Pierce™ 16 % Formaldehyd (w/v), methanolfrei
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Pierce™ 16 % Formaldehyd (w/v), methanolfrei
Thermo Scientific™

Pierce™ 16 % Formaldehyd (w/v), methanolfrei

Thermo Scientific Pierce Formaldehyde Ampules sind Ampullen mit hochwertigem, methanolfreiem Formaldehyd zur Verwendung als allgemeines Fixiermittel für IHC und reversiblesWeitere Informationen
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KatalognummerMenge
2890610 x 1 ml
2890810 x 10 ml
Katalognummer 28906
Preis (EUR)
65,25
Each
Menge:
10 x 1 ml
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Preis (EUR)
65,25
Each
Thermo Scientific Pierce Formaldehyde Ampules sind Ampullen mit hochwertigem, methanolfreiem Formaldehyd zur Verwendung als allgemeines Fixiermittel für IHC und reversibles Amin-vernetzendes Mittel für Protein- und Nukleinsäure-Gewebeproben.

Die Verfügbarkeit einer hochwertigen, in der Ampulle versiegelten Formaldehydlösung spart wertvolle Zeit und macht die Vorbereitung der Lösung direkt aus Paraformaldehyd und die damit verbundenen Gefahren überflüssig. Pierce Formaldehyd wird direkt aus granulärem Paraformaldehyd hergestellt und unter inerter Atmosphäre in 1 ml- und 10 ml-Ampullen versiegelt. Die Verpackung in Ampullen stabilisiert das Präparat, schützt die Lösung vor Luftoxidation und vor Licht, und ermöglicht jedes Mal den Zugriff auf „frisches“ Formaldehyd.

Merkmale von Methanol-free 16% Formaldehyde Ampules:

Frische – Formaldehydlösung bleibt in der bernsteinfarbenen Ampulle mit Sollbruchstelle stabil und frei von Verunreinigungen.
Richtige Größe – Optimale Packungsgrößen für verschiedene Anwendungen, von kulturspezifischer Zellfixierung bis zu proteinbasierten Anwendungen in der Zelle.
Praktische Ausgangskonzentration – 16%ige (w/v) Formaldehydlösung kann leicht zur gewünschten Arbeitskonzentration verdünnt werden.
Minimiert Abfall – Abpackungen von 1 ml und 10 ml ermöglichen die Auswahl desjenigen Produkts, das in weniger Abfall resultiert und die Bedenken hinsichtlich der Entsorgung minimiert.

Anwendungsgerechte Ampulle
Packungsgrößen der 16%igen Formaldehydlösung (Formalin) sind sowohl für Anwender mit niedrigem als auch hohem Volumen bestimmt. Die entsprechende Packungsgröße wird von den häufigsten Anwendungen bestimmt, für die frische, methanolfreie Formaldehydlösung benötigt wird. 16%ige (w/v) Lösung vereinfacht die Verdünnung für die jeweilige Anwendung, und die anwendungsspezifische Verpackung sorgt für weniger Abfall.

• 1 ml-Ampullen sind für proteinbasierte Anwendungen in Zellen, wie z. B. die Chromatin-Immunpräzipitation (ChIP) oder Proteininteraktionsuntersuchungen konzipiert.
• 10 ml-Ampullen sind für die Biobildgebung (High-Content-Screening/Analyse) vorgesehen, z. B. das Fixieren von Zellen auf einer Kulturplatte vor der Bildanalyse.

„Frisch zubereitet“ in Ampullen versiegelt
Unsere Formaldehydlösung wird als 16%ige (w/v) Lösung von Paraformaldehyd (reiner granularer Feststoff) in destilliertem/deionisiertem Wasser hergestellt. Die Stabilisierung der Lösung ist wichtig, da Formaldehydlösungen zu Ameisensäure oxidieren und schließlich zu Paraformaldehyd repolymerisieren. Die meisten Protokolle, für die methanolfreies Formaldehyd erforderlich ist, verweisen darauf, dass das Formaldehyd „frisch zubereitet“ sein muss. Diese Formaldehydlösung wird sofort nach der Herstellung unter inerter Atmosphäre in Ampullen versiegelt. Die Abpackung in Ampullen stabilisiert die Zubereitung und ermöglicht jedes Mal den Zugang zu „frischem“ Formaldehyd.

