Maxima™ H Minus cDNA Synthesis Master Mix
Thermo Scientific™

Maxima™ H Minus cDNA Synthesis Master Mix

Der Thermo Scientific Maxima H Minus cDNA-Synthese-Master Mix bietet alle Reaktionskomponenten für die cDNA-Synthese in einem praktischen Einzelröhrchenformat. Optimiert fürWeitere Informationen
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KatalognummerEnthältAnzahl Reaktionen
M1681Kit with dsDNase50 Reaktionen
M1661Kit only50 Reaktionen
M1662Kit only200 Reaktionen
M1682Kit with dsDNase200 Reaktionen
Katalognummer M1681
Preis (EUR)
446,65
Exklusiv online
552,00
Ersparnis 105,35 (19%)
Each
Enthält:
Kit with dsDNase
Anzahl Reaktionen:
50 Reaktionen
Großbestellung oder individuelle Größe anfordern
Preis (EUR)
446,65
Exklusiv online
552,00
Ersparnis 105,35 (19%)
Each
Der Thermo Scientific Maxima H Minus cDNA-Synthese-Master Mix bietet alle Reaktionskomponenten für die cDNA-Synthese in einem praktischen Einzelröhrchenformat. Optimiert für eine hocheffiziente cDNA-Synthese zum Einsatz in quantitativen, zweistufigen RT-PCR (RT-qPCR)-Anwendungen.

Zu den Merkmalen gehören:
• Der Master Mix im Einzelröhrchenformat verringert die Anzahl der Pipettierschritte und verbessert die Konsistenz der RT-qPCR-Ergebnisse
• Erhöhte RT-Effizienz über unterschiedliche Konzentrationen an ursprünglicher RNA und eine Vielzahl von Genzielen hinweg
• Hohe Thermostabilität für RT-Reaktionen bei 50 bis 65 °C

Der Master Mix enthält Maxima H Minus reverse Transkriptase (RT) und RiboLock RNase-Inhibitor. Maxima H Minus RT ist ein leistungsstarkes Enzym, das von M-MuLV-RT durch In-vitro-Evolution abgeleitet wurde. Das Enzym zeichnet sich durch eine hohe Thermostabilität, Robustheit, Prozessivität sowie erhöhte cDNA-Syntheserate aus und weist keine RNase H-Aktivität auf. Der rekombinante RiboLock RNase-Inhibitor schützt RNA-Templates bei Temperaturen bis zu 55 °C wirksam vor dem Abbau durch die RNasen A, B und C. Der Master Mix enthält zudem Reaktionspuffer, dNTPs, Oligo(dT)18 sowie Random-Hexamer-Primer. Ein separates Röhrchen mit RT-Negativkontrollgemisch wird ebenfalls bereitgestellt.

Der Maxima H Minus cDNA-Synthese-Master Mix ermöglicht eine reproduzierbare cDNA-Synthese bei erhöhten Temperaturen (50 – 65 °C). Die Synthesereaktion ist in der Regel innerhalb von 15 – 30 Minuten abgeschlossen.

Zusätzliche Informationen zu den Reaktionskomponenten
• Das RT-Negativkontrollgemisch enthält alle Komponenten des Maxima H Minus cDNA-Synthese-Master Mix außer RT. Das Vorhandensein eines PCR-Produkts in der Reaktion der RT-Negativkontrolle weist darauf hin, dass die Reaktion mit DNA kontaminiert ist. Um die Effizienz der Entfernung von genomischer DNA weiter zu verbessern, wird die RNA-Inkubation mit dsDNase (Kat.- Nr. EN0771) dringend empfohlen.
• Nukleasefreies Wasser zur Reaktionsvorbereitung und Verdünnung der Proben-DNA ist im Lieferumfang enthalten. Mithilfe geeigneter Qualitätsprüfungen wurde sichergestellt, dass keine Exodesoxyribonukleasen, Ribonukleasen sowie Phosphatasen vorhanden sind.

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Nur für Forschungszwecke. Nicht zur Verwendung bei diagnostischen Verfahren.
Specifications
EndprodukttypcDNA (Erststrang)
FormatMastermix für die cDNA-Synthese
EnthältKit with dsDNase
Anzahl Reaktionen50 Reaktionen
Optimale Reaktionstemperatur50 °C
MengeEach
ReaktionsformatReaktionsgemisch
ReagenztypReverse Transkription
Reverse TranskriptaseMaxima H Minus
Ribonuklease-H-AktivitätKeine
VersandbedingungTrockeneis
Größe (Endprodukt)Bis 20 kb
AusgangsmaterialRNA
VerfahrenReverse Transkription
Zur Verwendung mit (Anwendung)Real-Time PCR (qPCR), RT-PCR
GC-Rich PCR PerformanceHoch
Reaktionsgeschwindigkeit30 min
Unit SizeEach
Inhalt und Lagerung


1 x 800 •l Maxima H Minus Mastermix für die cDNA-Synthese•
1 x 200 μl Maxima H Minus Mastermix für die cDNA-Synthese RT-Negativkontrolle•
1 x 200 μl dsDNase•μ 1 x 50 μl 10X dsDNase-Puffer
• 1 x 1,25 ml nukleasefreies Wasser

Bei –30 bis –5 °C lagern.

Häufig gestellte Fragen (FAQ)

Why is there no heat inactivation step for the dsDNase in the protocol for Maxima H Minus cDNA Synthesis Master Mix (Cat. No. M1681)?

The novel dsDNase enzyme degrades double-stranded genomic DNA. However, it has no effect on the single-stranded cDNA or the RNA-DNA hybrid. Therefore, the enzyme mix for reverse transcription can be added directly to the dsDNase treated RNA.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our PCR and cDNA Synthesis Support Center.

What steps should I take while performing first strand cDNA synthesis using low purity template (e.g., inhibitors in RNA sample)?

Trace amounts of reagents used in RNA purification protocols may remain in solution and inhibit first-strand synthesis, e.g., SDS, EDTA, guanidine salts, phosphate, pyrophosphate, polyamines, spermidine. To remove trace contaminants, we recommend re-precipitating the RNA with ethanol and washing the pellet with 75% ethanol, or re-purifying the RNA.

For reverse transcription, how important is the quality of RNA template?

RNA purity and integrity are essential for synthesis and quantification of cDNA. Always assess the integrity of RNA prior to cDNA synthesis. Use freshly prepared RNA. Multiple freeze/thaw cycles of the RNA sample and synthesized cDNA is not recommended. Avoid RNase contamination and discard low quality RNA.

When should I choose regular RevertAid RT or Maxima RT vs. RevertAid H Minus RT or Maxima H Minus RT?

It is generally beneficial to minimize RNase H activity when aiming to produce long transcripts for cDNA cloning. RNase H degrades RNA from RNA-DNA duplexes, which can result in truncated cDNA during reverse transcription of long mRNA. We also recommended using RNase H Minus RTs for template-independent addition of C nucleotides. In contrast, reverse transcriptases with intrinsic RNase H activity are often favored in 1-step RT-qPCR applications.

What is the fidelity of RevertAid and Maxima reverse transcriptases?

The fidelity of RevertAid and Maxima reverse transcriptases is the same as that of wild-type M-MuLV RT, which is in the range of 1 error per 15,000-27,000 nucleotides synthesized.