Kits d’apoptose des cellules mortes avec annexine V pour cytométrie en flux
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Kits d’apoptose des cellules mortes avec annexine V pour cytométrie en flux

Évaluez la viabilité cellulaire avec les kits d’apoptose des cellules mortes avec l’annexine V et les colorants fluorescents conjugués tels que Alexa Fluor 488, FITC, PI, PE, APC, et SYTOX Green.
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RéférenceQuantitéMarqueur ou colorant
V13245250 dosagesAlexa Fluor 488, iodure de propidium
V1324150 dosagesAlexa Fluor 488, iodure de propidium
V132421 KitFITC, iodure de propidium
V351121 KitSYTOX Green, R-PE
V351131 KitSYTOX Green, APC
Référence V13245
Prix (EUR)
786,00
250 assays
Quantité:
250 dosages
Marqueur ou colorant:
Alexa Fluor 488, iodure de propidium
Prix (EUR)
786,00
250 assays
Différenciez facilement les cellules vivantes, mortes et apoptotiques pendant la cytométrie en flux grâce à nos kits d’apoptose des cellules mortes avec les conjugués d’annexine V, incluant Alexa Fluor 488, FITC, iodure de propidium, PE, APC, et SYTOX Green. Ces conjugués distinguent les cellules vivantes, mortes ou apoptotiques par différents colorants, ce qui est essentiel pour confirmer la viabilité cellulaire et l’apoptose à l’aide d’études multi-paramétriques.
L’utilisation des kits d’apoptose de cellules mortes avec annexine V pour la cytométrie en flux offre plusieurs avantages pour doser la viabilité cellulaire :

Luminosité supérieure
Contrairement aux kits d’annexine V qui ont des concentrations de protéines ou des niveaux de purification plus faibles, le conjugué d’annexine V Alexa Fluor 488 est optimisé pour la cytométrie en flux afin de permettre une plus grande séparation entre les cellules vivantes et les cellules apoptotiques. Le colorant Alexa Fluor 488 est un colorant vert fluorescent de qualité supérieure avec un spectre similaire à celui de la fluorescéine (FITC).

Efficacité de liaison élevée
Les conjugués d’annexine V sont faits de cys-annexine hautement purifiée, qui offre une plus grande efficacité de liaison dont le résultat est une caractérisation extrêmement précise du processus apoptotique.

Multiparamètre
De nombreuses publications préconisent au moins deux façons différentes de déterminer le caractère apoptotique des cellules. Ce kit multiparamètre détecte la phosphatidylsérine (PS) à la surface cytoplasmique de la membrane cellulaire, alors que l’intégrité de la membrane est déterminée avec l’iodure de propidium.

Kit d’apoptose des cellules mortes avec annexine V Alexa Fluor 488 & PI
Le kit d’apoptose des cellules mortes, avec annexine V Alexa Fluor 488 & iodure de propidium (PI) (V13241, V13245), est utilisé dans la cytométrie en flux pour mesurer l’apoptose précoce en détectant l’expression de la phosphatidyl-sérine (PS) et la perméabilité membranaire. Lorsque les cellules sont colorées à l’annexine V et à l’iodure de propidium, les cellules apoptotiques exprimant la PS montrent une fluorescence verte, qui peut être détectée dans le canal FITC, et une faible fluorescence rouge. Les cellules mortes ou nécrotiques affichent une fluorescence rouge vif et pas de fluorescence verte, tandis que les cellules vivantes n’affichent ni fluorescence verte ni fluorescence rouge.

Kit d’apoptose des cellules mortes avec annexine V PE et SYTOX Green
Le kit d’apoptose des cellules mortes avec annexine V PE et SYTOX Green détecte l’externalisation de la PS dans les cellules apoptotiques pendant la cytométrie en flux à l’aide de l’annexine V recombinante conjuguée à la phycobiliprotéine R-PE fluorescente orange ; les cellules mortes sont, quant à elles, détectées avec la coloration d’acide nucléique SYTOX Green. Après traitement avec les deux sondes, les cellules apoptotiques présentent une fluorescence orange, les cellules mortes une fluorescence verte et les cellules vivantes présentent peu ou pas du tout de fluorescence. Ces populations peuvent facilement être distinguées dans les filtres passe-bande 530/30 nm et 585/42 nm avec un laser 488 nm de cytomètre en flux.

