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Silencer™ Select Negativkontrolle No. 1 siRNA

Die Silencer™ Select Negative Control No. 1 siRNA ist eine nicht gezielte siRNA zur Negativ-Kontrolle, die dieselben chemischen Modifikationen fürWeitere Informationen
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KatalognummerMenge
439084440 nmol
43908435 nmol
Katalognummer 4390844
Preis (EUR)
892,65
Exklusiv online
970,00
Ersparnis 77,35 (8%)
Each
Menge:
40 nmol
Preis (EUR)
892,65
Exklusiv online
970,00
Ersparnis 77,35 (8%)
Each
Die Silencer™ Select Negative Control No. 1 siRNA ist eine nicht gezielte siRNA zur Negativ-Kontrolle, die dieselben chemischen Modifikationen für eine verbesserte Wirksamkeit besitzt wie andere Silencer™ Select siRNAs. Eigenschaften von Silencer™ Select Kontroll-siRNAs:

• Validierte siRNA-Kontrollen zur Optimierung von siRNA-Experimenten
• GAPDH-positive Kontrollfunktion in mehreren häufig verwendeten Zelllinien getestet
• Negativkontrollen mit funktionell bestätigter minimaler Auswirkung auf Zellproliferation und Zellviabilität
• Enthalten Modifikationen von Silencer™ Select zur Erhöhung der Spezifität
• Für die Verwendung in Human-, Maus- und Rattenzellen

Was sind Silencer™ Select siRNAs?
Silencer ™Select siRNAs sind unsere siRNAs der nächsten Generation. Diese siRNAs enthalten aktuelle Verbesserungen im siRNA-Design, Algorithmen zur Vorhersage von Off-Target-Effekten und chemische Modifikationen und stellen daher siRNAs mit beispielloser Effizienz, Wirksamkeit und Spezifität dar. Die Folge sind weniger fehlgeschlagene Experimente durch schlechtes Gen-Silencing und saubere und einheitlichere phänotypische Daten.

Silencer™ Select Negativkontroll-siRNAs
Negativkontroll-siRNAs – siRNAs mit Sequenzen, die gegen kein Genprodukt gerichtet sind – sind entscheidend, um die Folgen einer siRNA-Verwendung abzuschätzen und eine Referenzlinie für den Vergleich von Proben, die mit siRNAs behandelt wurden, bereitzustellen. Wir haben zwei Silencer™ Select Negative Control siRNAs entwickelt und ausgiebig getestet. Diese siRNAs enthalten dieselben Modifikationen zur Reduzierung von Off-Target-Effekten wie andere Silencer™ Select siRNAs und besitzen keine signifikante Ähnlichkeit mit Maus-, Ratten- oder Human-Gensequenzen. Bei Microarray-Analysetests zeigten diese Negative Control siRNAs nur minimale Auswirkungen auf die Genexpression. Darüber hinaus wurden diese zwei Kontrollen in multiparametrischen zellbasierten Assays getestet und in den getesteten Zelllinien wurde kein signifikanter Einfluss auf Zellproliferation, Lebensfähigkeit oder Morphologie nachgewiesen.

Qualitätskontrolle
Wir synthetisieren und reinigen jede Silencer™ Select siRNA in hochmodernen Einrichtungen, um höchsten Qualitätsansprüchen gerecht zu werden. Im Rahmen unserer strengen Qualitätskontrolle wird jedes RNA-Oligonukleotid mit MALDI-TOF-Massenspektrometrie analysiert, und die Reinheit wird durch ein analytisches HPLC-System überwacht. Jede gebundene siRNA wird durch Gel-Elektrophorese auf ein korrektes Annealing der Stränge geprüft, um ein Höchstmaß an Qualität zu gewährleisten. Das Ergebnis ist eine hochwertige siRNA, die gereinigt und einsatzbereit ist.
Nur für Forschungszwecke. Nicht zur Verwendung bei diagnostischen Verfahren.
Specifications
Zur Verwendung mit (Anwendung)RNAi, Transfektion
Marker oder FarbstoffUnkonjugiert
ProduktlinieSilencer, Silencer Select, Ambion
ProdukttypsiRNA
ReinheitHPLC
Menge40 nmol
VersandbedingungRaumtemperatur
RegelungsartNegativkontrolle
RNAi TypesiRNA
Unit SizeEach
Inhalt und Lagerung
Die siRNA wird zusammen mit nukleasefreiem Wasser für die Resuspension in einem einzelnen Röhrchen getrocknet geliefert und sollte bei -20°C gelagert werden.

Häufig gestellte Fragen (FAQ)

What are the benefits of using a vector to deliver RNAi?

Vector technologies allow you to:

Achieve transient or stable target knockdown
Perform RNAi in any cell type, even hard-to-transfect, primary, and non-dividing cells
Regulate gene inhibition with inducible siRNA expression
Select for a pure population of cells stably expressing an siRNA sequence
Control gene expression in vivo with tissue-specific promoters

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our RNAi Support Center.

Why are my cells dying after transfection?

We would suggest running a transfection reagent control only to determine if your cells are sensitive to the transfection reagent. Additionally, you can try using different cell densities and siRNA concentrations to diminish any toxic effects from the transfection itself.

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I transfected my siRNA and the mRNA levels are down, but the protein is not. Why is that?

In some cases, knockdown of a protein can be affected by other variables such as protein turnover rate, even though the RNA is knocked down. Additionally, a longer time course may be needed to see an effect on protein compared to mRNA.

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I am not getting my target knockdown. What could be the cause of this?

Please see the following possibilities and suggestions:

- How many siRNA did you test? Is there any knockdown? If there is no knockdown (<10%) in any of the siRNA, then the assay is likely the problem. Try using a different qRT-PCR assay to assess knockdown.
- What was the positioning of the qRT-PCR assay target site relative to the cut site for the siRNA? If greater than 3,000 bases away, the problem could be alternative splice transcripts.
- What are the Cts for the experiment? They should be below 35 in a 40-cycle qRT-PCR experiment.
- Did you confirm the siRNA got into the cell? We recommend using a validated positive control siRNA to check the transfection efficiency.

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I am not getting any knockdown with my siRNA. What do you suggest I try?

Please see the following possibilities and suggestions:

- Were the mRNA levels checked? The most reliable method is real-time PCR. In some cases, knockdown of a protein can be affected by other variables, such as protein turnover rate, even though the RNA is knocked down.
- How is the RNA being isolated? Has the quality of the isolated RNA been checked? Ensure that the RNA has not been degraded.
- Was a positive control used? This can help to determine whether the reagents are working and whether the siRNA was delivered correctly to the cell. Run your experiment in parallel with the positive control siRNA.
- Was a transfection control used? What is the percentage of transfected cells?
- Was a time course used? Generally, gene silencing can be assessed as early as 24 hours posttransfection. However, the duration and level of knockdown are dependent on cell type and concentration of siRNA.
- Was optimization of transfection conditions performed? You can try using different cell densities and siRNA concentrations.
- Which concentration of siRNA did you use? We recommend testing multiple concentrations between 5 nM and 100 nM.

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