ChromaTide™ Texas Red™-12-dUTP
ChromaTide™ Texas Red™-12-dUTP
Invitrogen™

ChromaTide™ Texas Red™-12-dUTP

Mit dem Farbstoff ChromaTide™ Molecular Probes™ dUTP-, OBEA-dCTP- und UTP-markierte Nukleotide können zur Synthese markierter DNA-Sonden verwendet werden, ohne dassWeitere Informationen
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KatalognummerMenge
C763125 μl
Katalognummer C7631
Preis (EUR)
886,00
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Menge:
25 μl
Preis (EUR)
886,00
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Mit dem Farbstoff ChromaTide™ Molecular Probes™ dUTP-, OBEA-dCTP- und UTP-markierte Nukleotide können zur Synthese markierter DNA-Sonden verwendet werden, ohne dass gefährliche und teure radioisotopenmarkierte Nukleotide erforderlich sind. Diese Nukleotide können mithilfe von molekularbiologischen Standardverfahren integriert werden. Markierte Sonden können dann in In-situ-Hybridisierungs-, Microarray- oder Blotting-Protokollen eingesetzt werden. Mit dem Farbstoff ChromaTide™ markierte Nukleotide sind in verschiedenen fluoreszierenden Farben erhältlich, die die mehrfarbige Analyse erleichtern.

Spezifikation der ChromaTide™ Markierten Nukleotide:
• Ex/Em von Farbstoffen: Texas Red™-12-dUTP (595/615 nm)
• Länge des alkynolaminischen Linkers: 12 Atome


Verfahren zur Integration von ChromaTide™ Nukleotiden in Sonden
• Nick Translation
• Random-Priming
• Endmarkierung mit terminaler Desoxynucleotidyltransferase
• Reverse Transkription
• PCR-Amplifikation


Für spezifische Richtlinien für jedes dieser Verfahren siehe Methoden für die enzymatische Inkorporation von ChromaTide™ DUTPs

Alexa Fluor™ und BODIPY™ Fluoreszenzfarbstoffe erzeugen ausgezeichnete Sonden
Mit markierten Nukleotiden hergestellte Sonden können für mehrfarbige Techniken wie die in-situ-Hybridisierung und Hybridisierung auf Arrays verwendet werden. Unsere firmeneigenen Farbstoffkonjugate BODIPY™ und Alexa Fluor™ sind außergewöhnlich hell, photostabil und grundsätzlich pH-unempfindlich. Das schmale Emissionsprofil der BODIPY™ Farbstoffe sorgt für minimale spektrale Überlappung. Die Alexa Fluor™ Farbstoffe sind hochgradig wasserlöslich, ebenso die DNA-Sonden, die aus ihnen hergestellt werden. Sie sind daher die Marker der Wahl für die Fluoreszenz-in-situ-Hybridisierung.

Lange Linker verbessern die Leistung
Die ChromaTide™ dUTP- und UTP-Nukleotide werden an der C-5-Position von Uridin über einen eindeutigen Alkynylamin-Linker modifiziert, der einen Spacer zwischen dem Nukleotid und dem Farbstoff anlegt, um Interaktionen zwischen diesen beiden zu reduzieren. Die Nummer im Produktnamen, z. B. “12” in Fluorescein-12-dUTP gibt die Nettolänge des Spacers in Atomen an. Diese Spacer führen zu helleren Konjugaten und einer verbesserten Hapten-Zugänglichkeit für sekundäre Nachweisreagenzien.

Vollständige Liste unserer ChromaTide™ Reagenzien: Mit Molecular Probes ChromaTide™ and aha markierte Nukleotide—Tabelle 8.5.
Weitere Informationen zu diesen Markierungsreagenzien finden Sie im Molecular Probes™ Handbuch in Abschnitt 8.2—Markierung von Oligonukleotiden und Nukleinsäuren.

Nur für Forschungszwecke. Nicht für therapeutische oder diagnostische Zwecke bei Menschen und Tieren.
Nur für Forschungszwecke. Darf nicht für diagnostische Verfahren eingesetzt werden.
Specifications
MarkierungsmethodeDirekte Markierung
Marker oder FarbstoffTexas Red™
Menge25 μl
VersandbedingungNasseis
Konzentration1 mmol
ProduktlinieChromaTide, Texas Red
Unit SizeEach
Inhalt und Lagerung
Bei -5 bis -30 °C lagern und vor Licht schützen.

Häufig gestellte Fragen (FAQ)

I'm getting high background after labeling with ChromaTide nucleotides. What do you recommend I do?

You can try to purify the ChromaTide labeled probe with an appropriate spin column-based method to remove unincorporated ChromaTide nucleotides. Ethanol precipitation may not efficiently remove the unincorporated ChromaTide nucleotides, so a spin column will need to be used.

The nucleic acid probe is not fluorescent after labeling with ChromaTide nucleotides. What do you recommend I try?

