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Invitrogen™
LIVE/DEAD™ Viabilitäts-/Zytoxizitäts-Kit für Säugetierzellen
Das LIVE/DEAD® Viabilitäts/Zytotoxizitäts-Kit ist ein schneller und einfacher zweifarbiger Assay zur Bestimmung der Viabilität von Zellen in einer Population undWeitere Informationen
| Katalognummer | Menge |
|---|---|
| L3224 | 1 Kit |
Katalognummer L3224
Preis (EUR)
866,65
Exklusiv online
952,00Ersparnis 85,35 (9%)
Each
Menge:
1 Kit
Preis (EUR)
866,65
Exklusiv online
952,00Ersparnis 85,35 (9%)
Each
Das LIVE/DEAD® Viabilitäts/Zytotoxizitäts-Kit ist ein schneller und einfacher zweifarbiger Assay zur Bestimmung der Viabilität von Zellen in einer Population und basiert auf der Integrität der Plasmamembran und der Esterase-Aktivität. Das Kit kann bei der Durchflusszytometrie, der Fluoreszenzmikroskopie und mit Fluoreszenz-Lesegeräten für Mikrotiterplatten eingesetzt werden.
Vorteile gegenüber anderen Methoden:
• Schneller
• Sicherer
• Empfindlicher
• Kostengünstiger
Einfache Verwendung mit einer Vielzahl von Verfahren und Zelltypen
Allgegenwärtige intrazelluläre Esterase-Aktivität und eine intakte Plasmamembran sind charakteristische Merkmale lebender Zellen. Das LIVE/DEAD® Viabilitäts/Zytotoxizitäts-Kit unterscheidet schnell zwischen lebenden und toten Zellen: Bei gleichzeitiger Färbung weist grün fluoreszierendes Calcein-AM auf intrazelluläre Esterase-Aktivität und rot fluoreszierendes Ethidium-Homodimer-1 auf einen Integritätsverlust der Plasmamembran hin. Es ist auf die meisten eukaryotischen Zellen anwendbar, bei denen zytotoxische Bedingungen diese zellulären Effekte verursachen. Der Assay eignet sich für eine Vielzahl von Fluoreszenznachweismethoden.
Empfindlich, sicher und effizient
Das LIVE/DEAD® Viabilitäts-/Zytotoxizitätskit ist empfindlicher als der Trypanblau-Ausschlusstest, eine häufig verwendete Methode zur Unterscheidung zwischen lebenden und toten Zellen. Das kostengünstige LIVE/DEAD® Viabilitäts/Zytotoxizitäts-Kit ist aufgrund der hellen Fluoreszenz beider Farbstoffe bei Interaktion mit lebenden (Calcein-AM) oder toten Zellen (Ethidium-Homodimer-1) äußerst sensitiv. Die Hintergrundwerte sind niedrig, da beide Farbstoffe vor der Interaktion mit Zellen praktisch nicht fluoreszierend sind.
LIVE/DEAD® Assays sind für eine breite Palette von Anwendungen erhältlich
Eine Auswahl von Invitrogen LIVE/DEAD® Viabilitätsassays wird für Säugerzellen, Bakterien, Hefe und Pilze angeboten. Ebenfalls erhältlich sind Färbekits für fixierbare tote Zellen zur intrazellulären Färbung für die Durchflusszytometrie. Alle LIVE/DEAD® Assays ermöglichen eine schnelle, positive Unterscheidung zwischen lebensfähigen und nicht lebensfähigen Zellen.
Verwandter Link
• Weitere Informationen und das gesamte Sortiment an LIVE/DEAD® Assay-Produkten.
Vorteile gegenüber anderen Methoden:
• Schneller
• Sicherer
• Empfindlicher
• Kostengünstiger
Einfache Verwendung mit einer Vielzahl von Verfahren und Zelltypen
Allgegenwärtige intrazelluläre Esterase-Aktivität und eine intakte Plasmamembran sind charakteristische Merkmale lebender Zellen. Das LIVE/DEAD® Viabilitäts/Zytotoxizitäts-Kit unterscheidet schnell zwischen lebenden und toten Zellen: Bei gleichzeitiger Färbung weist grün fluoreszierendes Calcein-AM auf intrazelluläre Esterase-Aktivität und rot fluoreszierendes Ethidium-Homodimer-1 auf einen Integritätsverlust der Plasmamembran hin. Es ist auf die meisten eukaryotischen Zellen anwendbar, bei denen zytotoxische Bedingungen diese zellulären Effekte verursachen. Der Assay eignet sich für eine Vielzahl von Fluoreszenznachweismethoden.
Empfindlich, sicher und effizient
Das LIVE/DEAD® Viabilitäts-/Zytotoxizitätskit ist empfindlicher als der Trypanblau-Ausschlusstest, eine häufig verwendete Methode zur Unterscheidung zwischen lebenden und toten Zellen. Das kostengünstige LIVE/DEAD® Viabilitäts/Zytotoxizitäts-Kit ist aufgrund der hellen Fluoreszenz beider Farbstoffe bei Interaktion mit lebenden (Calcein-AM) oder toten Zellen (Ethidium-Homodimer-1) äußerst sensitiv. Die Hintergrundwerte sind niedrig, da beide Farbstoffe vor der Interaktion mit Zellen praktisch nicht fluoreszierend sind.
