Di-8-ANEPPS
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Invitrogen™

Di-8-ANEPPS

ANEP-Farbstoffe sind Moleküle, die als Reaktion auf elektrische Potentialänderungen in ihrer Umgebung fluoreszieren Dabei handelt es sich um schnell reagierendeWeitere Informationen
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KatalognummerMenge
D31675 mg
Katalognummer D3167
Preis (EUR)
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ANEP-Farbstoffe sind Moleküle, die als Reaktion auf elektrische Potentialänderungen in ihrer Umgebung fluoreszieren Dabei handelt es sich um schnell reagierende Sonden, die durch Veränderung ihrer elektronischen Struktur und folglich ihrer Fluoreszenzeigenschaften als Reaktion auf Veränderungen im umgebenden elektrischen Feld arbeiten. Ihr optisches Ansprechen ist ausreichend schnell zum Nachweis vorübergehender Potentialveränderungen (im Millisekundenbereich) in anregbaren Zellen, einschließlich einzelner Neuronen, Herzzellen und intakter Hirnzellen. Dagegen ist die Größenordnung ihrer potentialabhängigen Fluoreszenzänderung oft gering; Sonden mit schneller Reaktion zeigen typischerweise 2 bis 10 % Fluoreszenzänderung pro 100 mV. Weiterhin zeigen diese Farbstoffe die potentialabhängige Verschiebung in ihren Anregungsspektren und folgliche Ermöglichung der Quantifizierung des Membranpotentials mithilfe von Messungen des Anregungsverhältnisses.

Weitere Informationen zu Ionenindikatoren wie Calcium-, Kalium-, pH-Wert- und Membranpotentialindikatoren ›

Spezifikationen für potentialabhängige ANEP-Farbstoffe:
• Zwitterionisches Molekül, weniger anfällig für Internalisierung als di-4-ANEPPS, was eine längere Beobachtung ermöglicht
• Gebunden an Modell-Phospholipidmembranen betragen die Anregungs-/Emissionsmaxima (Ex/Em) ∼465/635 nm (spektrale Eigenschaften sind jedoch in hohem Maße von der Umgebung abhängig)
• Erst nach Bindung an Membranen fluoreszierend
• Löslich in Ethanol, DMSO und DMF (di-2-ANEPEQ ist ein wasserlöslicher ANEP-Farbstoff)
• Farbstoff wird durch direkte Zugabe einer Stammlösung in Zellkulturmedien mit Pluronic™ F-127 oder durch retrograde Markierung in Zellen eingebracht
• Schnell ansprechende Sonde, geeignet für die Erkennung von Potentialänderungen der Membran im Bereich von unter einer Millisekunde


Anwendungen für potentiometrische Sonden
Die Plasmamembran der Zelle hat typischerweise ein Transmembranpotential von etwa -70 mV (innen negativ) als Folge von K+-, Na+- und Cl--Konzentrationsgradienten, die durch aktive Transportprozesse aufrechterhalten werden. Potentiometrische Sonden bieten ein indirektes Verfahren zum Nachweis der Translokation dieser Ionen.

Anstiege und Abnahmen des Membranpotentials - das als Membranhyperpolarisation bzw. -depolarisation bezeichnet wird - spielen in vielen physiologischen Prozessen eine zentrale Rolle, einschließlich der Nervenimpulsausbreitung, Muskelkontraktion, Signalübertragung zwischen Zellen und Steuerung (Gating) von Ionenkanälen. Potentiometrische Sonden sind wichtige Hilfsmittel für die Untersuchung solcher Prozesse.

Mehr ANEP-Farbstoffe
Wir bieten ANEP-Farbstoffe in verschiedenen Formen an. Weitere Informationen zu diesen Sonden finden Sie im Abschnitt 22.2, Fast-Response Probes im Molecular Probes™ Handbuch.

Nur für Forschungszwecke. Nicht für therapeutische oder diagnostische Zwecke bei Menschen oder Tieren vorgesehen.
Nur für Forschungszwecke. Nicht zur Verwendung bei diagnostischen Verfahren.
Specifications
NachweisverfahrenFluoreszent
Menge5 mg
VersandbedingungRaumtemperatur
Subzelluläre LokalisationZellmembranen & Lipide
FarbeOrange
Zur Verwendung mit (Geräte)Fluoreszenzmikroskop
ProdukttypANEP-Farbstoff
Unit SizeEach
Inhalt und Lagerung
Lagerung bei Raumtemperatur und vor Licht geschützt

Häufig gestellte Fragen (FAQ)

What are the excitation/emission maxima for Di-8-ANEPPS (Cat. No. D3167)?