Für zusätzliche Sicherheit beim Öffnen von Ampullen aus Glas sollten Sie unsere Ampulenöffner verwenden, die Einweg-Sicherheitsvorrichtungen sind, die die Finger beim Öffnen einer Ampulle schützen.

Nur für Forschungszwecke. Nicht zur Verwendung bei diagnostischen Verfahren.
Specifications
Chemischer Name oder MaterialFormaldehyd
Empfohlene LagerungIm Originalbehälter, der vor direkter Sonneneinstrahlung geschützt ist, an einem trockenen, kühlen und gut belüfteten Ort lagern.
Physikalische FormFlüssig
ProduktliniePierce
Menge10 x 1 ml
Unit SizeEach

Häufig gestellte Fragen (FAQ)

Where do I find the expiry date of Pierce 16% Formaldehyde (w/v), Methanol-free (Cat. No. 28906)?

We guarantee the functionality of Pierce 16% Formaldehyde (w/v), Methanol-free for one year from date of shipment, if stored correctly. See Limited Warranties for consumables under the General Terms and Conditions of Sale.

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What are the options for crosslinking proteins to nucleic acids, and what are the differences between them?

We offer the following crosslinkers for protein to nucleic acids: formaldehyde (Cat. No. 28906), SPB (Cat. No. 23013), SDAD (Cat. No. 26169), sulfo-SDAD (Cat. No. 26175), and sulfo-SBED (Cat. No. A39260).
Formaldehyde can be used for DNA-DNA crosslinking as well as DNA-protein crosslinking. While it is good for crosslinking proteins that are in direct contact with DNA, formaldehyde cannot link proteins that may be bound in a complex with other proteins but are not in direct contact with DNA. EGS or DSG can crosslink proteins to other proteins that are in direct contact with DNA and crosslinked to DNA by formaldehyde.
SPB, Sulfo-SDAD, and Sulfo-SBED are all photoreactive crosslinkers. SPB is an NHS-ester and psoralen heterobifunctional crosslinker that conjugates primary amines on proteins to DNA via photo-activated intercalation of psoralen to pyrimidine bases. The psoralen tricyclic planar ring system intercalates into double-stranded, and to a lesser extent, single-stranded DNA and RNA. The photoreactive psoralen group provides more selective covalent binding to nucleic acids than either phenyl azide or diazerine linkers, which makes SPB the best choice. The diazerine on sulfo-SDAD and the phenyl azide on sulfo-SBED are not selective for nucleic acids and can crosslink other biomolecules in the same besides any protein-DNA interactions. Sulfo-SBED involves biotin transfer rather than actual linking.

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What fixative should I use to fix my cells or tissues for antibody labeling?

Aldehyde-based fixatives (e.g., formaldehyde, glutaraldehyde) crosslink various cellular components, which helps retain proteins and cell morphology, but some antigens can be masked by the crosslinking, requiring antigen retrieval methods to unmask the antigen binding sites. Also, aldehyde-based fixation requires permeabilization to allow entry of antibodies. Organic solvents such as methanol and acetone condense proteins and permeabilize the cells, but cell morphology can be compromised. Surface antigens can be labeled without fixation.

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What is the difference between formalin and formaldehyde?

The terms “formalin” and “formaldehyde” are often used interchangeably, although the chemical composition of each fixative is different. Formalin is made with formaldehyde but the percentage denotes a different formaldehyde concentration than formaldehyde solutions. For example, 10% neutral-buffered formalin (NBF or simply formalin) is really a 4% formaldehyde solution; the basis for this difference is that historically, formalin was prepared with commercial-grade stock formaldehyde, which is 37 to 40% formaldehyde, by diluting it 1:10 in phosphate buffer.

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What is the difference between Formaldehyde and Paraformaldehyde?

Most commercial formaldehyde is prepared with paraformaldehyde (polymeric formaldehyde) dissolved in distilled/deionized water, with methanol added to stabilize the aqueous formaldehyde. Solution stabilization is important to prevent oxidation to formic acid and the eventual repolymerization to paraformaldehyde, and therefore commercial formaldehyde may contain up to 10% methanol. To avoid using methanol-contaminated formaldehyde for fixation, many protocols recommend making “fresh” formaldehyde from paraformaldehyde immediately before sample fixation. This preparation is not necessary if using Cat. Nos. 28906 and 28908.

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