Étalon de protéines pré-colorées Sharp Novex™
Étalon de protéines pré-colorées Sharp Novex™
Invitrogen™

Étalon de protéines pré-colorées Sharp Novex™

L’étalon de protéines précoloré Novex Sharp est conçu pour réaliser une estimation précise, facile et pratique du poids moléculaire desAfficher plus
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RéférenceQuantité
LC58002 x 250 μl
Référence LC5800
Prix (EUR)
259,65
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Quantité:
2 x 250 μl
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Prix (EUR)
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L’étalon de protéines précoloré Novex Sharp est conçu pour réaliser une estimation précise, facile et pratique du poids moléculaire des protéines, dans une large plage de poids moléculaires, pendant l’électrophorèse SDS-PAGE ou le transfert Western. L’étalon est composé de 12 bandes colorées dans une gamme de 3,5 à 260 kDa ; il est fourni dans un format prêt à l’emploi qui permet de le charger directement sur les gels ; il n’est pas nécessaire de chauffer, de réduire ou d’ajouter un tampon d’échantillon avant de l’utiliser.

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Applications
• Surveillance de la migration des protéines pendant l’électrophorèse sur gel de polyacrylamide SDS
• Surveillance du transfert des protéines sur les membranes après un transfert Western
• Dimensionnement des protéines sur gels SDS-PAGE et lors de transferts Western

Usage exclusivement réservé à la recherche. Ne pas utiliser pour des procédures de diagnostic.
Spécifications
Méthode de détectionColorimétrique
Compatibilité du gelGels Bolt™ Bis-Tris Plus, gels Novex™ Tricine, gels Novex™ Tris-Glycine, gels NuPAGE™ Bis-Tris
Poids moléculaire260, 160, 110, 80, 60, 50, 40, 30, 20, 15, 10, 3,5 kDa
Gamme de produitsNovex
Type de produitÉchelle de protéines
Quantité2 x 250 μl
Prêt à chargerOui
Conditions d’expéditionHomologué pour des expéditions sur de la glace carbonique ou mouillée
Type de coloration3 couleurs : Rose, jaune, bleu
Type de systèmeTransfert Western, SDS-PAGE
Number of Markers12
Plage de dimensions3,5 à 260 kDa
Unit SizeEach
Contenu et stockage
Les étalons protéiques précolorés Novex™ Sharp sont fournis sous la forme de 2 x 250 μL d’un mélange d’étalon prêt à l’emploi (au total, 50 applications de 10 μL chacune). Le tampon de chargement des étalons précolorés Novex™ Sharp est composé de 65 mm de Tris pH 6,5, 30 % de glycérol, 2 % de SDS et 2,5 mm d’ETDA.

Conserver à -20°C.

Foire aux questions (FAQ)

Why can I not see the 3.5 kDa band of the Invitrogen Sharp Pre-Stained Standard on my NuPAGE gels?

The 3.5 kDa band is visible only on NuPAGE gels with 1X MES SDS running buffer.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Protein Assays and Analysis Support Center.

What are the different molecular weight estimations for the Invitrogen Sharp Pre-Stained standard on the different Invitrogen gel types?

Invitrogen Sharp Pre-Stained Standard molecular weight estimations are the same in NuPAGE Bis-Tris, NuPAGE Tris-Acetate, Invitrogen Tris-Glycine, and Tricine Gels. The appearance/migration of the protein bands may differ depending upon the gel type and running conditions

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Protein Assays and Analysis Support Center.

What are the recommended protocols for preparing Invitrogen protein standards to load on a gel?

Invitrogen protein standards do not require any additional preparation. Thaw protein standards at room temperature, vortex to mix well, and load.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Protein Electrophoresis and Western Blotting Support Center.

I used one of your pre-stained protein standards for a western transfer and I noticed that the intensity of the band faded from the membrane during the transfer process. Why is this?

The fading is most likely due to detergent in the western blocking/washing solutions that can remove some of the proteins from the membrane. The dye itself will not wash off of the proteins because it is covalently bound. We have found that smaller pore size membranes retain the proteins better during blocking and wash procedures, and hence recommend use of 0.2 µm instead of 0.45 µm membranes for best resolution and protein retention. After transfer, it is a good idea to circle the pre-stained bands with a pencil on the membrane, so band positions can be identified after blocking and processing.

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I used one of your protein standards for a western transfer and noticed that some of the lower-molecular weight protein bands passed through the membrane. How can I resolve this issue?

- Decrease voltage, current or length of transfer time
- Make sure that the methanol concentration in the transfer buffer is proper; use a methanol concentration of 10-20% methanol removes the SDS from SDS-protein complexes and improves the binding of protein to the membrane.
- Make sure that the SDS concentration (if added) in the transfer buffer is proper, don't use more than 0.02-0.04% SDS. Using too much SDS can prevent binding of proteins to the membrane.
- Check the pore size of the membrane and the size of the target protein. Proteins smaller than 10 kDa will easily pass through a 0.45 µm pore size membrane. If proteins smaller than 10 kDa are of interest, it would be better to use a 0.2 µm pore size membrane.

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