Di-8-ANEPPS dye (Cat. No. D3167) is essent­ially nonfluorescent until bound to membranes. The excitation/emission maxima for Di-8-ANEPPS when bound to model phospholipid membranes are ~465/635 nm but spectral properties are highly dependent on the environment.

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I am seeing high background outside of my neuronal cells when using membrane potential indicators. What can I do to reduce background?

If you use our FluoVolt Membrane Potential Kit (Cat. No. F10488), the kit provides a background suppressor to reduce this problem. For other indicators, consider the use of BackDrop Background Suppressor (Cat no. R37603, B10511, and B10512).

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What is the difference between fast and slow-response membrane potential probes?

Molecules that change their structure in response to the surrounding electric field can function as fast-response probes for the detection of transient (millisecond) potential changes. Slow-response dyes function by entering depolarized cells and binding to proteins or membranes. Increased depolarization results in additional dye influx and an increase in fluorescence, while hyperpolarization is indicated by a decrease in fluorescence. Fast-response probes are commonly used to image electrical activity from intact heart tissues or measure membrane potential changes in response to pharmacological stimuli. Slow-responding probes are often used to explore mitochondrial function and cell viability.

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What type of membrane potential indicators do you offer and how should I choose one for my experiment?

A membrane potential indicator selection guide can be found here (https://www.thermofisher.com/us/en/home/life-science/cell-analysis/cell-viability-and-regulation/ion-indicators/membrane-potential-indicators.html).

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Zitierungen und Referenzen (94)

Zitierungen und Referenzen
Abstract
Authors:
Journal:
PubMed ID:18198177
Exercise training attenuates coronary smooth muscle phenotypic modulation and nuclear Ca2+ signaling.
Authors:Wamhoff BR, Bowles DK, Dietz NJ, Hu Q, Sturek M
Journal:Am J Physiol Heart Circ Physiol
PubMed ID:12388302
'Physical inactivity is an independent risk factor for coronary heart disease, yet the mechanism(s) of exercise-related cardioprotection remains unknown. We tested the hypothesis that coronary smooth muscle after exercise training would have decreased mitogen-induced phenotypic modulation and enhanced regulation of nuclear Ca(2+). Yucatan swine were endurance exercise trained (EX) on ... More
Ratiometric measurement of endothelial depolarization in arterioles with a potential-sensitive dye.
Authors:Beach JM, McGahren ED, Xia J, Duling BR
Journal:Am J Physiol
PubMed ID:8764277
'A fluorescence ratio technique based on the voltage-sensitive dye 1-(3-sulfonatopropyl)-8-[beta-[2-di-n-butylamino)-6-naphythyl++ +]vinyl] pyridinium betaine (di-8-ANEPPS)has been developed for recording membrane potential changes during vascular responses of arterioles. Perfusion of hamster cheek pouch arterioles with the dye labeled the endothelial cell layer. voltage responses from the endothelium of intact arterioles were determined ... More
Spatially non-uniform Ca2+ signals induced by the reduction of transverse tubules in citrate-loaded guinea-pig ventricular myocytes in culture.
Authors:Lipp P, Hüser J, Pott L, Niggli E
Journal:J Physiol
PubMed ID:9003546
'1. Ratiometric confocal microscopy and the whole-cell patch clamp technique were used to simultaneously record intracellular Ca2+ transients and membrane currents from guinea-pig ventricular myocytes. Intracellular dialysis with the low-affinity Ca2+ buffer citrate enabled us to record and analyse Ca2+ transients caused by Ca2+ influx alone and by additional Ca2+ ... More
The effect of asymmetric surface potentials on the intramembrane electric field measured with voltage-sensitive dyes.
Authors:Xu C, Loew LM
Journal:Biophys J
PubMed ID:12668484
'Ratiometric imaging of styryl potentiometric dyes can be used to measure the potential gradient inside the membrane (intramembrane potential), which is the sum of contributions from transmembrane potential, dipole potential, and the difference in the surface potentials at both sides of the membrane. Here changes in intramembrane potential of the ... More