Pierce™ Magnetic RNA-Protein Pull-Down Kit
Thermo Scientific™

Pierce™ Magnetic RNA-Protein Pull-Down Kit

Le kit d’extraction magnétique de complexes ARN-protéine Pierce Thermo Scientific fournit aux chercheurs une méthode robuste et optimisée pour enrichirAfficher plus
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RéférenceQuantité
201641 kit
Référence 20164
Prix (EUR)
857,65
Precio exclusivo en nuestra web
1 046,00
Économisez 188,35 (18%)
Each
Quantité:
1 kit
Grand volume ou format personnalisé
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Le kit d’extraction magnétique de complexes ARN-protéine Pierce Thermo Scientific fournit aux chercheurs une méthode robuste et optimisée pour enrichir les interactions protéine-ARN en utilisant de l’ARN marqué à l’extrémité comme appât.

Caractéristiques du kit d’extraction magnétique de complexes ARN-protéine :

Direct : capture des complexes ribonucléoprotéiques directement avec l’ARN marqué à son extrémité ; n’utilise pas et n’a pas besoin d’anticorps pour l’extraction
Facile à utiliser : enrichissement des RBP sans godets de centrifugation ni aucune centrifugation ; procédure optimisée pour réduire au minimum le temps opérateur (moins de 3 heures) après la réaction de marquage de l’ARN
Flexible : utilisez de l’ARN transcrit in vitro ou de l’ARN synthétique pour le marquage de longueurs et de complexité diverses ; protéines enrichies avec succès à l’aide de lysats traduits endogènes, surexprimés et in vitro
Spécifique : faible bruit de fond dû aux microbilles ; l’ARN non apparenté ou muté n’enrichit pas de manière significative les RBP spécifiées
Économique : solution moins chère que l’achat séparé d’ARN marqué à l’extrémité synthétique, de microbilles magnétiques et de réactifs
Complet : contient un module de marquage et un module d’enrichissement avec les tampons nécessaires pour le dosage ; ARN de contrôle positif, ARN de contrôle négatif et anticorps anti-RBP inclus

Le kit d’extraction magnétique de complexes ARN-protéine comprend des réactifs pour enrichir efficacement des protéines de liaison d’ARN (RBP) avec de l’ARN marqué à son extrémité avec des microbilles magnétiques de desthiobiotine et de streptavidine. Le kit complet contient suffisamment de réactifs pour 20 réactions de marquage de l’ARN et 20 pull-downs de complexes ARN-protéine. Ce système d’enrichissement direct en complexes ARN-protéine constitue une alternative aux techniques de capture par anticorps de complexes protéine-ARN ou de groupes incorporés dans l’acide nucléique. Un autre avantage du kit est qu’il comprend des contrôles validés pour le marquage et le pull-down. Le kit se prête à plusieurs applications en aval, dont le transfert Western et la spectrométrie de masse (MS).

Comprend :
Kit complet comprenant le kit de desthiobiotinylation de l’extrémité 3’ de l’ARN Pierce, des contrôles ARN positif et négatif, des microbilles magnétiques de streptavidine compatibles avec les acides nucléiques et des tampons pour l’enrichissement et l’élution des RBP

Nécessite :
ARN et lysat fournis par l’utilisateur (échantillon expérimental)

Applications :
• Analyse mutationnelle
• Analyse des fonctions structurelles
• Identification des interactions ARN:protéines
• Analyse par MS de paires ou de complexes de liaison ARN:protéine inconnus

L’utilisation d’un ARN marqué comme appât pour l’enrichissement en protéines de liaison à l’ARN est plus avantageux qu’un enrichissement réalisé avec un anticorps, car cela permet de capturer directement l’interaction. Ce kit comprend le kit de desthiobiotinylation de l’extrémité 3’ de l’ARN Pierce qui utilise l’ARN ligase T4 pour fixer un seul nucléotide cytidine diphosphate aux extrémités 3’ de l’ARN simple brin. La desthiobiotine peut être utilisée pour la détection ou comme poignée d’affinité éluable. La longueur de l’espaceur entre le nucléotide et la desthiobiotine a été optimisée pour assurer une fixation efficace de la desthiobiotine aux microbilles sans compromettre l’accessibilité de l’ARN aux protéines.

La procédure d’enrichissement en protéines de liaison à l’ARN a été optimisée pour faciliter l’utilisation. L’ARN marqué est d’abord fixé sur les microbilles dans une orientation permettant la liaison des protéines à l’ARN. Les complexes ARN-microbilles sont ensuite équilibrés dans le tampon de liaison protéine-ARN avant d’ajouter le lysat protéique. Après lavage, les échantillons peuvent être élués avec le tampon d’élution de la biotine non dénaturant ou avec le tampon de charge SDS-PAGE. Les échantillons élués sont prêts pour une utilisation dans une variété d’applications en aval, notamment le transfert Western ou la spectrométrie de masse.

Le système de contrôle pour le dosage par extraction utilise l’ARN du récepteur des androgènes (RA) des séquences 3’ non traduites, l’ARN de la poly(A)25 et le lysat de cellules de mammifères. La séquence 3’ proximale non traduite (UTR) de l’ARN du récepteur des androgènes comprend des séquences riches en UC pour les protéines de liaison HuR et Poly(C) (CP1 et 2). Ces protéines de liaison à l’ARN régulent la stabilité des ARNm (HuR), ainsi que leur renouvellement et leur traduction (CP1 et 2). L’ARN poly(A)25 (ARN de contrôle négatif), ne contient aucun site de liaison aux protéines de liaison HuR ou poly(C).