Kit d’apoptose des cellules mortes avec annexine V APC et SYTOX Green
Le kit d’apoptose des cellules mortes, avec annexine V APC et SYTOX Green, détecte l’externalisation de la PS dans les cellules apoptotiques pendant la cytométrie en flux, à l’aide de l’annexine V recombinante conjuguée à l’allophycocyanine excitée par laser rouge et dans les cellules mortes à l’aide d’un colorant d’acide nucléique SYTOX Green. Les cellules apoptotiques sont détectées par liaison de l’annexine V à la PS externalisée. les cellules vivantes présentent peu ou pas de fluorescence, les cellules apoptotiques présentent une fluorescence rouge et très peu de fluorescence verte et les cellules apoptotiques tardives présentent un niveau plus élevé de fluorescence rouge et orange. Ces populations peuvent être facilement distinguées à l’aide d’un cytomètre en flux qui possède des sources d’excitation de 488 nm et 633 nm (un laser à ions d’argon et un laser HeNe).

Kit d’apoptose des cellules mortes avec annexine V FITC et PI
Le kit d’apoptose des cellules mortes, avec annexine V FITC et PI, détecte l’externalisation de la PS dans les cellules apoptotiques, à l’aide de l’annexine V recombinante conjuguée au colorant FITC fluorescent vert, et les cellules mortes à l’aide de PI. Les cellules nécrotiques qui colorent avec l’IP présentent une fluorescence rouge. Après traitement avec les deux sondes, les cellules apoptotiques présentent une fluorescence verte, les cellules mortes une fluorescence rouge et verte, et les cellules vivantes présentent peu ou pas du tout de fluorescence.

For Research Use Only. Not for use in diagnostic procedures.
Spécifications
DescriptionKit d’apoptose des cellules mortes avec annexine V Alexa Fluor 488 & et iodure de propidium (PI)
Excitation / émission499, 535/521, 617
Faisceaux laser du cytomètre en flux488
À utiliser avec (équipement)Microscope à fluorescence, cytomètre en flux
Contenus des kitsContient 5 flacons d’annexine V, conjugué d’Alexa Fluor 488 (250 µl par flacon), 1 flacon d’iodure de propidium (IP, 100 µl), et 1 bouteille de tampon de liaison à l’annexine (solution 5X, 50 ml).
Marqueur ou colorantAlexa Fluor 488, iodure de propidium
Type de produitKit de détection d’apoptose
Quantité250 dosages
Conditions d’expéditionGlace humide
Unit Size250 assays
Contenu et stockage
Conserver au réfrigérateur (2°C à 8°C) et à l’abri de la lumière.

Foire aux questions (FAQ)

I want to study apoptosis using an Annexin V conjugate, but with adherent cells via microscopy instead of flow cytometry. Can this be done?

It has been done, but we don‘t recommend it. Both healthy cells and apoptotic cells possess phosphatidylserine on the cell surface, which can be detected with Annexin V, but apoptotic cells have significantly more of it. You can easily tell the difference between these two populations with flow cytometry, because flow cytometers are more sensitive and have a higher throughput. But with a microscope, you cannot always tell the difference, especially for adherent cells. Instead, for microscopy, we recommend a different technique, such as detecting caspases with CellEvent Caspase Detection Reagents.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Cell Analysis Support Center.

When using Dead Cell Apoptosis Kits with Annexin V for Flow Cytometry, what does a PI+ only population (hence Annexin V negative) correspond to?

These products are cells that died without undergoing apoptosis. A PI+ only population could be either a result of experimental condition or sample preparation.

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I trypsinized my adherent cells and labeled with annexin V, and now my flow data is showing a high percentage of apoptotic cells even for control, untreated cells. What is the problem?

Trypsinization or mechanical scraping of cells temporarily disrupts the plasma membrane, allowing annexin V to bind phosphatidylserine on the cytoplasmic surface of the cell membrane and thus leading to false positive staining. Allow the cells to recover for about 30 minutes in optimal cell culture conditions and medium after trypsinizing/scraping so that they can recover their membrane integrity before staining. For lightly adherent cell lines, such as HeLa and NIH 3T3, another option is to use non-enzyme treatments like Gibco Cell Dissociation Buffer (Cat. No. 13151014).

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Can I detect annexin V staining in an imaging assay?

