Fluoreszenz-Proteinmarkierungskits
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Invitrogen™

Fluoreszenz-Proteinmarkierungskits

Mit unseren 16 verfügbaren Proteinmarkierungskits können Sie stabile Farbstoff-Protein-Konjugate für verschiedene Fluoreszenzmikroskopie-Anwendungen wie Durchflusszytometrie, IHC/IF/ICC, FISH und High-Content-Analyse erzeugen.
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KatalognummerMarker oder Farbstoff
A10235Alexa Fluor 488
A10170Alexa Fluor 350
A10236Alexa Fluor 532
A10237Alexa Fluor 546
A20174Alexa Fluor 555
A10238Alexa Fluor 568
A10239Alexa Fluor 594
A20170Alexa Fluor 633
A20173Alexa Fluor 647
A20171Alexa Fluor 660
A20172
auch als A-20172 bezeichnet
Alexa Fluor 680
F10240FITC (Fluorescein)
O10241
auch als O-10241 bezeichnet
Oregon Green 488
P30012Pacific Blue
D20655Biotin (DSB-X)
Katalognummer A10235
Preis (EUR)
912,00
Each
Marker oder Farbstoff:
Alexa Fluor 488
Preis (EUR)
912,00
Each
Unsere Proteinmarkierungskits sind in nur 90 Minuten gebrauchsfertig und enthalten eine einfach zu verwendende, vorgepackte Zentrifugensäule für eine schnelle Farbstoffentfernung und eine typische Rückgewinnung von mehr als 85 %. Jedes Kit enthält genug Reagenz für 3 bis 5 Proteinkonjugationsreaktionen. Unsere Kits liefern bessere Ergebnisse durch geringere Hintergrundfluoreszenz, weniger unspezifische Bindung und einfachere Arbeitsabläufe für die Proteinkonjugation mit 16 verschiedenen Fluorophoren.

• Fluoreszierend bis zu 1 mg Protein pro Reaktion (drei Reaktionen pro Kit)
• Etikett 0,5 bis 3 mg pro Reaktion mit DSB-X Biotin Protein Labeling Kit (fünf Reaktionen pro Kit)
• Markierte Proteine, die in 90 Minuten verwendet werden können (ca. 15 Minuten Arbeitsaufwand)
• Schnelle Reinigung von Proteinen durch schnelles Entfernen ungebundener Farbstoffe mit vorgepackten Spin-Säulen für eine über 85%ige Rückgewinnung
• Enthält detaillierte Anweisungen zur Bestimmung des Grads der Markierung (DOL)

Jedes Kit zur Proteinmarkierung enthält alles, was Sie für 3-5 separate Markierungsreaktionen und zur Reinigung der resultierenden Konjugate benötigen. Der reaktive Farbstoff hat entweder einen Succinimidyll-Ester (SE) oder einen Tetrafluorophenyl-Ester-Anteil (TFP), der effizient mit primären Aminen von Proteinen reagiert und effizient mit primären Aminen von Proteinen reagiert und stabile Farbstoff-Protein-Konjugate bildet. Jedes der im Kit enthaltenen Fläschchen mit Reaktivfarbstoff reicht für die Markierung von 1 mg verschiedener gereinigter Proteine aus, darunter Wachstumsfaktoren, Zytokine, Nanokörper, Enzyme, Zelladhäsionsmoleküle und Antikörper.

Die direkte Markierung mit Fluorophoren ermöglicht die Verwendung mehrerer primärer Antikörper desselben Isotyps (die von derselben Spezies stammen) im selben Experiment. Stabilisierende Proteine wie BSA müssen vor der Markierung aus der Probe entfernt werden

