BODIPY™ TR-X NHS Ester (Succinimidyl Ester)
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BODIPY™ TR-X NHS Ester (Succinimidyl Ester)

BODIPY™ TR-X-Farbstoff ist ein heller, rot fluoreszierender Farbstoff mit ähnlicher Erregung und Emission wie Rhodamin Red™ und Alexa Fluor™ 594.Weitere Informationen
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KatalognummerMenge
D61165 mg
Katalognummer D6116
Preis (EUR)
560,65
Exklusiv online
748,00
Ersparnis 187,35 (25%)
Each
Menge:
5 mg
Preis (EUR)
560,65
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BODIPY™ TR-X-Farbstoff ist ein heller, rot fluoreszierender Farbstoff mit ähnlicher Erregung und Emission wie Rhodamin Red™ und Alexa Fluor™ 594. Es hat einen hohen Extinktionskoeffizienten und eine hohe Fluoreszenzquantenausbeute und ist relativ unempfindlich gegenüber Polarität und pH-Schwankungen von Lösungsmitteln. Im Gegensatz zu den hochwasserlöslichen Fluorophoren Alexa Fluor™ 488 und Fluorescein (FITC) haben BODIPY™ Farbstoffe einzigartige hydrophobe Eigenschaften, die sich ideal zum Färben von Lipiden, Membranen und anderen lipophilen Verbindungen eignen. Der BODIPY™ TR-X Farbstoff hat im erregten Zustand eine relativ lange Lebensdauer (normalerweise 5 Nanosekunden oder länger), was für polarisationsbasierte Fluoreszenzassays und einen großen Zweiphotonenquerschnitt für die Multiphotonenerregung nützlich ist. Zusätzlich zu reaktiven Farbstoffformulierungen bieten wir den Farbstoff BODIPY™ TR-X an, der mit einer Vielzahl von Antikörpern, Peptiden, Proteinen, Markierungssubstanzen und Amplifikationssubstraten konjugiert ist, und für die Zellmarkierung und den Nachweis optimiert ist.

Der NHS-Ester (oder Succinimidylester) von BODIPY™ TR-X ist das beliebteste Hilfsmittel für die Konjugierung des Farbstoffs mit einem Protein oder Antikörper. NHS-Ester können zur Markierung der primären Amine (R-NH2) von Proteinen, aminmodifizierten Oligonukleotiden und weiteren aminhaltigen Molekülen verwendet werden. Die daraus resultierenden BODIPY™ TR-X-Konjugate weisen helle Fluoreszenz, schmale Emissionsbandbreiten und eine relativ lange Lebensdauer des erregten Zustands auf, was für Fluoreszenzpolarisierungsassays und Zweiphotonenerregungsmikroskopie (TPE) nützlich sein kann.

Dieser reaktive Farbstoff enthält einen 7 Atome langen Aminohexanoyl-Spacer („X“) zwischen dem Fluorophor und der NHS-Estergruppe. Dieser Spacer hilft, den Fluorophor von seinem Anhaftungspunkt zu trennen und so die Interaktion des Fluorophors mit dem Biomolekül, an das er konjugiert ist, zu reduzieren.

Ausführliche Informationen zum BODIPY™ TR-X NHS-Ester:

Fluorophoremarkierung: BODIPY™ TR-X Farbstoff
Reaktive Gruppe: NHS-Ester (Succinimidylester)
Reaktivität: Primäre Amine auf Proteinen und Liganden, aminmodifizierte Oligonukleotide
Anregungs-/Emissionsmaxima (Ex/Em) des Konjugats: 588/616 nm
Extinktionskoeffizient: 68.000 cm-1M-1
Molekulargewicht: 634,46

Typische Konjugationsreaktion
Aminreaktive Reagenzien können mit praktisch jedem Protein oder Peptid konjugiert werden (das mitgelieferte Protokoll ist für IgG-Antikörper optimiert). Die Reaktion ist auf beliebige Proteinmengen skalierbar, optimale Ergebnisse erzielen Sie jedoch bei einer Proteinkonzentration von mindestens 2 mg/ml. Wir empfehlen Versuche mit drei verschiedenen Markierungsgraden unter Verwendung von drei unterschiedlichen molaren Verhältnissen von reaktivem Reagenz zu Protein.

Der BODIPY™ NHS-Ester ist in der Regel in hochwertigem wasserfreiem Dimethylformamid (DMF) oder Dimethylsulfoxid (DMSO) aufgelöst. Die Reaktion erfolgt in 0,1–0,2 M Natriumbikarbonat-Puffer, pH-Wert 8,3, bei Raumtemperatur 1 Stunde lang. Da der pKa-Wert des Amino-Terminus niedriger ist als der der epsilon-Aminogruppe des Lysin, erreichen Sie möglicherweise eine stärker selektive Markierung des Amino-Terminus mit einem Puffer, der näher am neutralen pH-Wert liegt.