- Check the base-to-dye ratio to determine the level of incorporation of the ChromaTide nucleotides. Since fluorescent detection may be affected by underlabeling, overlabeling, instrument sensitivity, or other factors, the base-to-dye ratio is a better indicator of incorporation efficiency.
- ChromaTide nucleotides may not have been incorporated well in the enzymatic labeling reaction. Make sure that the enzymatic method used is compatible with the particular fluorescent ChromaTide nucleotide, since some methods may not be appropriate for all applications. You may also need to further optimize the enzymatic incorporation method, for example by optimizing enzyme concentration, incubation time, concentration, and ratio of labeled and unlabeled nucleotides. For PCR, a lower fidelity polymerase may give higher incorporation rates; however, incorporation rates will be generally low using PCR.
- Check the fluorescent filter used for detection to make sure it is compatible with the dye. You can also test a small drop of the undiluted fluorescent ChromaTide nucleotide in your filter to make sure you can image the dye alone before it is conjugated to the oligonucleotide. The fluorescence emission of Alexa Fluor 647 is not visible by eye and will require a far-red imaging system for detection.

Can ChromaTide nucleotides be used for labeling nucleic acids in live cells?

No, they are not cell permeant so they are only suitable for in vitro incorporation methods. The fluorescent dyes and phosphate groups are too highly charged to allow the nucleotides to penetrate the membrane of an intact cell. Nonfluorescent nucleosides without phosphates such as EdU, EU, or BrdU can be used for live cell nucleic acid incorporation studies.

How do I determine the incorporation efficiency of the ChromaTide Labeling Nucleotides after enzymatic incorporation?

The base-to-dye ratio is determined by measuring the absorbance of the nucleic acid at 260 nm and the absorbance of the dye at its absorbance maximum. Using the extinction coefficients for the appropriate dye and nucleic acid, you can then calculate the base-to-dye ratio for the labeled nucleic acid using the Beer-Lambert law. Detailed instructions can be found in these product manuals: (http://tools.thermofisher.com/content/sfs/manuals/td07604.pdf, http://tools.thermofisher.com/content/sfs/manuals/td07605.pdf).

What is the average dye to base incorporation rate when enzymatically incorporating ChromaTide nucleotides?

The average incorporation is one dye for every 100-150 bases, so the ChromaTide fluorescently labeled nucleotides typically produce the lowest labeling rates of the nucleic acid labeling methods we offer.

Zitierungen und Referenzen (8)

Zitierungen und Referenzen
Abstract
Condensation of plasmid DNA with polylysine improves liposome-mediated gene transfer into established and primary muscle cells.
Authors:Vitiello L, Chonn A, Wasserman JD, Duff C, Worton RG
Journal:Gene Ther
PubMed ID:9156800
'Cationic liposomes provide a means to introduce genes into cells both ex vivo and in vivo. In the past few years their use has been described in several tissues, e.g. lungs, liver, endothelium, brain. In this study we evaluated a commercially available poly-cationic liposome formulation in delivering a reporter gene ... More
Inheritance of a pre-inactivated paternal X chromosome in early mouse embryos.
Authors:Huynh KD, Lee JT
Journal:Nature
PubMed ID:14661031
'In mammals, dosage compensation ensures equal X-chromosome expression between males (XY) and females (XX) by transcriptionally silencing one X chromosome in XX embryos. In the prevailing view, the XX zygote inherits two active X chromosomes, one each from the mother and father, and X inactivation does not occur until after ... More
Substantial background reduction in ligase-based apoptosis detection using newly designed hairpin oligonucleotide probes.
Authors:Didenko VV, Boudreaux DJ, Baskin DS
Journal:Biotechniques
PubMed ID:10631490
DNA methylation promotes Aurora-B-driven phosphorylation of histone H3 in chromosomal subdomains.
Authors:Monier K, Mouradian S, Sullivan KF,
Journal:J Cell Sci
PubMed ID:17164288
Confinement of enzymatic reactions to nuclear and chromosomal subdomains regulates functional organization of the nucleus. Aurora-B kinase regulates cell-cycle-dependent phosphorylation of chromosomal substrates through sequential localization to a series of sites on chromosomes and the mitotic spindle. In G2 nuclei, Aurora-B recruitment to heterochromatin restricts histone H3S10 phosphorylation to a ... More
Spectral karyotyping combined with locus-specific FISH simultaneously defines genes and chromosomes involved in chromosomal translocations.
Authors:Tonon G, Roschke A, Stover K, Shou Y, Kuehl WM, Kirsch IR
Journal:Genes Chromosomes Cancer
PubMed ID:10719373
Genes that play roles in malignant transformation have often been found proximate to cancer-associated chromosomal breakpoints. Identifying genes that flank chromosomal reconfigurations is thus essential for cancer cytogenetics. To simplify and expedite this identification, we have developed a novel approach, based on simultaneous spectral karyotyping and fluorescence in situ hybridization ... More