PageRuler™ Unstained High Range Protein Ladder
Thermo Scientific™

PageRuler™ Unstained High Range Protein Ladder

Die Thermo Scientific PageRuler ungefärbte Poteinleiter für den hohen Bereich ist eine Mischung aus acht (8) ungefärbten Proteinen (60 bisWeitere Informationen
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KatalognummerMenge
266372 x 250 ml
Katalognummer 26637
Preis (EUR)
194,00
Each
Menge:
2 x 250 ml
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Preis (EUR)
194,00
Each
Die Thermo Scientific
PageRuler ungefärbte Poteinleiter für den hohen Bereich ist eine Mischung aus acht (8) ungefärbten Proteinen (60 bis 250 kDa) zur Verwendung als Größenstandards in der Proteinelektrophorese (SDS-PAGE) und zum Western Blotting.

Merkmale der PageRuler ungefärbten Proteinleiter für den hohen Bereich:

Größenbereich – 8 Proteine, die 60 bis 250 kDa umfassen
Gebrauchsfertig – wird in einem Ladepuffer für die direkte Auftragung auf Gelen geliefert
Scharfe Banden – ausgezeichnete Genauigkeit für den Nachweis mit Coomassie- oder Silberfärbung
Referenzband – 150 kDa-Band hat eine höhere Intensität und erleichtert die Orientierung
Getaggt – jedes Protein in der Leiter enthält eine integrierte Strep-tag™ II-Sequenz
Qualitätsgeprüft – jede Charge wird anhand von SDS-PAGE und Western-Blotting beurteilt

Die Protein-MW-Marker trennen sich bei der Analyse durch SDS-PAGE in klar erkennbare scharfe Banden auf und werden mit Coomassie-Farbstoff oder Silber gefärbt. Das 150-kDa-Band ist von höherer Intensität und dient als Referenzband. Proteine können auf Western Blots durch Färben mit Ponceau S, Coomassie-Blau oder anderen Proteinfärbungen nachgewiesen werden. Außerdem enthalten die Markerproteine eine integrierte Step-tag™ II Sequenz und können mit Strep-Tactin™ Konjugaten auf Western Blots nachgewiesen werden. Die PageRuler ungefärbte Proteinleiter für den hohen Bereich wird gebrauchsfertig geliefert: kein Aufwärmen, weiteres Verdünnen oder Zugeben eines Reduktionsmittels vor dem Gebrauch.

Enthält:
• Proteine (je 0,02 bis 0,05 mg/ml) in 62,5 mmol Tris-H3PO4 (pH 7,5 bei 25 °C), 1 mmol EDTA, 2 % SDS, 100 mmol DTT, 1 mmol NaN3, 0,01 % Bromophenolblau und 33 % Glycerin

Anwendungen:
• Genaue Größenbestimmung von Proteinen in SDS-Polyacrylamid-Gelen und Western Blots.
Nur für Forschungszwecke. Nicht zur Verwendung bei diagnostischen Verfahren.
Specifications
Zur Verwendung mit (Anwendung)Tris-acetate gels
GelkompatibilitätBolt™ Bis-Tris Plus Gele, Novex™ Tricin-Gele, Novex™ Tris-Glycin-Gele, NuPAGE™ Bis-Tris-Gele, NuPAGE™ Tris-Acetat-Gele, SDS-PAGE-Gele
Molekulargewicht250, 200, 150, 120, 100, 85, 70, 60 kDa
Menge2 x 250 ml
Sofort einsatzbereitJa
Empfohlene AnwendungenTris-Acetat-Gele
VersandbedingungZugelassen für den Versand auf Nass- oder Trockeneis
Number of Markers8
ProduktliniePageRuler
ProdukttypProteinleiter
Größenbereich60 bis 250 kDa
Stain TypeUngefärbt
System TypeWestern Blotting, SDS-PAGE
Unit SizeEach
Inhalt und Lagerung
Nach Eingang bei -20 °C lagern Das Produkt wird mit einer Eispackung geliefert.

Häufig gestellte Fragen (FAQ)

The upper bands of the ladder are missing. What could be the reason?

The upper bands of the ladder may be degraded by proteases. Ladder, gel, buffer, pipettes, pipette tips, or equipment can be contaminated by proteases during usage. A general recommendation would be to avoid working with proteases in the same room. We would recommend preparing fresh solutions, cleaning the equipment, and using clean pipettes and tips. If the ladder itself is contaminated, please use a new tube of the ladder.

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Some additional bands or smears were observed on the gel when using a PageRuler unstained ladder. What may have caused this?

Additional bands can appear due to dithiothreitol (DTT) oxidation in the storage buffer. Please add newly prepared DTT solution to the final concentration of 100 mM and boil for 5 min at 95 degrees C. This should solve the issue. Addition of DTT is NOT recommended for prestained protein ladders, since too high a concentration of reducing agents can cause protein destaining.

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Do the proteins in Thermo Scientific protein ladders have a His-Tag or would otherwise react with an anti-His-Tag antibody?

No, proteins in Thermo Scientific protein ladders are not His tagged. However, non-specific interaction between the ladder proteins and primary or secondary antibodies is possible and some His-Tag detection systems, such as Thermo Scientific 6xHis Protein Tag Stain Reagent Kit, show non-specific interaction. The protein ladder bands are more readily detected when using high antibody concentrations. The non-specific cross-reactivity is difficult to predict, it often has a different pattern dependent on the antibodies used in each individual experiment. The most general way to handle this problem would be to use lower concentrations of antibodies and to use lower amount of protein ladders. It may also be useful to leave one empty well between the ladder and the sample to overcome a possible leakage of the signal to the nearby sample lane.

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Can Thermo Scientific protein ladders be detected by Strep-Tactin conjugates?

PageRuler Unstained protein ladders can be detected directly on Western blots by using Strep-Tactin conjugates or an antibody against the Strep-tag II sequence. All PageRuler and Spectra ladder proteins contain an integral Strep-tag II sequence, however the prestained ladders cannot be detected by Strep-Tactin conjugates.

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Why is non-specific binding detected after Western blot?

Protein ladder bands can sometimes be detected with chemiluminescent techniques due to non-specific interactions of ladder proteins with either primary or secondary antibodies (or with both). The ladder bands are only rarely detected by chromogenic substrates. The extremely high sensitivity of the chemiluminescent assays is needed to see the bands, so the actual degree of cross-reactivity is low. The non-specific cross-reactivity is difficult to predict, it often has a different pattern depending on the antibodies used. If antibodies recognize a linear epitope, the cross-reactivity may be due to sequence homology. If antibodies react with a denaturation-resistant conformational epitope it could be impossible to identify the exact reason for detected cross-reactivity. The most general way to handle this problem would be to use lower concentrations of antibodies.

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