FluoSpheres™ Polystyrene Microspheres, 15 μm, orange fluorescent (540/560), for blood flow determination
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FluoSpheres™ Polystyrene Microspheres, 15 μm, orange fluorescent (540/560), for blood flow determination

Mikrosphären (auch Latex-Beads oder Latexpartikel genannt) sind sphärische Partikel im kolloidalen Größenbereich, die aus einem amorphen Polymer wie Polystyrol hergestelltWeitere Informationen
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KatalognummerMenge
F884110 mL
Katalognummer F8841
Preis (EUR)
670,00
Each
Menge:
10 mL
Preis (EUR)
670,00
Each
Mikrosphären (auch Latex-Beads oder Latexpartikel genannt) sind sphärische Partikel im kolloidalen Größenbereich, die aus einem amorphen Polymer wie Polystyrol hergestellt werden. Unsere Molecular Probes™ FluoSpheres™ Beads werden aus hochwertigem, ultrareinem Polystyrol hergestellt und sind einer breiten Palette an proprietären Farbstoffen beladen, um intensiv fluoreszierende Beads zu erzeugen, die in der Regel wenig oder gar kein Photobleaching aufweisen, selbst wenn sie mit der intensiven Beleuchtung erregt werden, die für die Fluoreszenzmikroskopie erforderlich ist.

FluoSpheres™ Mikrosphären im Bereich von 10–15 µm wurden speziell für regionale Blutflussstudien in Geweben und Organen entwickelt. Üblicherweise werden die Mikrosphären für diese Arten von Studien an den gewünschten Stellen im Kreislaufsystem injiziert und schlussendlich in die Kapillaren eingebracht, wo sie extrahiert werden und die Fluoreszenz quantifiziert werden kann. Die Verwendung fluoreszierender Mikrosphären beseitigt die Strahlungsgefahren und Entsorgungsprobleme, die mit radioaktiv markierten Mikrosphären verbunden sind. Bei guter spektraler Korrektur können bis zu sieben oder mehr gleichzeitig zirkulierende FluoSpheres™ Mikrosphären voneinander unterschieden werden. Mikrosphären, die in Gewebe und Organe perfundiert oder injiziert wurden, behalten ihre Fluoreszenz auch nach einer seriellen histologischen Sektionierung. Unsere FluoSpheres™ Mikrokugeln zur Bestimmung des Blutflusses, die in elf unterscheidbaren Fluoreszenzfarben erhältlich sind, sind auch mit Blutflussanalysatorsystemen kompatibel, die eine automatisierte Extraktion und Analyse durchführen.

FluoSpheres™ Mikrokugeln – Spezifikationen:

Markierung (Anregung/Emission): Orange fluoreszierend (540/560)
Nenndurchmesser der Beads: 15 µm

Auswahl für FluoSpheres™ Fluoreszenz-Mikrokugeln
Neben den Mikrokugeln für Blutflussstudien sehen Sie sich unser komplettes Angebot an fluoreszierenden Mikrokugeln an. Unter diesen Produkten finden Sie Beads mit diesen Auswahlmöglichkeiten:
• Zehn fluoreszierende Farben
• Zehn Nenndurchmesser der Beads: 0,02 µm, 0,04 µm, 0,1 µm, 0,2 µm, 0,5 µm, 1,0 µm, 2,0 µm, 4,0 µm, 10,0 µm und 15,0 µm
• Vier Oberflächenmodifikationen für die Proteinkopplung: Carboxylat, Sulfat, Aldehyd-Sulfat, Amin
• Mikrokugeln, die zusätzlich mit Streptavidin, NeutrAvidin, Biotin, Europium und Platin vorgekoppelt sind

Auswahl für ungefärbte Mikrokugeln
Wir bieten auch Hunderte von Auswahlmöglichkeiten für UltraClean™ tensidfreie Mikrokugeln für Forschungs- und kommerzielle Anwendungen an.

Wir fertigen ein kundenspezifisches Mikrokugelprodukt für Sie an
Wir bearbeiten auf Anfrage Sonderanfertigungen. Beispielsweise können FluoSpheres™ Beads mit Intensitäten vorbereitet werden, die niedriger sind als die unserer regulären Auswahl, was in einigen mehrfarbigen Anwendungen wünschenswert ist. Unser individualisierter Konjugationsservice arbeitet effizient und absolut vertraulich, und wir verbürgen uns für die Qualität unserer Arbeit. Wir sind ISO 9001:2000 zertifiziert.

