Sulfo-SBED Biotin Label Transfer Reagent, No-Weigh™ Format
Sulfo-SBED Biotin Label Transfer Reagent, No-Weigh™ Format
Thermo Scientific™

Sulfo-SBED Biotin Label Transfer Reagent, No-Weigh™ Format

Das Thermo Scientific Pierce Sulfo-SBED Biotin Label Transfer Reagent ist ein multifunktionales Reagenz zur Markierung eines aufgereinigten Proteins und anschließenderWeitere Informationen
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3303310 mg
A3926010 x 1 mg
Katalognummer 33033
Preis (EUR)
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Das Thermo Scientific Pierce Sulfo-SBED Biotin Label Transfer Reagent ist ein multifunktionales Reagenz zur Markierung eines aufgereinigten Proteins und anschließender kovalenter Übertragung des angehängten Biotin-Tags auf bestimmte Interaktoren dieses Proteins.

Sulfo-SBED ist die Abkürzung für Sulfo-N-hydroxysuccinimidyl-2-(6-[biotinamido]-2-(p-azido benzamido)-hexanoamido) ethyl-1,3'-dithioproprionat. Es ist ein heterobifunktionaler chemischer Crosslinker, der sich an einem Ende kovalent an primäre Amine und am anderen Ende an nahezu jede funktionelle Proteingruppe anbindet. Im Gegensatz zu typischen Crosslinkern enthält Sulfo-SBED auch eine Biotin-Gruppe und einen spaltbaren Disulfid-Spacerarm. Zusammen ermöglichen diese Merkmale es, interagierende Proteine sequentiell zu vernetzen und das Biotin-Affinitätstag von einem Protein (d. h. einem aufgereinigten Köderprotein) auf ein anderes (möglicherweise unbekanntes Beuteprotein) zu übertragen. Der Labeltransfer ist eine leistungsfähige In-vitro-Methode für die Erforschung von Proteininteraktionen. Eine wachsende Zahl von Publikationen beschreibt den Gebrauch des Sulfo-SBED Biotin Label Transfer Reagent, um vorher unbekannte Proteinwechselwirkungspartner zu identifizieren und die spezifischen Proteinbindungsdomänen anderer Proteininteraktionen umfassender zu charakterisieren.

Typisches Protokoll für Label-Transfer-Experiment:

• Geben Sie ein paar Mikroliter gelöstes Sulfo-SBED Reagenz zu 0,5 – 1 ml aufgereinigtem Köderprotein in PBS.
• Die Mischung 30 bis 120 Minuten auf Eis oder bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubieren.
• Entsalzen oder dialysieren (bei gedämpftem Licht), um überschüssiges, nicht reagiertes Sulfo-SBED von dem markierten Köderprotein zu entfernen.
• Fügen Sie markiertes Köderprotein zum Zelllysat oder einer anderen Lösung hinzu, die vermeintliche Zielproteininteraktoren („Beute“) enthält.
• Wenn sich Interaktionskomplexe gebildet haben, setzen Sie die Lösung für mehrere Minuten ultraviolettem Licht (365 nm) aus.
• Analysieren Sie Produkte mit einer der folgenden Methoden:
Western Blotting: Kreuzverbindungen in DTT spalten, Proteine durch SDS-PAGE trennen und biotinylierte Banden durch Western Blotting mit Streptavidin-HRP nachweisen.
Aufreinigung und Massenspektrometrie oder Sequenzierung: Affinitätsreinigung biotinylierter Proteine oder Peptidfragmente nach Trypsin-Verdauung und Durchführung von MS oder Sequenzierung zur Charakterisierung der beteiligten Proteine.

Ähnliche Produkte
Sulfo-SBED Biotin Label Transfer Kit – Western Blotting-Anwendung

Nur für Forschungszwecke. Nicht zur Verwendung bei diagnostischen Verfahren.
Specifications
FormatPulver
MarkierungsmethodeChemische Markierung, Markierungstransfer
ProdukttypCrosslinker
Menge10 mg
Reaktiver TeilSulfo-NHS-Ester, Arylazid
LöslichkeitWasser
ProduktliniePierce
Unit SizeEach
Inhalt und Lagerung
Nach Erhalt bei 4 °C lagern.

Häufig gestellte Fragen (FAQ)

What makes Sulfo-SBED Biotin Label Transfer Reagent useful for investigation of protein interactions?

Sulfo-SBED allows one to transfer a biotin tag from an amine-containing protein to a second protein (reacted with the phenyl azide). The amine-containing protein can be removed by reduction of the disulfide in the Sulfo-SBED spacer arm. This leaves just the second biotinylated protein for detection.

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Should the Sulfo-SBED coupling reaction be protected from light?

During the initial coupling procedure, the solutions should be protected from light to avoid decomposition of the phenyl azide functional group.

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Which reaction should take place first during Sulfo-SBED crosslinking?

The NHS-ester end of the crosslinker is subject to hydrolysis, therefore the amine-containing protein should be conjugated prior to the photoactivatable (aryl azide) reaction.

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What is the appropriate wavelength for the conjugation of the photoactivatable group in Sulfo-SBED Biotin Label Transfer Reagent ?

UV light at wavelengths greater than 300 nm are appropriate for conjugation.

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Is the Sulfo-SBED crosslinker soluble in organic solutions as well as aqueous solutions?

Yes, Sulfo-SBED is soluble in aqueous as well as organic solutions. It is most soluble in organics such as DMF and DMSO.

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Zitierungen und Referenzen (3)

Zitierungen und Referenzen
Abstract
Retagging identifies dendritic cell-specific intercellular adhesion molecule-3 (ICAM3)-grabbing non-integrin (DC-SIGN) protein as a novel receptor for a major allergen from house dust mite.
Authors:Emara M, Royer PJ, Mahdavi J, Shakib F, Ghaemmaghami AM
Journal:J Biol Chem
PubMed ID:22205703
Dendritic cells (DCs) have been shown to play a key role in the initiation and maintenance of immune responses to microbial pathogens as well as to allergens, but the exact mechanisms of their involvement in allergic responses and Th2 cell differentiation have remained elusive. Using retagging, we identified DC-SIGN as ... More
Structural basis of molecular recognition of the Leishmania small hydrophilic endoplasmic reticulum-associated protein (SHERP) at membrane surfaces.
Authors:Moore B, Miles AJ, Guerra-Giraldez C, Simpson P, Iwata M, Wallace BA, Matthews SJ, Smith DF, Brown KA
Journal:J Biol Chem
PubMed ID:21106528
The 57-residue small hydrophilic endoplasmic reticulum-associated protein (SHERP) shows highly specific, stage-regulated expression in the non-replicative vector-transmitted stages of the kinetoplastid parasite, Leishmania major, the causative agent of human cutaneous leishmaniasis. Previous studies have demonstrated that SHERP localizes as a peripheral membrane protein on the cytosolic face of the endoplasmic ... More
The interaction between cell adhesion molecule L1, matrix metalloproteinase 14, and adenine nucleotide translocator at the plasma membrane regulates L1-mediated neurite outgrowth of murine cerebellar neurons.
Authors:Loers G, Makhina T, Bork U, Dörner A, Schachner M, Kleene R
Journal:J Neurosci
PubMed ID:22423112
We have identified the adenine nucleotide translocator (ANT) isoforms ANT1 and ANT2 that are present in the plasma membrane of mouse cerebellar neurons as novel binding partners of the cell adhesion molecule L1. The direct interaction between ANT and L1 is mediated by sites within the fibronectin type III domains ... More