Coloration d’acides nucléiques SYTOX™ Green - Solution de 5 mM dans du DMSO
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Coloration d’acides nucléiques SYTOX™ Green - Solution de 5 mM dans du DMSO

Le colorant d’acides nucléiques vert SYTOX® est un excellent contre-colorant vert fluorescent des noyaux et des chromosomes qui est imperméantAfficher plus
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RéférenceQuantité
S7020250 μl
Référence S7020
Prix (EUR)
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Quantité:
250 μl
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Le colorant d’acides nucléiques vert SYTOX® est un excellent contre-colorant vert fluorescent des noyaux et des chromosomes qui est imperméant aux cellules vivantes, ce qui en fait un indicateur utile des cellules mortes au sein d’une population.

Également disponible en tant que solution à température ambiante stable et prête à l’emploi : Réactif NucGreen Dead 488 ReadyProbes.
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 Imperméant aux cellules vivantes
 Excitation/émission : 504 / 523 nm
 À utiliser avec le laser à d’ions argon 488
 Fonctionne avec les cellules de mammifères et les bactéries gram-positif et gram-négatif

Simple détermination de la viabilité
Le colorant vert SYTOX® permet de déterminer rapidement la viabilité cellulaire lors de l’utilisation de cytomètres en flux, de microscopes à fluorescence, de fluoromètres ou de lecteurs de microplaques à fluorescence. Il ne traverse pas les membranes intactes mais pénètre facilement les membranes compromises typiques des cellules mortes. Du fait qu’il présente une fluorescence 500 fois plus forte lors de la liaison aux acides nucléiques, l’utilisation du colorant vert SYTOX® pour une incubation brève des cellules mortes entraîne une vive fluorescence verte avec un pic d’émission de 523 nm lorsqu’il est excité par un laser d’ions argon de 488 nm ou par toute autre source comprise entre 450–490 nm. La luminosité exceptionnelle du signal produit dans les cellules mortes rend le colorant vert SYTOX® particulièrement utile pour déterminer la viabilité non seulement des cellules de mammifères, mais aussi des bactéries gram-positif et gram-négatif.

Appartient à la famille des colorants et des dosages de viabilité cellulaire Invitrogen
Les colorants SYTOX® pour les cellules mortes sont disponibles dans une variété de couleurs, y compris en rouge, en bleu et en orange. En outre, Invitrogen a intégré les colorations SYTOX® dans certains dosages de l’apoptose, de la viabilité cellulaire et du métabolisme.

Usage exclusivement réservé à la recherche. Non destiné à des fins thérapeutiques ou diagnostiques humaines ou animales.

Lien connexe
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Usage exclusivement réservé à la recherche. Ne pas utiliser pour des procédures de diagnostic.
Spécifications
CouleurVert
Méthode de détectionFluorescence, Fluorescent
Type de colorantPerméant aux cellules
Émission523 nm
Gamme de longueur d’onde d’excitation504 nm
À utiliser avec (équipement)Cytomètre en flux, Cytomètre en flux
FormeSolution
FormatTube(s), Tube(s)
Gamme de produitsSYTOX
Quantité250 μl
Conditions d’expéditionTempérature ambiante
Volume (métrique)250 μl
Type d’étiquetteFluorescent
Type de produitColoration d’acide nucléique
SubCellular LocalizationNoyau, acides nucléiques, Nucleus
Unit SizeEach
Contenu et stockage
Conserver au congélateur (entre -5°C et -30°C) et à l’abri de la lumière.

Foire aux questions (FAQ)

How do SYTO dyes bind to DNA?

The binding mode of SYTO nucleic acid stains is unknown. However, the behavior of these and related nucleic acid dyes suggests the following binding properties:

1.They appear to contact the solvent (suggested by sensitivity to salt, divalent cations, and in particular, SDS) and thus are likely to have contacts in the grooves.
2.All SYTO dyes appear to show some base selectivity and are thus likely to have minor groove contacts.
3.They can be removed from nucleic acid via ethanol precipitation; this characteristic is not shared by ethidium bromide and other intercalators. Likewise, the dyes are not removed from nucleic acid via butanol or chloroform extraction. These extraction methods do remove ethidium bromide from nucleic acid. 4. SYTO binding is not affected by nonionic detergents.
5. SYTO dyes are not quenched by BrdU, so they do not bind nucleic acids in precisely the same way as Hoechst 33342 and DAPI ((4′,6-diamidino-2-phenylindole).

SYBR Green I has shown little mutagenicity on frameshift indicator strains, indicating that it isn't likely to strongly intercalate.

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I need to mount my Qdot secondary-labeled tissue samples in HistoMount mounting medium, but my Qdot 705 conjugate overlaps with your Qnuclear Deep Red nuclear label. What other nuclear label would you recommend, that is compatible with HistoMount mounting medium?

We recommend using SYTOX Green stain, which you can image using a FITC filter and we have shown to be compatible with HistoMount mounting medium. Some have used DAPI, but there have been some issues with slight quenching and spectral shifting of DAPI into green or even red wavelengths.

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I am using SYTOX AAdvanced as a dead cell stain, but all of my cells are labeling even though I am certain that they are supposed to be alive. These are adherent cells that I have trypsinized. Why am I getting false-dead signals?

SYTOX AAdvanced labels only dead cells because it is a cell impermeant dye. The dye can only enter cells that have a compromised plasma membrane. Trypsinization may cause temporary disruption of the plasma membrane, sufficient to allow staining with a cell impermeant dye. You can reduce the “false-dead” problem by either reducing the amount of trypsin and/or reduce the incubation time for trypsinization or use a gentler dissociation reagent such as TrypLE Express, TrypLESelect reagents, or Versene. After trypsinization, wash well, and if possible, allow a recovery time in normal culture media before staining with any of the SYTOX dyes.

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Citations et références (262)

Citations et références
Abstract
Use of SYTOX green dye in the flow cytometric analysis of bacterial phagocytosis.
Authors:Gaforio JJ, Serrano MJ, Ortega E, Algarra I, Alvarez de Cienfuegos G
Journal:Cytometry
PubMed ID:12116370
BACKGROUND: Fluorescein isothiocyanate (FITC) is used widely to label the targets used in flow cytometric phagocytosis assays. Unfortunately, the fluorescence intensity of phagocytosed FITC-labeled targets is influenced by changes in intracellular pH level, making quantitative measurements with this fluorophore problematic. We describe the use of SYTOX green nucleic acid stain ... More
Identification and characterization of two subpopulations of Encephalitozoon intestinalis.
Authors:Hoffman RM, Marshall MM, Polchert DM, Jost BH
Journal:Appl Environ Microbiol
PubMed ID:12902292
Microsporidia are obligate intracellular protozoa that have been shown to be pathogenic to most living creatures. The development of in vitro cell culture propagation methods has provided researchers with large numbers of spores and facilitated the study of these organisms. Here, we describe heterogeneity within cell culture-propagated Encephalitozoon intestinalis suspensions. ... More
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Journal:J Biol Chem
PubMed ID:15320336
Endoglycoceramidase (EGCase; EC 3.2.1.123) is an enzyme capable of cleaving the glycosidic linkage between oligosaccharides and ceramides of various glycosphingolipids. We detected strong EGCase activity in animals belonging to Cnidaria, Mollusca, and Annelida and cloned the enzyme from a hydra, Hydra magnipapillata. The hydra EGCase, consisting of 517 amino acid ... More
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Journal:J Biol Chem
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