SYTOX™ Green Nukleinsäurefärbemittel – 5 mmol-Lösung in DMSO

Zitierungen und Referenzen (262)

Invitrogen™

SYTOX™ Green Nukleinsäurefärbemittel – 5 mmol-Lösung in DMSO

Katalognummer	Menge
S7020	250 μl

Katalognummer S7020

Preis (EUR)

474,65

Exklusiv online

516,00

Ersparnis 41,35 (8%)

Menge:

250 μl

Preis (EUR)

474,65

Exklusiv online

516,00

Ersparnis 41,35 (8%)

SYTOX® Green Nukleinsäure-Färbemittel ist ein hervorragendes grün fluoreszierendes Gegenfärbungsmittel für Zellkerne und Chromosomen, das lebende Zellen nicht durchdringt, wodurch es als nützlicher Indikator für die Anzahl der toten Zellen innerhalb einer Zellpopulation eingesetzt werden kann.

Auch verfügbar als raumtemperaturbeständige, gebrauchsfertige Lösung: NucGreen Dead 488 Ready Sonden Reagenz.
Weitere gebrauchsfertige Bildgebungsreagenzien und Zubehör von Ready Probes ›

• Durchdringt keine lebenden Zellen
• Anregung/Emission: 504/523 nm
• Verwendung mit 488 Argon-Ionenlaser
• Funktioniert mit Säugetierzellen und sowohl grampositiven als auch gramnegativen Bakterien

Einfache Viabilitätsermittlung
SYTOX® Green ermöglicht eine schnelle Bestimmung der Zellviabilität bei der Verwendung von Durchflusszytometern, Fluoreszenzmikroskopen, Fluorometern oder Fluoreszenzmikroplatten-Lesegeräten. Er durchdringt intakte Zellmembranen nicht, diffundiert aber leicht durch beeinträchtigte Membranen, die für abgestorbene Zellen charakteristisch sind. Da bei der Bindung an Nukleinsäuren ein >500-facher Fluoreszenzanstieg auftritt, führt das kurze Inkubieren abgestorbener Zellen mit SYTOX® Green bei Anregung mit einem 488 nm-Argon-Ionenlaser oder anderen Strahlungsquellen im Wellenlängenbereich von 450–490 nm, zu einer hellgrünen Fluoreszenz mit einem Emissions-Peak von 523 nm. Die außergewöhnliche Helligkeit des Signals, das in toten Zellen erzeugt wird, macht SYTOX® Green besonders nützlich, um die Lebensfähigkeit nicht nur von Säugetierzellen, sondern sowohl von grampositiven als auch gramnegativen Bakterien zu bestimmen.

Teil der Invitrogen Familie der Zellviabilitätsfärbungen und Assays
SYTOX® Färbemittel für tote Zellen sind in einer Vielzahl von Farben erhältlich, einschließlich Rot, Blau und Orange. Darüber hinaus hat Invitrogen SYTOX® Färbemittel in eine Reihe von Assays für Apoptose, Zellviabilität und Metabolismus übernommen.

Nur für Forschungszwecke. Nicht für die therapeutische oder diagnostische Anwendung bei Tieren oder Menschen bestimmt.

Verwandter Link
• Erfahren Sie mehr über alle SYTOX® Produkte.

Nur für Forschungszwecke. Nicht zur Verwendung bei diagnostischen Verfahren.

Specifications

FarbeGrün

NachweisverfahrenFluoreszenz, Fluoreszent

FarbstofftypMembrangängig

Emission523 nm

Anregungswellenlängenbereich504 nm

Zur Verwendung mit (Geräte)Durchflusszytometer, Durchflusszytometer

FormLösung

FormatRöhrchen, Röhrchen

ProduktlinieSYTOX

Menge250 μl

VersandbedingungRaumtemperatur, Raumtemperatur

Volumen (metrisch)250 μl

MarkertypFluoreszent

ProdukttypNukleinsäurefärbemittel

SubCellular LocalizationZellkern, Nukleinsäuren, Nucleus

Unit SizeEach

Inhalt und Lagerung

Enthält 1 Fläschchen mit SYTOX™ Green Farbstoff (5 mmol Lösung in DMSO)

Bei -5 bis -30 °C lagern und vor Licht schützen.

Häufig gestellte Fragen (FAQ)

How do SYTO dyes bind to DNA?

The binding mode of SYTO nucleic acid stains is unknown. However, the behavior of these and related nucleic acid dyes suggests the following binding properties:

1.They appear to contact the solvent (suggested by sensitivity to salt, divalent cations, and in particular, SDS) and thus are likely to have contacts in the grooves.
2.All SYTO dyes appear to show some base selectivity and are thus likely to have minor groove contacts.
3.They can be removed from nucleic acid via ethanol precipitation; this characteristic is not shared by ethidium bromide and other intercalators. Likewise, the dyes are not removed from nucleic acid via butanol or chloroform extraction. These extraction methods do remove ethidium bromide from nucleic acid. 4. SYTO binding is not affected by nonionic detergents.
5. SYTO dyes are not quenched by BrdU, so they do not bind nucleic acids in precisely the same way as Hoechst 33342 and DAPI ((4′,6-diamidino-2-phenylindole).