Nur für Forschungszwecke. Nicht für therapeutische oder diagnostische Zwecke an Tieren und Menschen bestimmt.
Nur für Forschungszwecke. Nicht zur Verwendung bei diagnostischen Verfahren.
Specifications
Konzentration1,0 x 106 Beads⁄ml
ProduktlinieFLUOSPHERES
Menge10 mL
VersandbedingungRaumtemperatur
FarbeOrange
Durchmesser (metrisch)15 μm
MaterialPolystyrol
ProdukttypMikrokugel
Unit SizeEach
Inhalt und Lagerung
Im Kühlschrank (2 bis 8 °C) aufbewahren und vor Licht schützen.

Häufig gestellte Fragen (FAQ)

I want to use fluorescent microspheres for blood tracing studies. What functional group should be on the surface?

We offer FluoSpheres fluorescent microspheres for tracer studies that are 1, 10 and 15 µm in diameter, with various wavelengths. If those sizes or available colors are not optimal for your application, then we recommend carboxylate-modified microspheres, which are available in a wide range of sizes and colors.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Cell Analysis Support Center.

I want to use fluorescent microspheres for blood tracing studies. What functional group should be on the surface of the beads?

We offer FluoSpheres fluorescent microspheres that are available in 10 and 15 µm diameters, with various wavelengths, for tracer studies. If those sizes or available colors are not optimal for your system, then we recommend the carboxylate-modified microspheres, which are available in a wide range of sizes and colors.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Cell Analysis Support Center.

What is the warranty for FluoSpheres microspheres?

The warranty period for FluoSpheres microspheres is 1-year from the date of shipment.

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After washing and centrifugation, there was only a very small pellet left of my microsphere beads and the solution was transparent. Why is this?

Centrifugation is not an effective way to collect smaller microspheres; many particles remain in the solution even if you can visualize a small pellet. For beads less than 1 µm in diameter, we recommend washing by either:

Cross-flow filtration, as these particles have a very high compression modulus and can withstand high g-forces without risk of harm or dialysis with a 500 kDa MWCO
Note: Microspheres greater than 1 µm in diameter can be centrifuged at 1,300 rpm.

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I've had my microspheres for over a year, and I'm wondering if they're still good to use. What are some good ways to check their functionality?

Bacterial contamination is the most common cause of microspheres becoming unusable. Many of our particles are supplied with a low level of sodium azide to prevent bacterial contamination, but sometimes this can still occur. Bacterial contamination is best assessed by plating on appropriate growth medium and checking the plates after 72 hr.

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Zitierungen und Referenzen (4)

Zitierungen und Referenzen
Abstract
Perfluorohexane vapor has only minor effects on spatial pulmonary blood flow distribution in isolated rabbit lungs.
Authors:Hübler M, Heller AR, Bleyl JU, de Abreu MG, Kroll T, Rössel T, Koch T
Journal:Anesth Analg
PubMed ID:15781532
'We tested the hypothesis that administration of perfluorohexane (PFH) vapor does not significantly affect the relative pulmonary blood flow (Qrel) distribution in isolated rabbit lungs. Fourteen isolated rabbit lungs were perfused with a Krebs-Henseleit buffer solution (flow 150 mL/min). Pulmonary afterload was set to 3 mm Hg. The lungs were ... More
Validation of fluorescent-labeled microspheres for measurement of regional organ perfusion.
Authors:Glenny RW, Bernard S, Brinkley M
Journal:J Appl Physiol
PubMed ID:8335595
'Estimations of dog lung, pig heart, and pig kidney regional perfusion by use of fluorescent-labeled microspheres were compared with measurements obtained with standard radiolabeled microspheres. Pairs of radio- and fluorescent-labeled microspheres (15 microns diam, 6 colors) were injected into a central vein of a supine anesthetized dog and the left ... More
Development of a fluorescent microsphere technique for rapid histological determination of cerebral blood flow.
Authors:Eucker SA, Hoffman BD, Natesh R, Ralston J, Armstead WM, Margulies SS,
Journal:Brain Res
PubMed ID:20193669
'The purpose of this study was to develop a more efficient fluorescent microsphere method to facilitate the rapid use of the histological technique and to enable its use in large tissue regions. Using fluorescent plate/slide imaging technology and automated detection and analysis software, we were able to rapidly image, detect, ... More
Fluorescent microspheres to measure organ perfusion: validation of a simplified sample processing technique.
Authors:Van Oosterhout MF, Willigers HM, Reneman RS, Prinzen FW
Journal:Am J Physiol
PubMed ID:7653638
A disadvantage of nonradioactive microsphere techniques is that the processing of samples is time-consuming and complex. We developed and validated a simplified processing method for the fluorescent microsphere (FM) technique. In seven anesthetized dogs with coronary artery stenosis up to six different FM and five different radioactivity labeled microspheres (RM) ... More