Produits connexes
Kit de co-précipitation magnétique des ARN-protéines Pierce™
Usage exclusivement réservé à la recherche. Ne pas utiliser pour des procédures de diagnostic.
Spécifications
FormatKit
Contenus des kits50 pmol of RNA per Reaction
Quantité1 kit
Suffisant pour20 réactions
Capacité (métrique)50 pmol d’ARN par réaction
Gamme de produitsPierce
TypeKit de pull-down des protéines ARN
Unit SizeEach
Contenu et stockage
Suffisant pour : 20 réactions d’extraction de complexes ARN-protéine
• Microbilles magnétiques de streptavidine compatibles avec les acides nucléiques Pierce, 1 ml (stocker à 4°C)
• Tampon de capture de l’ARN (1X), 10 ml (stocker à 4°C)
• Tris (20 mM, pH de 7,5), 5 ml (stocker à 4°C)
• Tampon de liaison protéine-ARN (10X), 1 ml (stocker à 4°C)
• Tampon de lavage (1X), 10 ml (stocker à 4°C)
• Tampon d’élution de la biotine, 1,5 ml (stocker à 4°C)
• Anticorps monoclonal HuR (souris), 50 µl (stocker à 4°C)
• Contrôle ARN positif (ARN RA), 250 pmol (stocker à -20°C)
• Contrôle ARN négatif (ARN polyA25), 250 pmol (stocker à -20°C)
• Kit de desthiobiotinylation de l’extrémité 3’ de l’ARN Pierce (numéro de pièce 20163 ; stocker à -20°C)

Foire aux questions (FAQ)

Can I use Coomassie or silver staining to detect proteins isolated with the Pierce Magnetic RNA-Protein Pull-Down Kit (Cat. No. 20164)?

Proteins isolated with the Magnetic RNA-Protein Pull-Down Kit cannot be detected by Coomassie or silver staining. Gels can be used for detection depending on the amount of total protein used in the experiment. If the protein of interest has an antibody available, it can usually be detected via western blotting. Finally, if the protein isolated is unknown, it can be analyzed by mass spectrometry.

After using the Magnetic RNA-Protein Pull-Down Kit, I would like to analyze my elution fraction by mass spectrometry (MS). How can I do this?

The elution fraction is compatible with preparation of peptides. Samples may be processed using the Mass Spec Sample Prep Kit for Cultured Cells (Cat. No. 89840). Alternatively, the elution fraction may be separated by denaturing PAGE. Bands of interest can be excised, and digested using the In-Gel Tryptic Digestion Kit (Cat. No. 89871).

I am using the Magnetic RNA-Protein Pull-Down Kit and am getting a low signal on my western blot. What is the problem?

Here are the possible causes and solutions:

- Insufficient signal: Increase amount of secondary antibody; Use a more sensitive chemiluminescent detection (e.g., SuperSignal Dura or SuperSignal Femto Chemiluminescent Substrate).
- Poor antibody quality: Pre-screen antibody with cell lysate; Include cell lysate as a control on western blot.
- Protein was insufficient in lysate: Increase amount of sample; Identify alternate source of protein; Use a more concentrated lysate.

With the Magnetic RNA-Protein Pull-Down Kit, I am getting high non-specific binding of the RNA-binding protein. Why is this?

Here are possible causes and solutions:

- Binding reaction was not optimized: Optimize incubation time, temperature, salt and detergent for binding reactions.
- Insufficient washing stringency: Increase stringency of wash buffer; add salt and/or detergent.
- Ratio of labeled RNA to lysate was not optimized: Titrate labeled RNA with protein lysate; Reduce the concentration of lysate to ~2mg/mL.

I got no recovery of the RNA-binding protein when I used the Magnetic RNA-Protein Pull-down Kit. What should I do?

Here are possible causes and solutions:

- Insufficient amount of target protein in the sample: Increase amount of sample.
- Sample was not compatible with the binding reaction: Buffer exchange sample using Zeba Desalting Columns.
- Binding reaction was not optimized: Optimize incubation time, temperature, salt and detergent for binding reactions; Titrate amount of labeled RNA to protein lysate; Use a more concentrated lysate.
- RNA binding protein had low affinity for labeled RNA: Add crosslinking reagent (e.g., UV, etc.) after protein has bound RNA.

Citations et références (5)

Citations et références
Abstract
An R-loop-initiated CSB-RAD52-POLD3 pathway suppresses ROS-induced telomeric DNA breaks
Authors:
Journal:Nucleic Acids Res
PubMed ID:
Circular RNA circHECTD1 prevents Diosbulbin-B-sensitivity via miR-137/PBX3 axis in gastric cancer
Authors:
Journal:Cancer Cell Int
PubMed ID:
OIP5-AS1 contributes to the development in endometrial carcinoma cells by targeting miR-152-3p to up-regulate SLC7A5
Authors:
Journal:Cancer Cell Int
PubMed ID:
A novel IncRNA ARST represses glioma progression by inhibiting ALDOA-mediated actin cytoskeleton integrity
Authors:
Journal:
PubMed ID:
The circACTN4 interacts with FUBP1 to promote tumorigenesis and progression of breast cancer by regulating the expression of proto-oncogene MYC
Authors:
Journal:Molecular Cancer
PubMed ID: