Ultracomp eBeads™ Kompensations-Beads
Ultracomp eBeads™ Kompensations-Beads
Invitrogen™

Ultracomp eBeads™ Kompensations-Beads

UltraComp eBeads™ reagieren mit Antikörpern, die von Mäusen, Ratten und Hamstern stammen, und sind unabhängig von Immunglobulin-Leichtketten. Sie wurden fürWeitere Informationen
Have Questions?
Ansicht ändernbuttonViewtableView
KatalognummerMenge
01-2222-42100 Tests
01-2222-4125 Tests
Katalognummer 01-2222-42
Preis (EUR)
416,00
Each
Zum Warenkorb hinzufügen
Menge:
100 Tests
Preis (EUR)
416,00
Each
Zum Warenkorb hinzufügen
UltraComp eBeads™ reagieren mit Antikörpern, die von Mäusen, Ratten und Hamstern stammen, und sind unabhängig von Immunglobulin-Leichtketten. Sie wurden für die Verwendung bei der Kompensation mit allen Fluorochromen entwickelt, die durch ultraviolette (355 nm), violette (405 nm), blaue (488 nm) grüne (532 nm), gelbgrüne (561 nm) und rote (633 – 640 nm) Laser angeregt werden. Diese Beads sind kugelförmige Partikel, die mit individuellen fluorochromkonjugierten Antikörpern für einfarbige Kompensationskontrollen gefärbt werden können.

Jeder Tropfen der Beads enthält zwei Populationen: eine positive Population, die jeden Mäuse-, Ratten- oder Hamsterantikörper einfängt, und eine negative Population, die nicht mit dem Antikörper reagiert. Wenn ein fluorochromkonjugierter Antikörper den Beads zugefügt wird, führt dies sowohl zu positiven als auch zu negativen Populationen. Diese bimodale Verteilung kann für einfarbige Kompensationskontrollen in Experimenten mit mehrfarbiger Durchflusszytometrie verwendet werden.

UltraComp eBeads sind kompatibel mit allen Fluorochromen, die durch einen ultravioletten (355 nm) oder violetten (405 nm) Laser angeregt werden. Sie müssen mit Standardfärbungspuffern verwendet werden, die PBS oder HBSS, Protein wie BSA oder FKS und Natriumazid enthalten. Es dürfen keine weiteren Zusatzstoffe verwendet werden. Weiterführende Hinweise erhalten Sie von der technischen Kundenbetreuung.

Reaktivität/Spezies
Hamster, Maus, Ratte

Berichtete Anwendung
Durchflusszytometrische Analyse

Nur für Forschungszwecke
Specifications
Zur Verwendung mit (Geräte)Durchflusszytometer
Anzahl Tests100 Tests
Menge100 Tests
ProduktlinieeBeads
ProdukttypKompensations-Beads
Unit SizeEach

Häufig gestellte Fragen (FAQ)

How long are UltraComp eBeads Compensation Beads (Cat. No. 01-2222-41, 01-2222-42) stable after staining?

After staining, UltraComp eBeads Compensation Beads (Cat. No. 01-2222-41, 01-2222-42) are stable for up to 3 days if the samples are stored in a fixative. If the samples are stored in FACS buffer, they are stable for 1 week.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Flow Cytometry Support Center.

I am performing flow cytometry. My compensation matrix has values over 100. That's not possible is it?

It is possible. But if you have a lot of values over 100, you probably need to look at the voltages that you are using for your data collection.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Cell Analysis Support Center.

I’ve been told that I need to compensate my data for flow cytometry analysis. What does that mean?

By running single-color controls, it is possible to remove signal of one fluorophore that spills over into the collection channel for another fluorophore.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Cell Analysis Support Center.

What kind of controls do I need for flow cytometry?

For compensation, you need to prepare a singly stained sample (or compensation beads) for each color parameter that you are using. In addition, we recommend that you use FMO (flow minus one) controls. These are controls in which you label cells or beads with every color in your panel, omitting one. Make one FMO control for each color. These controls are important for helping you properly set gates on your data.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Cell Analysis Support Center.

Why should I worry about compensation in flow cytometry analysis?

In a perfect world, the fluorescence emission profile for each individual fluorophore would be a very intense, narrow peak, well separated from all other emission peaks. In reality, organic dyes and fluorescent proteins have broad emission peaks, and compensation must be employed (during or after data acquisition) to correctly assign fluorescence signal to each fluorophore. Compensation is important because it removes fluorescent signal from overlapping spectra so you know that the signal you see is only the signal from the fluorophore of interest.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Cell Analysis Support Center.