Konjugataufreinigung
Markierte Antikörper werden in der Regel von freiem BODIPY™ Farbstoff durch Einsatz einer Gel-Filtrationssäule wie Sephadex™ G-25, BioGel™ P-30 oder ähnlichem getrennt. Wählen Sie bei sehr großen bzw. kleinen Proteinen ein Gelfiltrationsmedium mit geeigneter molekularer Ausschlussgrenze (MWCO), oder entscheiden Sie sich für eine Reinigung per Dialyse. Wir bieten verschiedene Aufreinigungskits, die für unterschiedliche Mengen von Antikörperkonjugat optimiert sind:
Antikörperkonjugat-Aufreinigungskit für 0,5 – 1 mg (A33086)
Antikörperkonjugat-Aufreinigungskit für 20 – 50 µg (A33087)
Antikörperkonjugat-Aufreinigungskit für 50 – 100 µg (A33088)

Weitere Informationen zur Protein- und Antikörpermarkierung
Wir bieten eine breite Auswahl an Molecular Probes™ Antikörper- und Proteinmarkierungskits, passend zu Ihrem Ausgangsmaterial und Ihrer Experimentanordnung. Weitere Optionen finden Sie unter Antikörper-Markierungskits, oder nutzen Sie unser Auswahlwerkzeug für die Markierungschemie. Weitere Informationen zu unseren Markierungskits finden Sie unter Protein- und Nukleinsäuremarkierungskits—Kapitel 1.2 im Molecular Probes™ Handbuch.


’’’Wenn Sie in unserem Online-Katalog das Gesuchte nicht finden, erstellen wir gern für Sie ein Antikörper- oder Proteinkonjugat nach Ihren individuellen Vorgaben. Unser individualisierter Konjugationsservice arbeitet effizient und absolut vertraulich, und wir verbürgen uns für die Qualität unserer Arbeit. Wir sind ISO 9001:2000 zertifiziert.
Nur für Forschungszwecke. Nicht zur Verwendung bei diagnostischen Verfahren.
Specifications
Chemische ReaktivitätAmin
Emission616 nm
Anregung588 nm
Marker oder FarbstoffBODIPY™ TR
ProdukttypFarbstoff
Menge5 mg
Reaktiver TeilAktiv-Ester, Succinimidylester
VersandbedingungRaumtemperatur
MarkertypBODIPY Farbstoffe
ProduktlinieBODIPY
Unit SizeEach
Inhalt und Lagerung
Bei -5 bis -30 °C lagern und vor Licht schützen.

Zitierungen und Referenzen (11)

Zitierungen und Referenzen
Abstract
Simultaneous red/green dual fluorescence detection on electroblots using BODIPY TR-X succinimidyl ester and ELF 39 phosphate.
Authors:Martin K, Hart C, Schulenberg B, Jones L, Patton WF
Journal:Proteomics
PubMed ID:11987124
'A two-color fluorescence detection method is described based upon covalently coupling the succinimidyl ester of BODIPY TR-X dye to proteins immobilized on polyvinylidene difluoride membranes, followed by detection of target proteins using the fluorogenic, precipitating substrate ELF 39-phosphate in combination with alkaline phosphatase conjugated reporter molecules. This results in all ... More
Multiphoton confocal microscopy using a femtosecond Cr:forsterite laser.
Authors:Liu TM, Chu SW, Sun CK, Lin BL, Cheng PC, Johnson I
Journal:Scanning
PubMed ID:11534811
'With its output wavelength covering the infrared penetrating window of most biological tissues at 1,200-1,250 nm, the femtosecond Cr:forsterite laser shows high potential to serve as an excellent excitation source for the multiphoton fluorescence microscope. Its high output power, short optical pulse width, high stability, and low dispersion in fibers ... More
Single-molecule detection of specific nucleic acid sequences in unamplified genomic DNA.
Authors:Castro A, Williams JG
Journal:Anal Chem
PubMed ID:9322430
'A new technique is described for the rapid detection of specific nucleic acid sequences in unamplified DNA samples. The method consists of using two nucleic acid probes complementary to different sites on a target DNA sequence. The two probes are each labeled with different fluorescent dyes. When mixed with a ... More
Protein-free parallel triple-stranded DNA complex formation.
Authors:Shchyolkina AK, Timofeev EN, Lysov YP, Florentiev VL, Jovin TM, Arndt-Jovin DJ
Journal:Nucleic Acids Res
PubMed ID:11160932
'A 14 nt DNA sequence 5''-AGAATGTGGCAAAG-3'' from the zinc finger repeat of the human KRAB zinc finger protein gene ZNF91 bearing the intercalator 2-methoxy,6-chloro,9-amino acridine (Acr) attached to the sugar-phosphate backbone in various positions has been shown to form a specific triple helix (triplex) with a 16 bp hairpin (intramolecular) ... More
Rapid determination of single base mismatch mutations in DNA hybrids by direct electric field control.
Authors:Sosnowski RG, Tu E, Butler WF, O'Connell JP, Heller MJ
Journal:Proc Natl Acad Sci U S A
PubMed ID:9037016
'We have demonstrated that controlled electric fields can be used to regulate transport, concentration, hybridization, and denaturation of single- and double-stranded oligonucleotides. Discrimination among oligonucleotide hybrids with widely varying binding strengths may be attained by simple adjustment of the electric field strength. When this approach is used, electric field denaturation ... More