Die verschiedenen Proteinmarkierungskits
Blau fluoreszierendes Alexa Fluor 350 – Anregungs- und Emissionsmaxima von 346/442 nm
Grün fluoreszierendes Alexa Fluor 488 – Anregungs- und Emissionsmaxima von 494/519 nm; angeregt mit einer 488 nm Argonlaserlinie und nachgewiesen unter FITC/Cy2-Standardfiltern
Gelb fluoreszierendes Alexa Fluor 532 – Anregungs- und Emissionsmaxima von 530/554 nm; angeregt mit einer 532 nm Nd:YAG-Laserlinie und nachgewiesen unter Rhodamin 6G-Standardfiltern
Orange fluoreszierendes Alexa Fluor 546 – Anregungs- und Emissionsmaxima von 554/570 nm; angeregt mit einer 543 nm He-Ne-Laserlinie und nachgewiesen unter TRITC/Cy3-Standardfiltern
Orange fluoreszierendes Alexa Fluor 555 – Anregungs- und Emissionsmaxima von 555/565 nm; angeregt mit einer 543 nm He-Ne-Laserlinie und nachgeweisen unter TRITC/Cy3-Standardfiltern
Orange-rot-fluoreszierendes AlexFluor 568 – Anregungs- und Emissionsmaxima von 577/603 nm; angeregt mit einer 568 nm Kr-Laserlinie und nachgewiesen unter Rhodamin Red/Cy3.5-Standardfiltern
Rot fluoreszierendes Alexa Fluor 594 – Anregungs- und Emissionmaxima von 590/617 nm; angeregt mit einer 594 nm Kr- oder He-Ne-Laserlinie und nachgewiesen unter Texas Red Standardfiltern
Tiefrot fluoreszierendes Alexa Fluor 633 – Anregungs- und Emissionsmaxima von 632/647 nm
Tiefrot fluoreszierendes Alexa Fluor 647 – Anregungs- und Emissionsmaxima von 650/668 nm; amgeregt mit einer 633 oder 635 nm Kr- oder He-Ne-Laserlinie und nachgewiesen unter APC/Cy5-Standardfiltern erkannt.
Tiefrot fluoreszierendes Alexa Fluor 660 – Anregungs- und Emissionsmaxima von 663/690 nm
Nah-IR fluoreszierendes Alexa Fluor 680 – Anregungs- und Emissionsmaxima von 680/700 nm
Grün fluoreszierendes Fluoreszein-EX - Anregungs- und Emissionsmaxima von 494/518 nm
Oregon Green 488 – Anregungs- und Emissionsmaxima von 496/524 nm
Pacific Blue – ein durch violettes Licht anregbarer Farbstoff mit einem Anregungs- und einem Emissionsmaxima von 410/455 nm
Texas Red-X – Anregungs- und Emissionsmaxima von 595/615 nm
DSB-X Biotin – Konjugate werden reversibel an biotinbindende Proteine wie Streptavidin oder Avidin gebunden. Die Konzentration (mg/ml) der DSB-X-Biotin-markierten Antikörper-Vorbereitung kann durch Messung der Absorption der Dialysatprobe bei 280 nm bestimmt werden. Dieser Wert wird durch 1,3 oder 1,4 geteilt, wenn er in einer Lösung in einer Küvette mit einer 1 cm Weglänge gemessen wird. DSB-X Biotin absorbiert bei 280 nm nicht signifikant.

Für die Markierung kleinerer Mengen von Antikörpern (∼100 μg) empfehlen wir unsere Antikörpermarkierungskits. Nähere Informationen, Protokolle, Molekulargewichte und Grad der Markierung für jeden Farbstoff sind in der Gebrauchsanweisung des Proteinmarkierungskits zu finden.

For Research Use Only. Not for use in diagnostic procedures.
Specifications
FarbeGrün
NachweisverfahrenFluoreszenz, Fluoreszierende Substanz
Anregung/Emission494/519
MarkertypAlexa Fluor Farbstoffe
MarkierungsmethodeKonjugationsbasiert, Konjugationsbasiert
Kennzeichnungsmaßstab1 mg, 1 mg
ProduktlinieAlexa Fluor
ProdukttypProteinmarkierungskits
Menge1 kit
VersandbedingungRaumtemperatur, Raumtemperatur
Chemische ReaktivitätAmin
Labeling TargetAntikörper, Proteine
Marker oder FarbstoffAlexa Fluor 488
LöslichkeitDMSO (Dimethylsulfoxid)
Unit SizeEach
Inhalt und Lagerung
Gekühlt (2 bis 8 °C) und lichtgeschützt lagern.

Häufig gestellte Fragen (FAQ)

Can I use 50 μg of protein with Fluorescent Protein Labeling Kits?

No. We recommend using 1 mg of protein with Fluorescent Protein Labeling Kits. For smaller protein sample sizes, we recommend using Microscale Protein Labeling kits which are optimized for 20-100 µg of protein.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Cell Analysis Support Center.

