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ライゲーションが失敗したときに試したい！リガーゼの活性を確認する方法

Written by | Published: 09.18.2015

ライゲーションがうまくいかなくてお困りでしょうか？そんなときはこちらの方法でT4 DNAリガーゼの活性を確認してみてください！

概要

SDS含有のローディングダイ(SDSの最終濃度は0.2%)と混合し、通常のアガロースゲル電気泳動に流すだけで、ライゲーション反応の効率を確認できます。ライゲーション反応後にいくつかの高分子のバンドが現れるはずです。ローディングダイにSDSが含まれていないと、スメアバンドが出現し、リガーゼの活性を測ることが難しくなります。（図1）

Checking-Your-T4-DNA-Ligase-Activity-fig1

図1
レーン1：ライゲーション反応前のサンプル
レーン2：ライゲーション反応後、SDS不含有のローディングダイを使用したもの
レーン3：ライゲーション反応後、SDS含有のローディングダイを使用したもの
レーン4：GeneRuler DNAラダーミックス

 

基質DNAとして、HindIIIで切断されたラムダDNAを使用することでもリガーゼの活性を測ることができます。このDNAは高純度のため、下記のプロトコルを行うのが簡単になります。

プロトコル

0.5 μg HindIIIで切断されたラムダDNAと
2 μL 10x T4 DNA Ligase bufferと
1ユニットのT4 DNAリガーゼを追加します (1×T4 DNA Ligase bufferで希釈が可能です）
全溶液量が20 μLになるように水で調製し、22°C (室温)で10分間反応させます。

結果

上記で述べたように、SDS含有のローディングダイを使用して、10 μLの反応液をアガロースゲル電気泳動に流します。ライゲーション反応後のサンプルでは、図 2で示すようにいくつかの高分子のバンドが現れるはずです。

Checking-Your-T4-DNA-Ligase-Activity-fig2図2
レーン1：ライゲーション反応前のラムダDNA
レーン2：ライゲーション反応後のラムダDNA

 

 

 

ラムダDNAを使用した場合にはライゲーションはうまくいくが、目的のサンプルを使用した際にライゲーションがうまくいかない場合は、リガーゼには問題はなく、サンプルに問題があると考えられます。これには、いくつかの理由が原因である可能性があります。弊社のテクニカルサポートは、このようなトラブルシューティングを支援いたします。

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