Alexa Fluor™ 633 Hydrazide
Invitrogen™

Alexa Fluor™ 633 Hydrazide

L’hydrazide Alexa Fluor™ 633 est utile en tant que traceur de cellules et en tant que colorant réactif pour leAfficher plus
Have Questions?
RéférenceQuantité
A306341 mg
Référence A30634
Prix (EUR)
556,00
Each
Quantité:
1 mg
Prix (EUR)
556,00
Each
L’hydrazide Alexa Fluor™ 633 est utile en tant que traceur de cellules et en tant que colorant réactif pour le marquage d’aldéhydes ou de cétones dans des polysaccharides ou des glycoprotéines. Alexa Fluor™ 633 est un colorant rouge lointain brillant et fluorescent, avec un niveau d’excitation parfaitement adapté à la ligne laser de 633 nm. Utilisé pour une génération de signal stable en imagerie et en cytométrie en flux, le colorant Alexa Fluor™ 633 est hydrosoluble et insensible au pH de pH 4 à pH 10.

Informations détaillées concernant l’hydrazide AlexaFluor™ :

• Étiquette fluorophore : Colorant Alexa Fluor™ 633
• Groupe réactif : hydrazide
• Réactivité : Aldéhydes ou cétones dans des polysaccharides ou des glycoprotéines
• Ex/Em du conjugué : 624/643 nm
• Coefficient d’extinction : 110 000 cm-1M-1
• Colorants similaires sur le plan spectral : Cy5
• Poids moléculaire : ∼ 1 150

Applications du suivi et du traçage des cellules
Les hydrazides et les hydroxylamines Alexa Fluor™ sont utiles comme traceurs cellulaires à faible poids moléculaire, imperméants aux membranes et fixables sur des aldéhydes, et présentent une fluorescence plus brillante et une meilleure photostabilité que les traceurs cellulaires dérivés d’autres fluorophores similaires sur le plan spectral. Ils sont facilement chargés dans les cellules par micro-injection, perfusion à partir d’une pipette de patch ou absorption induite par notre réactif de chargement cellulaire pinocytique Influx™. En savoir plus sur le suivi et le traçage des cellules.

Applications de marquage des glycoprotéines et des polysaccharides
Les hydrazides et les hydroxylamines Alexa Fluor™ sont des molécules réactives qui peuvent être utilisées pour ajouter un marqueur fluorescent à des biomolécules contenant des aldéhydes ou des cétones. Les aldéhydes et les cétones peuvent être introduits dans des polysaccharides et des glycoprotéines par oxydation médiée par périodate de diols vicinaux. La galactose oxydase peut également être utilisée pour oxyder les résidus terminaux de galactose des glycoprotéines en aldéhydes.

L’hydrazide par rapport à l’hydroxylamine
Les dérivés d’hydrazine réagissent avec les cétones et les aldéhydes pour produire des hydrazones relativement stables. Les dérivés d’hydroxylamine (composés aminooxy) réagissent avec les aldéhydes et les cétones pour produire des oximes. Les oximes sont supérieures aux hydrazones en termes de stabilité hydrolytique. Les hydrazones et les oxymes peuvent être réduits avec le borohydrure de sodium (NaBH4) pour augmenter la stabilité de la liaison.

En savoir plus sur le marquage des protéines et des anticorps
Nous offrons une large sélection de kits de marquage des anticorps et des protéines Molecular Probes™ pour convenir à votre produit de départ et à votre configuration expérimentale. Consultez nos kits de marquage d’anticorps ou utilisez notre outil de sélection de chimie de marquage pour d’autres choix. Pour en savoir plus sur nos kits de marquage, lisez Kits de marquage des protéines et des acides nucléiques, section 1.2 dans le manuel Molecular Probes™.

Nous vous préparerons un conjugué sur mesure
Si vous ne trouvez pas ce que vous cherchez dans notre catalogue en ligne, nous vous préparerons un conjugué d’anticorps ou de protéines sur mesure. Notre service de conjugaison personnalisé est efficace et confidentiel, et nous croyons en la qualité de notre travail. Nous sommes certifiés ISO 9001:2000.

Produits associés
DMSO (diméthylsulfoxyde) (D12345)
Kit de purification de conjugués d’anticorps pour 0,5-1 mg (A33086)
Kit de purification de conjugués d’anticorps pour 20-50 μg (A33087)
Kit de purification de conjugués d’anticorps pour 50-100 μg (A33088)
Usage exclusivement réservé à la recherche. Ne pas utiliser pour des procédures de diagnostic.
Spécifications
Réactivité chimiqueAcide carboxylique, cétone, aldéhyde
Émission643 nm
Excitation624 nm
Marqueur ou colorantAlexa Fluor™ 633
Poids moléculaire∼ 1150 kDa
Type de produit633 Hydrazide
Quantité1 mg
Groupement de réactifsAmine, hydrazide
Conditions d’expéditionTempérature ambiante
Type d’étiquetteColorants Alexa Fluor
Gamme de produitsAlexa Fluor
Unit SizeEach
Contenu et stockage
Stocker à température ambiante et à l’abri de la lumière.