What formulation of antibody should I use for conjugation for small animal in vivo imaging?

To allow for good reaction kinetics, antibodies should be in PBS buffer at a concentration of 0.5-3.0 mg/ml. The antibody must be free of preservatives (azide etc.), amine containing buffers and carrier proteins such as BSA.

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What is degree of labeling (DOL)?

Degree of labeling (DOL) describes the number of fluorophores per antibody. For in vivo labeling experiments, the DOL is restricted to a narrow range because it has significant consequences for the biodistribution and clearance of the probe. For example, for in vivo imaging, we have determined that the DOL range for the far-red Alexa Fluor dyes is 1.5 to 3 molecules per antibody for optimal optical in vivo imaging.

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Zitierungen und Referenzen (80)

Zitierungen und Referenzen
Abstract
Golgi apparatus immunolocalization of endomannosidase suggests post-endoplasmic reticulum glucose trimming: implications for quality control.
Authors:Zuber C, Spiro MJ, Guhl B, Spiro RG, Roth J
Journal:Mol Biol Cell
PubMed ID:11102520
'Trimming of N-linked oligosaccharides by endoplasmic reticulum (ER) glucosidase II is implicated in quality control of protein folding. An alternate glucosidase II-independent deglucosylation pathway exists, in which endo-alpha-mannosidase cleaves internally the glucose-substituted mannose residue of oligosaccharides. By immunogold labeling, we detected most endomannosidase in cis/medial Golgi cisternae (83.8% of immunogold ... More
Glycosylation influences the lectin activities of the macrophage mannose receptor.
Authors:Su Y, Bakker T, Harris J, Tsang C, Brown GD, Wormald MR, Gordon S, Dwek RA, Rudd PM, Martinez-Pomares L
Journal:J Biol Chem
PubMed ID:15983039
'The mannose receptor (MR) is a heavily glycosylated endocytic receptor that recognizes both mannosylated and sulfated ligands through its C-type lectin domains and cysteine-rich (CR) domain, respectively. Differential binding properties have been described for MR isolated from different sources, and we hypothesized that this could be due to altered glycosylation. ... More
An endocytosed TGN38 chimeric protein is delivered to the TGN after trafficking through the endocytic recycling compartment in CHO cells.
Authors:Ghosh RN, Mallet WG, Soe TT, McGraw TE, Maxfield FR
Journal:J Cell Biol
PubMed ID:9722606
'To examine TGN38 trafficking from the cell surface to the TGN, CHO cells were stably transfected with a chimeric transmembrane protein, TacTGN38. We used fluorescent and 125I-labeled anti-Tac IgG and Fab fragments to follow TacTGN38''s postendocytic trafficking. At steady-state, anti-Tac was mainly in the TGN, but shortly after endocytosis it ... More
Alexa dyes, a series of new fluorescent dyes that yield exceptionally bright, photostable conjugates.
Authors:Panchuk-Voloshina N, Haugland RP, Bishop-Stewart J, Bhalgat MK, Millard PJ, Mao F, Leung WY, Haugland RP
Journal:J Histochem Cytochem
PubMed ID:10449539
'Alexa 350, Alexa 430, Alexa 488, Alexa 532, Alexa 546, Alexa 568, and Alexa 594 dyes are a new series of fluorescent dyes with emission/excitation spectra similar to those of AMCA, Lucifer Yellow, fluorescein, rhodamine 6G, tetramethylrhodamine or Cy3, lissamine rhodamine B, and Texas Red, respectively (the numbers in the ... More
Removal of the membrane-anchoring domain of epidermal growth factor leads to intracrine signaling and disruption of mammary epithelial cell organization.
Authors:Wiley HS, Woolf MF, Opresko LK, Burke PM, Will B, Morgan JR, Lauffenburger DA
Journal:J Cell Biol
PubMed ID:9832559
'Autocrine EGF-receptor (EGFR) ligands are normally made as membrane-anchored precursors that are proteolytically processed to yield mature, soluble peptides. To explore the function of the membrane-anchoring domain of EGF, we expressed artificial EGF genes either with or without this structure in human mammary epithelial cells (HMEC). These cells require activation ... More