CellLight™ Actin-GFP, BacMam 2.0
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CellLight™ Actin-GFP, BacMam 2.0

CellLight™ Actin-GFP, BacMam 2.0, bietet eine einfache Möglichkeit, Aktin in lebenden Zellen mit grün fluoreszierendem Protein (GFP) zu kennzeichnen. GebenWeitere Informationen
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KatalognummerMengeZiel
C105821 Röhrchen, 1 RöhrchenAktin, Zytoskelett, Aktin, Cytoskelett
Katalognummer C10582
Preis (EUR)
686,00
Each
Menge:
1 Röhrchen, 1 Röhrchen
Ziel:
Aktin, Zytoskelett, Aktin, Cytoskelett
Preis (EUR)
686,00
Each
CellLight™ Actin-GFP, BacMam 2.0, bietet eine einfache Möglichkeit, Aktin in lebenden Zellen mit grün fluoreszierendem Protein (GFP) zu kennzeichnen. Geben Sie das Reagenz einfach zu Ihren Zellen, inkubieren Sie über Nacht, und am nächsten Morgen sind die Zellen bereit für die Analyse.

Sie möchten andere Zellstrukturen markieren? Erfahren Sie mehr über CellLight™ fluoreszierende Proteinmarkierungswerkzeuge

Dieses gebrauchsfertige Konstrukt wird mithilfe der BacMam 2.0-Technologie in Zellen transfiziert und drückt GFP mit humanem Aktin beinahe ohne zytotoxische Effekte aus. Untersuchen Sie die dynamische Wirkung von Aktin-Filamenten in lebenden Zellen und Multiplex mit anderen fluoreszierenden Proteinen oder organischen Farbstoffen.

Zellen, die CellLight™ Konstrukte exprimieren, können auch mit Formaldehyd für die Multiplex-Bildgebung mit immunzytochemischen Verfahren fixiert werden.

CellLight™ Technologie ist:
Schnell und praktisch: Einfach CellLight™ Reagenz in Ihre Zellen geben, über Nacht inkubieren und bildgebendes Verfahren nutzen — oder gefrorene, assay-fähige Zellen für den späteren Gebrauch lagern
Hocheffizient: Bis zu 90 % Transduktion einer Vielzahl von Säugetierzelllinien, einschließlich Primärzellen, Stammzellen und Neuronen
Flexibel: Ko-transduzieren Sie von mehr als einem BacMam Reagenz für Multiplex-Experimente oder Co-Lokalisationsstudien; strenge Kontrolle der Expressionsniveaus durch einfaches Variieren der Dosis
Weniger toxisch: CellLight Reagenzien™ sind nicht-replizierend in Säugetierzellen und eignen sich für die Handhabung auf der Biosicherheitsstufe (BSL) 1

BacMam Technology
CellLight™ Actin-GFP, BacMam 2.0, ist ein Fusionskonstrukt aus humanem Aktin und emGFP, das eine genaues und spezifisches Targeting für zelluläres Aktin-GFP ermöglicht. Dieses Verschmelzungskonstrukt ist im Insektenvirus Baculovirus verpackt, das in menschlichen Zellen nicht repliziert wird und in den meisten Labors als sicher für Bioschutzstufe (BSL) 1 ausgewiesen ist. Die BacMam Technologie sorgt dafür, dass die meisten Säugetierzelltypen mit hoher Effizienz und minimaler Toxizität transduziert, bzw. transfiziert werden. Diese transiente Transfektion kann nach einer über Nacht erfolgten Inkubation bis zu fünf Tage lang nachgewiesen werden – genügend Zeit für die meisten dynamischen Zellanalysen. Wie jede Transfektions-/Transduktionstechnik transfiziert/transduziert die BacMam Methode nicht alle Zellen mit der gleichen Effizienz, wodurch sie für Zellpopulationsuntersuchungen oder automatisierte Bildgebung/Zellzählung schlecht geeignet ist. CellLight™ Reagenzien sind ideal für Experimente geeignet, bei denen eine zelluläre oder subzelluläre Co-Lokalisierung erforderlich ist, oder für Zellfunktionsuntersuchungen, die eine spezielle Auflösung benötigen.
Nur für Forschungszwecke.Nicht zur Verwendung bei diagnostischen Verfahren.
Specifications
FarbeGrün, Grün
NachweisverfahrenFluoreszent, Fluoreszent
FarbstofftypGFP (EmGFP)
EmissionSichtbar
Anregungswellenlängenbereich488⁄510
Zur Verwendung mit (Geräte)Konfokalmikroskop, Fluoreszenzmikroskop, Konfokalmikroskop, Fluoreszenzmikroskop
FormFlüssig
ProduktlinieCellLight
Menge1 Röhrchen, 1 Röhrchen
VersandbedingungNasses Eis, Nasseis
ZielAktin, Zytoskelett, Aktin, Cytoskelett
VerfahrenFluoreszenzintensitätsmessung
MarkertypFluoreszierendes Protein
ProdukttypAktin
SubCellular LocalizationAktin, Cytoskelett, Cytoskeleton
Unit SizeEach
Inhalt und Lagerung
Bei 2-6 °C lagern, vor Licht schützen. Nicht einfrieren.