LIVE/DEAD® Assays sind für eine breite Palette von Anwendungen erhältlich
Eine Auswahl von Invitrogen LIVE/DEAD® Viabilitätsassays wird für Säugerzellen, Bakterien, Hefe und Pilze angeboten. Ebenfalls erhältlich sind Färbekits für fixierbare tote Zellen zur intrazellulären Färbung für die Durchflusszytometrie. Alle LIVE/DEAD® Assays ermöglichen eine schnelle, positive Unterscheidung zwischen lebensfähigen und nicht lebensfähigen Zellen.
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• Weitere Informationen und das gesamte Sortiment an LIVE/DEAD® Assay-Produkten.
Nur für Forschungszwecke. Nicht zur Verwendung bei diagnostischen Verfahren.
Specifications
ZelltypSäugetierzellen
BeschreibungLIVE/DEAD™ Viabilitäts-/Zytoxizitätskit für Säugetierzellen
NachweisverfahrenFluoreszenz
FarbstofftypAndere Etiketten oder Farbstoffe
FormatRöhrchen, 96-Well-Platte, Objektträger
Menge1 Kit
VersandbedingungRaumtemperatur
FarbeGrün, rot
Emission494, 528 nm
Excitation Wavelength Range517, 617 nm
Zur Verwendung mit (Anwendung)Viabilitätsassay
Zur Verwendung mit (Geräte)Fluoreszenzmikroskop, Durchflusszytometer, Mikrotiterplatten-Lesegerät
ProduktlinieLIVE/DEAD
ProdukttypViability/Cytotoxicity Kit
Unit SizeEach
Inhalt und Lagerung
In einem Tiefkühlgerät (-5 bis -30 °C) lagern und vor Licht schützen.
Häufig gestellte Fragen (FAQ)
I need to use a dead cell control for my viability assay. Do you have a protocol for killing cells for this?
I am doing a Live/Dead assay using Calcein, AM, for live cells and ethidium homodimer-1 for dead cells. Can I fix the cells after labeling and retain the staining?
How should I store the LIVE/DEAD Viability/Cytotoxicity Kit, for mammalian cells (Cat. No. L3224)?
What fluorescent viability assays can I use on the Countess II FL automated cell counter?
How do I prepare dead cell controls for LIVE/DEAD cell viability assays?
Zitierungen und Referenzen (210)
Zitierungen und Referenzen
Abstract
Enzymatic isolation and characterization of single vascular smooth muscle cells from cremasteric arterioles.
Journal:Microcirculation (New York, N.Y. : 1994)
PubMed ID:9110282
OBJECTIVE: The goal of the present study was to develop a method to isolate viable arteriolar muscle cells from single cremasteric arterioles, which retain the contractile and electrophysiological phenotype of the donor microvessels. METHODS: Arterioles were hand-dissected from rat and hamster cremaster muscles and dissociated by incubation in papain and
Enzymatic isolation and characterization of single vascular smooth muscle cells from cremasteric arterioles.
Journal:Microcirculation (New York, N.Y. : 1994)
PubMed ID:8930888
OBJECTIVE: The goal of the present study was to develop a method to isolate enzymatically viable arteriolar muscle cells from single cremasteric arterioles, which retain the contractile and electrophysiological phenotype of the donor microvessels. METHODS: Arterioles were hand-dissected from rat and hamster cremaster muscles and dissociated by incubation in papain
Calcein: a novel marker for lymphocytes which enter lymph nodes.
Journal:Cytometry
PubMed ID:1451604
Previous studies have identified unique cell surface antigens which are associated with the specific binding of lymphocytes to high endothelial venules (HEV). Evidence is presented in this paper which demonstrates that uptake of the fluorescent dye calcein by lymphocytes represents an additional marker for the lymph node homing subpopulation of
Successful storage of peripheral nerve before transplantation using green tea polyphenol: an experimental study in rats.
Journal:Exp Neurol
PubMed ID:14769360
Green tea polyphenol is known to act as a buffer, reducing biological responses to oxidative stress. Several effects of polyphenol have been reported, such as protection of tissue from ischemia, antineoplasmic and anti-inflammatory effects, and suppression of arteriosclerosis. In this study, we investigated whether peripheral nerve segments could be kept
Human stem cell delivery for treatment of large segmental bone defects.
Journal:Proc Natl Acad Sci U S A
PubMed ID:20133731
'Local or systemic stem cell delivery has the potential to promote repair of a variety of damaged or degenerated tissues. Although various stem cell sources have been investigated for bone repair, few comparative reports exist, and cellular distribution and viability postimplantation remain key issues. In this study, we quantified the