SYBR Green I has shown little mutagenicity on frameshift indicator strains, indicating that it isn't likely to strongly intercalate.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Cell Analysis Support Center.

I need to mount my Qdot secondary-labeled tissue samples in HistoMount mounting medium, but my Qdot 705 conjugate overlaps with your Qnuclear Deep Red nuclear label. What other nuclear label would you recommend, that is compatible with HistoMount mounting medium?

We recommend using SYTOX Green stain, which you can image using a FITC filter and we have shown to be compatible with HistoMount mounting medium. Some have used DAPI, but there have been some issues with slight quenching and spectral shifting of DAPI into green or even red wavelengths.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Cell Analysis Support Center.

I am using SYTOX AAdvanced as a dead cell stain, but all of my cells are labeling even though I am certain that they are supposed to be alive. These are adherent cells that I have trypsinized. Why am I getting false-dead signals?

SYTOX AAdvanced labels only dead cells because it is a cell impermeant dye. The dye can only enter cells that have a compromised plasma membrane. Trypsinization may cause temporary disruption of the plasma membrane, sufficient to allow staining with a cell impermeant dye. You can reduce the “false-dead” problem by either reducing the amount of trypsin and/or reduce the incubation time for trypsinization or use a gentler dissociation reagent such as TrypLE Express, TrypLESelect reagents, or Versene. After trypsinization, wash well, and if possible, allow a recovery time in normal culture media before staining with any of the SYTOX dyes.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Cell Analysis Support Center.

Zitierungen und Referenzen (262)

Zitierungen und Referenzen

Abstract

Identification and characterization of two subpopulations of Encephalitozoon intestinalis.

Authors:Hoffman RM, Marshall MM, Polchert DM, Jost BH

Journal:Appl Environ Microbiol

PubMed ID:12902292

Microsporidia are obligate intracellular protozoa that have been shown to be pathogenic to most living creatures. The development of in vitro cell culture propagation methods has provided researchers with large numbers of spores and facilitated the study of these organisms. Here, we describe heterogeneity within cell culture-propagated Encephalitozoon intestinalis suspensions. ... More

Use of SYTOX green dye in the flow cytometric analysis of bacterial phagocytosis.

Authors:Gaforio JJ, Serrano MJ, Ortega E, Algarra I, Alvarez de Cienfuegos G

Journal:Cytometry

PubMed ID:12116370

BACKGROUND: Fluorescein isothiocyanate (FITC) is used widely to label the targets used in flow cytometric phagocytosis assays. Unfortunately, the fluorescence intensity of phagocytosed FITC-labeled targets is influenced by changes in intracellular pH level, making quantitative measurements with this fluorophore problematic. We describe the use of SYTOX green nucleic acid stain ... More

Unique catabolic pathway of glycosphingolipids in a hydrozoan, Hydra magnipapillata, involving endoglycoceramidase.

Authors:Horibata Y, Sakaguchi K, Okino N, Iida H, Inagaki M, Fujisawa T, Hama Y, Ito M

Journal:J Biol Chem

PubMed ID:15320336

Endoglycoceramidase (EGCase; EC 3.2.1.123) is an enzyme capable of cleaving the glycosidic linkage between oligosaccharides and ceramides of various glycosphingolipids. We detected strong EGCase activity in animals belonging to Cnidaria, Mollusca, and Annelida and cloned the enzyme from a hydra, Hydra magnipapillata. The hydra EGCase, consisting of 517 amino acid ... More

Cell death during ischemia: relationship to mitochondrial depolarization and ROS generation.

Authors:Levraut J, Iwase H, Shao ZH, Vanden Hoek TL, Schumacker PT

Journal:Am J Physiol Heart Circ Physiol

PubMed ID:12388276

Ischemia-reperfusion injury induces cell death, but the responsible mechanisms are not understood. This study examined mitochondrial depolarization and cell death during ischemia and reperfusion. Contracting cardiomyocytes were subjected to 60-min ischemia followed by 3-h reperfusion. Mitochondrial membrane potential (DeltaPsi(m)) was assessed with tetramethylrhodamine methyl ester. During ischemia, DeltaPsi(m) decreased to ... More

Up-regulation of cyclooxygenase-2 and apoptosis resistance by p38 MAPK in hypericin-mediated photodynamic therapy of human cancer cells.

Authors:Hendrickx N, Volanti C, Moens U, Seternes OM, de Witte P, Vandenheede JR, Piette J, Agostinis P

Journal:J Biol Chem

PubMed ID:14557269

Photodynamic Therapy (PDT) is an approved anticancer therapy that kills cancer cells by the photochemical generation of reactive oxygen species following absorption of visible light by a photosensitizer, which selectively accumulates in tumors. We report that hypericin-mediated PDT of human cancer cells leads to up-regulation of the inducible cyclooxygenase-2 (COX-2) ... More

View all SYTOX™ Green Nukleinsäurefärbemittel – 5 mmol-Lösung in DMSO citations