Häufig gestellte Fragen (FAQ)

How can I increase the transduction efficiency with the BacMam 2.0 reagents such as the the CellLight and Premo products?

Try varying particle-to-cell ratio (PPC), incubation volume, temperature and, cell density (if adherent cells are transduced). For adherent cells, we recommend a confluence of about 70%. Following the PPC, adjusting the volume is the next best parameter to change to optimize protein expression. If that doesn't work, you can also use the BacMam Enhancer Kit (Cat. No. B10107).

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Cell Analysis Support Center.

Is there any way to preserve the CellLights labeling beyond 5 days?

Cells transduced with the CellLights reagents can be stored frozen for several months after transduction, without loss of expression.

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Are the CellLights products toxic to cells?

If the viral particles are used at the level we recommend, they are very well tolerated by cells.

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For how long will the CellLights products label my cells?

The BacMam 2.0 CellLights typically express for 5 days after transduction.

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What cell types can the CellLights products be used with?

The first generation BacMam reagents were shown to efficiently transduce over 90 cell types, including stable cell lines and primary cells. With BacMam 2.0, it is now possible to also efficiently transduce primary neurons and stem cells.

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Zitierungen und Referenzen (18)

Zitierungen und Referenzen
Abstract
CapZ and actin capping dynamics increase in myocytes after a bout of exercise and abates in hours after stimulation ends.
Authors:Lin YH, Li J, Swanson ER, Russell B,
Journal:J Appl Physiol (1985)
PubMed ID:23493359
'The time course of the response and recovery after acute activity seen in exercise is not well understood. The goal of this work is to address how proteins of the thin filament (actin and its capping protein CapZ) are changed by 1 h of mechanical stimulation and return to baseline ... More
Stress fibers stabilize the position of intranuclear DNA through mechanical connection with the nucleus in vascular smooth muscle cells.
Authors:Nagayama K, Yahiro Y, Matsumoto T,
Journal:FEBS Lett
PubMed ID:22094165
Actin stress fibers (SFs) running across the top surface of the nucleus in vascular smooth muscle cells were dissected using laser nano-dissection technique to release its pretension, and the dynamic behavior of SFs, nucleus, and intranuclear DNA were investigated. SFs shortened across the top surface of the nuclei after their ... More
Human disease locus discovery and mapping to molecular pathways through phylogenetic profiling.
Authors:Tabach Y, Golan T, Hernández-Hernández A, Messer AR, Fukuda T, Kouznetsova A, Liu JG, Lilienthal I, Levy C, Ruvkun G,
Journal:
PubMed ID:24084807
Genes with common profiles of the presence and absence in disparate genomes tend to function in the same pathway. By mapping all human genes into about 1000 clusters of genes with similar patterns of conservation across eukaryotic phylogeny, we determined that sets of genes associated with particular diseases have similar ... More
Phosphatidylinositol 4,5-bisphosphate regulates CapZß1 and actin dynamics in response to mechanical strain.
Authors:Li J, Russell B,
Journal:
PubMed ID:24043251
Mechanical stress causes filament remodeling leading to myocyte hypertrophy and heart failure. The actin capping protein Z (CapZ) tightly binds to the barbed end of actin filaments, thus regulating actin assembly. The hypothesis is that the binding between CapZ and the actin filament is modulated through phosphatidylinositol 4,5-bisphosphate (PIP2) and ... More
Evaluation of nanoparticle uptake in co-culture cancer models.
Authors:Costa EC, Gaspar VM, Marques JG, Coutinho P, Correia IJ,
Journal:
PubMed ID:23922909
Co-culture models are currently bridging the gap between classical cultures and in vivo animal models. Exploring this novel approach unlocks the possibility to mimic the tumor microenvironment in vitro, through the establishment of cancer-stroma synergistic interactions. Notably, these organotypic models offer a perfect platform for the development and pre-clinical evaluation ... More