Foire aux questions (FAQ)

What dye can I use that is non-reactive and can show an injection site?

The non-reactive Alexa Fluor and Alexa Fluor hydrazide derivatives may be used for injection site visualization. Other options include the fluorescent polystyrene microspheres, FluoSpheres, and dye-conjugated dextrans. The hydrazide derivatives and 'fixable' dextrans are retained by cross-linking using an aldehyde-based fixative.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Cell Analysis Support Center.

I injected a fluorescent tracer, but cannot detect it after tissue is fixed and sectioned. What am I doing wrong?

Confirm that the tracer you are using crosslinks to proteins or has a primary amine for fixation-either a hydrazide, lysine fixable dextran, or a protein conjugate.
Use aldehyde-based fixatives to cross link the amines on the tracer.
Inject a larger amount or higher concentration of the tracer. Tracers are generally injected at 1-20% concentrations (10 mg/mL or higher).
Confirm that you are using the correct fluorescent filter for detection. You can perform a spot test by pipetting a small amount of the undiluted stock solution of the tracer onto a slide, then view under the filter you are using on your microscope. This will confirm if the tracer fluorescence can be detected and the fluorescent microscope filter is working properly.
Review tissue fixation and handling procedures to confirm if any reagents or processing procedures could be affecting the tracer.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Cell Analysis Support Center.

I have labeled my neurons with an Alexa Fluor conjugated biocytin to look at transport but I wanted to examine only retrograde transport and biocytin appears to be moving retrograde and anterograde. What should I do?

Observing both types of transport is typical for biocytin. The conjugated cholera toxin subunit B products have been observed to travel only retrogradely.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Cell Analysis Support Center.

Do you have a neuronal tracer similar to Lucifer Yellow but in another fluorescent color?

Lucifer Yellow CH is a hydrazide, so any of our Alexa Fluor or fluorescent hydrazides could potentially be used. A listing of them can be found here. (https://www.thermofisher.com/us/en/home/life-science/cell-analysis/cell-tracing-tracking-and-morphology/neuronal-tracing/hydrazides-biocytins.html#prd)

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Cell Analysis Support Center.

How do I know which tracer to choose for my experiment?

Factors to consider are size of tracer, method of delivery (injection, direct application to tissue, etc.), and if the tracer needs to be fixable. Here are some links to details about the various classes of neuronal tracers we offer and how to choose between them:

Neuronal Tracing (https://www.thermofisher.com/us/en/home/life-science/cell-analysis/cell-tracing-tracking-and-morphology/neuronal-tracing.html)
Choosing a Tracer (https://www.thermofisher.com/us/en/home/references/molecular-probes-the-handbook/fluorescent-tracers-of-cell-morphology-and-fluid-flow/choosing-a-tracer.html)
Imaging Analysis (http://assets.thermofisher.com/TFS-Assets/BID/Reference-Materials/bioprobes-50-journal.pdf)

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Cell Analysis Support Center.

Citations et références (2)

Citations et références
Abstract
Enhanced spontaneous Ca(2+) events in endothelial cells reflect signalling through myoendothelial gap junctions in pressurized mesenteric arteries.
Authors:Kansui Y, Garland CJ, Dora KA,
Journal:Cell Calcium
PubMed ID:18191200
'Increases in global Ca(2+) in the endothelium are a crucial step in releasing relaxing factors to modulate arterial tone. In the present study we investigated spontaneous Ca(2+) events in endothelial cells, and the contribution of smooth muscle cells to these Ca(2+) events, in pressurized rat mesenteric resistance arteries. Spontaneous Ca(2+) ... More
A novel mechanism for protein delivery: granzyme B undergoes electrostatic exchange from serglycin to target cells.
Authors:Raja SM, Metkar SS, Höning S, Wang B, Russin WA, Pipalia NH, Menaa C, Belting M, Cao X, Dressel R, Froelich CJ
Journal:J Biol Chem
PubMed ID:15788411
The molecular interaction of secreted granzyme B-serglycin complexes with target cells remains undefined. Targets exposed to double-labeled granzyme B-serglycin complexes show solely the uptake of granzyme B. An in vitro model demonstrates the exchange of the granzyme from serglycin to immobilized, sulfated glycosaminoglycans. Using a combination of cell binding and ... More