Di-8-ANEPPS
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Di-8-ANEPPS

Los colorantes ANEP son moléculas que fluorescen en respuesta a los cambios eléctricos potenciales en su entorno. Se trata deMás información
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Número de catálogoCantidad
D31675 mg
Número de catálogo D3167
Precio (MXN)
-
Cantidad:
5 mg
Los colorantes ANEP son moléculas que fluorescen en respuesta a los cambios eléctricos potenciales en su entorno. Se trata de sondas de respuesta rápida que funcionan mediante cambios en su estructura electrónica y, en consecuencia, en sus propiedades de fluorescencia, en respuesta a cambios en el campo eléctrico circundante Su respuesta óptica es lo suficientemente rápida para detectar cambios potenciales transitorios (milisegundo) en células excitables, incluyendo neuronas individuales, células cardíacas y cerebros intactos. Sin embargo, la magnitud de su cambio de fluorescencia dependiente del potencial suele ser pequeña; las sondas de respuesta rápida suelen mostrar un 2-10 % de cambio de fluorescencia por 100 mV. Además, estos colorantes muestran un desplazamiento dependiente del potencial en sus espectros de excitación, permitiendo así la cuantificación del potencial de la membrana utilizando mediciones de la relación de excitación.

Obtenga más información sobre los indicadores de iones, incluidos los indicadores de calcio, potasio, pH y potencial de la membrana ›

Especificaciones del colorante ANEP potencialmente sensible:
• Molécula zwitteriónica; es menos susceptible a la internalización que di-4-ANEPPS, permitiendo una observación extendida
• Las Ex/Em máximas unidas a las membranas de fosfolípidos modelo son ∼465/635 nm (pero las propiedades espectrales dependen en gran medida del entorno)
• No fluorescente hasta que se une a las membranas
• Soluble en etanol, DMSO y DMF (di-2-ANEPEQ es un colorante ANEP soluble en agua)
• El colorante se introduce en las células mediante la adición directa de la solución madre al medio de cultivo celular, mediante el uso de Pluronic™ F-127 o mediante etiquetado retrógrado
• Sonda de respuesta rápida, adecuada para detectar posibles cambios en la membrana de menos de submilisegundos


Aplicaciones para sondas potenciométricas
La membrana plasmática de la célula normalmente tiene un potencial transmembrana de aproximadamente -70 mV (negativo en el interior) como consecuencia de los gradientes de concentración de K+, Na+ y Cl- que se mantienen mediante procesos de transporte activos. Las sondas potenciométricas ofrecen un método indirecto de detección de la translocación de estos iones.

Los aumentos y disminuciones en el potencial de la membrana, conocidos como hiperpolarización y despolarización de la membrana, respectivamente, desempeñan un papel central en muchos procesos fisiológicos, incluyendo la propagación del impulso nervioso, la contracción muscular, la señalización celular y la sincronización del canal de iones. Las sondas potenciométricas son herramientas importantes para el estudio de estos procesos.

Encuentre más colorantes ANEP
Ofrecemos colorantes ANEP en varias formas. Consulte la sección 22.2 Sondas de respuesta rápida del manual de Molecular Probes™ para obtener más información sobre estas sondas.

Para uso exclusivo en investigación. No apto para uso diagnóstico o terapéutico en humanos ni en animales.
Para uso exclusivo en investigación. No apto para uso en procedimientos diagnósticos.
Especificaciones
Método de detecciónFluorescente
Cantidad5 mg
Condiciones de envíoTemperatura ambiente
Localización subcelularMembranas celulares & lípidos
ColorNaranja
Para utilizar con (equipo)Microscopio de fluorescencia
Tipo de productoColorante ANEP
Unit SizeEach
Contenido y almacenamiento
Almacenar a temperatura ambiente y proteger de la luz.

Preguntas frecuentes

What are the excitation/emission maxima for Di-8-ANEPPS (Cat. No. D3167)?

Di-8-ANEPPS dye (Cat. No. D3167) is essent­ially nonfluorescent until bound to membranes. The excitation/emission maxima for Di-8-ANEPPS when bound to model phospholipid membranes are ~465/635 nm but spectral properties are highly dependent on the environment.

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I am seeing high background outside of my neuronal cells when using membrane potential indicators. What can I do to reduce background?

If you use our FluoVolt Membrane Potential Kit (Cat. No. F10488), the kit provides a background suppressor to reduce this problem. For other indicators, consider the use of BackDrop Background Suppressor (Cat no. R37603, B10511, and B10512).

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What is the difference between fast and slow-response membrane potential probes?

Molecules that change their structure in response to the surrounding electric field can function as fast-response probes for the detection of transient (millisecond) potential changes. Slow-response dyes function by entering depolarized cells and binding to proteins or membranes. Increased depolarization results in additional dye influx and an increase in fluorescence, while hyperpolarization is indicated by a decrease in fluorescence. Fast-response probes are commonly used to image electrical activity from intact heart tissues or measure membrane potential changes in response to pharmacological stimuli. Slow-responding probes are often used to explore mitochondrial function and cell viability.

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What type of membrane potential indicators do you offer and how should I choose one for my experiment?

A membrane potential indicator selection guide can be found here (https://www.thermofisher.com/us/en/home/life-science/cell-analysis/cell-viability-and-regulation/ion-indicators/membrane-potential-indicators.html).

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Citations & References (94)

Citations & References
Abstract
Authors:
Journal:
PubMed ID:18198177
Exercise training attenuates coronary smooth muscle phenotypic modulation and nuclear Ca2+ signaling.
Authors:Wamhoff BR, Bowles DK, Dietz NJ, Hu Q, Sturek M
Journal:Am J Physiol Heart Circ Physiol
PubMed ID:12388302
'Physical inactivity is an independent risk factor for coronary heart disease, yet the mechanism(s) of exercise-related cardioprotection remains unknown. We tested the hypothesis that coronary smooth muscle after exercise training would have decreased mitogen-induced phenotypic modulation and enhanced regulation of nuclear Ca(2+). Yucatan swine were endurance exercise trained (EX) on ... More
Ratiometric measurement of endothelial depolarization in arterioles with a potential-sensitive dye.
Authors:Beach JM, McGahren ED, Xia J, Duling BR
Journal:Am J Physiol
PubMed ID:8764277
'A fluorescence ratio technique based on the voltage-sensitive dye 1-(3-sulfonatopropyl)-8-[beta-[2-di-n-butylamino)-6-naphythyl++ +]vinyl] pyridinium betaine (di-8-ANEPPS)has been developed for recording membrane potential changes during vascular responses of arterioles. Perfusion of hamster cheek pouch arterioles with the dye labeled the endothelial cell layer. voltage responses from the endothelium of intact arterioles were determined ... More
Spatially non-uniform Ca2+ signals induced by the reduction of transverse tubules in citrate-loaded guinea-pig ventricular myocytes in culture.
Authors:Lipp P, Hüser J, Pott L, Niggli E
Journal:J Physiol
PubMed ID:9003546
'1. Ratiometric confocal microscopy and the whole-cell patch clamp technique were used to simultaneously record intracellular Ca2+ transients and membrane currents from guinea-pig ventricular myocytes. Intracellular dialysis with the low-affinity Ca2+ buffer citrate enabled us to record and analyse Ca2+ transients caused by Ca2+ influx alone and by additional Ca2+ ... More
The effect of asymmetric surface potentials on the intramembrane electric field measured with voltage-sensitive dyes.
Authors:Xu C, Loew LM
Journal:Biophys J
PubMed ID:12668484
'Ratiometric imaging of styryl potentiometric dyes can be used to measure the potential gradient inside the membrane (intramembrane potential), which is the sum of contributions from transmembrane potential, dipole potential, and the difference in the surface potentials at both sides of the membrane. Here changes in intramembrane potential of the ... More