Annexin V staining is not typically used in imaging experiments; it is a better reagent for flow cytometry analysis. All cells will stain to some extent, so it can be difficult to distinguish a relatively bright annexin V-stained cell from a dimmer non-apoptotic cell. Caspase activation, detected using our CellEvent Caspase 3/7 or Image-iT LIVE Caspase detection kits, is a better method for detecting apoptosis in an imaging assay.

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When should I stain adherent cells with annexin V for flow cytometric analysis? Before or after I trypsinize them?

Trypsinize first and then allow the cells to recover about 30 minutes in optimal cell culture conditions and medium before staining with annexin V conjugates. Trypsinization or mechanical scraping of cells temporarily disrupts the plasma membrane, allowing for annexin V to bind phosphatidylserine on the cytoplasmic surface of the cell membrane and thus leading to false positive staining. For lightly adherent cell lines such as HeLa and NIH 3T3, you could use a less harsh (non-enzymatic) dissociation product like Gibco Cell Dissociation Buffer (Cat. No. 13151014).

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Citations et références (52)

Citations et références
Abstract
A novel sulindac derivative inhibits lung adenocarcinoma cell growth through suppression of Akt/mTOR signaling and induction of autophagy.
Authors:Gurpinar E, Grizzle WE, Shacka JJ, Mader BJ, Li N, Piazza NA, Russo S, Keeton AB, Piazza GA
Journal:Mol Cancer Ther
PubMed ID:23443799
'Nonsteroidal anti-inflammatory drugs such as sulindac sulfide have shown promising antineoplastic activity in multiple tumor types, but toxicities resulting from COX inhibition limit their use in cancer therapy. We recently described a N,N-dimethylethyl amine derivative of sulindac sulfide, sulindac sulfide amide (SSA), that does not inhibit COX-1 or -2, yet ... More
Translation of Pur-a is targeted by cellular miRNAs to modulate the differentiation-dependent susceptibility of monocytes to HIV-1 infection.
Authors:Shen CJ, Jia YH, Tian RR, Ding M, Zhang C, Wang JH,
Journal:FASEB J
PubMed ID:22835829
'The postentry restriction of HIV-1 replication in monocytes can be relieved when they differentiate to dendritic cells (DCs) or macrophages. Multiple mechanisms have been proposed to interpret the differentiation-dependent susceptibility of monocytes to HIV-1 infection, and the absence of host-cell-encoded essential factors for HIV-1 completing the life cycle may provide ... More
DNA methyltransferase-3-dependent nonrandom template segregation in differentiating embryonic stem cells.
Authors:Elabd C, Cousin W, Chen RY, Chooljian MS, Pham JT, Conboy IM, Conboy MJ,
Journal:
PubMed ID:24127215
'Asymmetry of cell fate is one fundamental property of stem cells, in which one daughter cell self-renews, whereas the other differentiates. Evidence of nonrandom template segregation (NRTS) of chromosomes during asymmetric cell divisions in phylogenetically divergent organisms, such as plants, fungi, and mammals, has already been shown. However, before this ... More
Id4 Promotes Senescence and Sensitivity to Doxorubicin-induced Apoptosis in DU145 Prostate Cancer Cells.
Authors:Carey JP, Knowell AE, Chinaranagari S, Chaudhary J,
Journal:
PubMed ID:24122992
Inhibitor of differentiation proteins (Id1, 2, 3 and 4) are dominant negative regulators of basic helix loop helix transcription factors and play dominant roles in cancer cells, spanning several molecular pathways including senescence, invasion, metastasis, proliferation and apoptosis. In contrast to high Id1, Id2 and Id3 expression, the expression of ... More
The HSP90 Inhibitor Ganetespib Radiosensitizes Human Lung Adenocarcinoma Cells.
Authors:Gomez-Casal R, Bhattacharya C, Epperly MW, Basse PH, Wang H, Wang X, Proia DA, Greenberger JS, Socinski MA, Levina V,
Journal:
PubMed ID:26010604
The molecular chaperone HSP90 is involved in stabilization and function of multiple client proteins, many of which represent important oncogenic drivers in NSCLC. Utilization of HSP90 inhibitors as radiosensitizing agents is a promising approach. The antitumor activity of ganetespib, HSP90 inhibitor, was evaluated in human lung adenocarcinoma (AC) cells for ... More