Fluo-5N, Pentapotassium Salt, cell impermeant
Fluo-5N, Pentapotassium Salt, cell impermeant
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Fluo-5N, Pentapotassium Salt, cell impermeant

Les indicateurs marqués de calcium sont des molécules qui affichent une hausse de fluorescence lors de la liaison du Ca2+.Afficher plus
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RéférenceQuantité
F14203
également connu sous le numéro F-14203
500 μg
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Prix (EUR)
485,00
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Les indicateurs marqués de calcium sont des molécules qui affichent une hausse de fluorescence lors de la liaison du Ca2+. Le fluo-5F, le fluo-5N et le fluo-4ff sont des analogues de fluo-4 avec une affinité de liaison moindre au Ca2+, ce qui les rend adaptés à la détection des niveaux de calcium intracellulaire dans la plage de 1 µM à 1 mM qui sature la réaction de fluo-3 et de fluo-4. Les cellules peuvent être chargées physiquement avec les formes salines imperméants aux cellules de ces indicateurs à l’aide d’une pipette à patch, d’une micro-injection ou de notre réactif de charge cellulaire pinocytotique Influx™. Ces indicateurs sont compatibles avec l’excitation à 488 nm par des sources laser d’ions argon, ce qui les rend utiles pour la microscopie confocale, la cytométrie en flux et les applications de sélection sur microplaques.

Pour en savoir plus sur les indicateurs d’ions, notamment les indicateurs de calcium, de potassium, de pH et de potentiel de membrane ›

Caractéristiques de l’indicateur de calcium (sels imperméants aux cellules) :
• Marquage (Ex/Em de Ca2+–forme liée) : Fluo-5N (494/516 nm)
• Hausse de l’intensité de fluorescence lors de la liaison du Ca2+ : >100 fois
• Kd pour Ca2+ dans le tampon : Environ 90 µM
• Hausse de la fluorescence lors de la liaison du Ca2+ avec un faible décalage en longueur d’onde


À l’aide du TPEN pour le contrôle des cations de métaux lourds
En outre, ces indicateurs BAPTA lient plusieurs cations de métaux lourds (par exemple, Mn2+, Zn2+, Pb2+) avec une affinité nettement supérieure à Ca2+. Les perturbations des mesures du calcium, causées par la présence de ces ions, peuvent être contrôlées à l’aide du chélateur sélectif de métaux lourds TPEN.

Plus de choix pour les indicateurs fluorescents de calcium
Nous proposons une large sélection d’indicateurs de calcium Molecular Probes™ à utiliser dans divers scénarios expérimentaux. Pour en savoir plus, voir Indicateurs fluorescents de Ca2+ excités avec la lumière visible—- Section 19.3 dans le mode d’emploi du capteur Molecular Probes™.

Pour les indicateurs de Ca2+ excitables par UV, les indicateurs de Ca2+ basés sur les protéines, les conjugués d’indicateurs de Ca2+, et pour les indicateurs basés sur la fluorescence d’autres ions métalliques (c.-à-d. Mg2+, Zn2+), voir Indicateurs de Ca2+, Mg2+, Zn2+ et d’autres ions métalliques— - Chapitre 19 dans le mode d’emploi du capteur Molecular Probes™.

Usage exclusivement réservé à la recherche. Non utilisé à des fins thérapeutiques ou diagnostiques humaines ou animales.
Usage exclusivement réservé à la recherche. Ne pas utiliser pour des procédures de diagnostic.
Spécifications
Méthode de détectionFluorescence
Type de colorantFluorescent à base de colorants
Quantité500 μg
Conditions d’expéditionTempérature ambiante
À utiliser avec (équipement)Microscope confocal, Microscope à fluorescence, Instruments d’analyse à haut contenu, Lecteur HTS, Lecteur de microplaques, Imageur fluorescent
Type de produitIndicateur de calcium
Unit SizeEach
Contenu et stockage
Conservez au congélateur (entre -5 et -30°C) à l’abri de la lumière.

Citations et références (7)

Citations et références
Abstract
Rational design of protein-based MRI contrast agents.
Authors:Yang JJ, Yang J, Wei L, Zurkiya O, Yang W, Li S, Zou J, Zhou Y, Maniccia AL, Mao H, Zhao F, Malchow R, Zhao S, Johnson J, Hu X, Krogstad E, Liu ZR,
Journal:J Am Chem Soc
PubMed ID:18576649
We describe the rational design of a novel class of magnetic resonance imaging (MRI) contrast agents with engineered proteins (CAi.CD2, i = 1, 2,..., 9) chelated with gadolinium. The design of protein-based contrast agents involves creating high-coordination Gd(3+) binding sites in a stable host protein using amino acid residues and ... More
Concurrent maturation of inner hair cell synaptic Ca2+ influx and auditory nerve spontaneous activity around hearing onset in mice.
Authors:Wong AB, Jing Z, Rutherford MA, Frank T, Strenzke N, Moser T,
Journal:
PubMed ID:23804089
Hearing over a wide range of sound intensities is thought to require complementary coding by functionally diverse spiral ganglion neurons (SGNs), each changing activity only over a subrange. The foundations of SGN diversity are not well understood but likely include differences among their inputs: the presynaptic active zones (AZs) of ... More
Low-affinity Ca2+ indicators compared in measurements of skeletal muscle Ca2+ transients.
Authors:Hollingworth S, Gee KR, Baylor SM,
Journal:Biophys J
PubMed ID:19804716
The low-affinity fluorescent Ca(2+) indicators OGB-5N, Fluo-5N, fura-5N, Rhod-5N, and Mag-fluo-4 were evaluated for their ability to accurately track the kinetics of the spatially averaged free Ca(2+) transient (Delta[Ca(2+)]) in skeletal muscle. Frog single fibers were injected with one of the above indicators and, usually, furaptra (previously shown to rapidly ... More
Tuning of synapse number, structure and function in the cochlea.
Authors:Meyer AC, Frank T, Khimich D, Hoch G, Riedel D, Chapochnikov NM, Yarin YM, Harke B, Hell SW, Egner A, Moser T,
Journal:Nat Neurosci
PubMed ID:19270686
Cochlear inner hair cells (IHCs) transmit acoustic information to spiral ganglion neurons through ribbon synapses. Here we have used morphological and physiological techniques to ask whether synaptic mechanisms differ along the tonotopic axis and within IHCs in the mouse cochlea. We show that the number of ribbon synapses per IHC ... More
Confocal imaging of CICR events from isolated and immobilized SR vesicles.
Authors:Shannon TR, Bers DM, Blatter LA, Niggli E
Journal:Cell Calcium
PubMed ID:16122794
The Ca2+ concentration inside the sarcoplasmic reticulum ([Ca2+]SR) is a difficult parameter to measure in ventricular cardiac myocytes. Interference from Ca2+-sensitive dye loading into cellular compartments other than the SR interferes with free Ca2+ measurement. In addition, the composition of the cytosol surrounding the SR in intact cells cannot be ... More