contiennent : un vecteur PCR™-Blunt linéarisé, une ligase d’ADN T4 ExpressLink™, 5X tampons de ligase d’ADN T4 ExpressLink™, un modèle de contrôle, des dNTPs, de l’eau stérile et des amorces directes et inverses M13. Les kits cellulaires compétents contiennent des cellules d’E. coli chimiquement compétentes One Shot™, un milieu S.O.C. et un plasmide de contrôle superenroulé.

Stockez les cellules d’E. coli One Shot™ à -80°C. Conserver tous les autres composants à -20°C. La stabilité de tous les réactifs est garantie pendant 6 mois, sous réserve d’une bonne conservation.

Foire aux questions (FAQ)

What is the best molar ratio of PCR product:vector to use for TOPO TA cloning? Is there an equation to calculate the quantity to use?

We suggest starting with a molar ratio of 1:1 (insert:vector), with a range of 0.5:1 to 2:1. The quantity used in a TOPO cloning reaction is typically 5-10 ng of a 2 kb PCR product.

Equation:

length of insert (bp)/length of vector (bp) x ng of vector = ng of insert needed for 1:1 (insert:vector ratio)

What is the best ratio of insert:vector to use for cloning? Is there an equation to calculate this?

The optimal ratio is 1:1 insert to vector. Optimization can be done using a ratio of 0.5-2 molecules of insert for every molecule of the vector.

Equation:

length of insert (bp)/length of vector (bp) x ng of vector = ng of insert needed for 1:1 insert:vector ratio

I'm seeing a lot of vector-only colonies when I try to perform a negative control reaction using vector only (no insert) for a TOPO reaction. Is my TOPO vector re-ligating?

Using the vector only for transformation is not a recommended negative control. The process of TOPO-adaptation is not a 100% process, therefore, there will be “vector only” present in your mix, and colonies will be obtained.

I'm trying to clone in my phosphorylated PCR product into a TOPO vector, and I'm getting no colonies. However, when I clone the same product into a TA vector, everything works perfectly. Why is this?

Phosphorylated products can be TA cloned but not TOPO cloned. This is because the necessary phosphate group is contained within the topoisomerase-DNA intermediate complex of the vector. TOPO vectors have a 3' phosphate to which topoisomerase is covalently bound and a 5' phosphate. Non-TOPO linear vectors (TA and Blunt) have a 3' OH and a 5' phosphate. Phosphorylated products should be phosphatased (CIP) before TOPO cloning.

I'm able to get a lot of colonies, however, none contain my insert of interest. What should I do?

You may be cloning in an artifact. TA and TOPO Cloning are very efficient for small fragments (< 100 bp) present in certain PCR reactions. Gel-purify your PCR product using either a silica-based DNA purification system or electroelution. Be sure that all solutions are free of nucleases (avoid communal ethidium bromide baths, for example.)

Citations et références (18)

Citations et références
Abstract
Utilization of MHC class I transgenic mice for development of minigene DNA vaccinesencoding multiple HLA-restricted CTL epitopes.
Authors:Ishioka GY, Fikes J, Hermanson G, Livingston B, Crimi C, Qin M, del Guercio MF, Oseroff C, Dahlberg C, Alexander J, Chesnut RW, Sette A
Journal:J Immunol
PubMed ID:10201910
'We engineered a multiepitope DNA minigene encoding nine dominant HLA-A2.1- and A11-restricted epitopes from the polymerase, envelope, and core proteins of hepatitis B virus and HIV, together with the PADRE (pan-DR epitope) universal Th cell epitope and an endoplasmic reticulum-translocating signal sequence. Immunization of HLA transgenic mice with this construct ... More
Interactions between protein kinase CK2 and Pin1. Evidence for phosphorylation-dependent interactions.
Authors: Messenger Moira M; Saulnier Ronald B; Gilchrist Andrew D; Diamond Phaedra; Gorbsky Gary J; Litchfield David W;
Journal:J Biol Chem
PubMed ID:11940573
'The peptidyl-prolyl isomerase Pin1 interacts in a phosphorylation-dependent manner with several proteins involved in cell cycle events. In this study, we demonstrate that Pin1 interacts with protein kinase CK2, an enzyme that generally exists in tetrameric complexes composed of two catalytic CK2 alpha and/or CK2 alpha'' subunits together with two ... More
Role of CCAA nucleotide repeats in regulation of hemoglobin and hemoglobin-haptoglobin binding protein genes of haemophilus influenzae.
Authors:Ren Z, Jin H, Whitby PW, Morton DJ, Stull TL
Journal:J Bacteriol
PubMed ID:10482534
'Haemophilus influenzae utilizes hemoglobin and hemoglobin-haptoglobin as heme sources. The H. influenzae hemoglobin- and hemoglobin-haptoglobin binding protein genes, hgpA, hgpB, and hgpC, contain lengths of tetrameric CCAA repeats. Using an hgpA-lacZ translational gene fusion, we demonstrate phase-variable expression of lacZ associated with alteration in the length of the CCAA repeat ... More
Regulation of the Bub2/Bfa1 GAP complex by Cdc5 and cell cycle checkpoints.
Authors: Hu F; Wang Y; Liu D; Li Y; Qin J; Elledge S J;
Journal:Cell
PubMed ID:11733064
'During mitosis, a ras-related GTPase (Tem1) binds GTP and activates a signal transduction pathway to allow mitotic exit. During most of the cell cycle, Tem1 function is antagonized by a GTPase-activating protein complex, Bfa1/Bub2. How the Bfa1/Bub2 complex is regulated is not well understood. We find that Polo/Cdc5 kinase acts ... More
Substantially enhanced cloning efficiency of SAGE (Serial Analysis of Gene Expression) byadding a heating step to the original protocol.
Authors:Kenzelmann M, Muhlemann K
Journal:Nucleic Acids Res
PubMed ID:9889294
'The efficiency of the original SAGE (Serial Analysis of Gene Expression) protocol was limited by a small average size of cloned concatemers. We describe a modification of the technique that overcomes this problem. Ligation of ditags yields concatemers of various sizes. Small concatemers may aggregate and migrate with large ones ... More