LightShift™ Chemiluminescent EMSA Kit
Thermo Scientific™

LightShift™ Chemiluminescent EMSA Kit

Le kit EMSA chimiluminescent Thermo Scientific LightShift est un système exceptionnellement robuste et sensible. Il permet de réaliser des analysesAfficher plus
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Référence 20148
Prix (EUR)
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Le kit EMSA chimiluminescent Thermo Scientific LightShift est un système exceptionnellement robuste et sensible. Il permet de réaliser des analyses de mobilité électrophorétique (EMSA) pour identifier et caractériser les interactions de liaison des protéines à l’ADN. Le kit comprend des réactifs pour paramétrer et personnaliser les réactions de liaison à l’ADN, un ensemble de contrôles de l’extrait d’ADN et de protéines pour tester le système du kit, le conjugué streptavidine-HRP stabilisé pour vérifier la cible biotinylée d’ADN et un module de substrat chimiluminescent extrêmement sensible à des fins de détection.

Caractéristiques du kit EMSA chimiluminescent LightShift :

• Excellent pour détecter les protéines de faible abondance dans les extraits nucléaires
• Sensibilité qui dépasse les méthodes radioactives et digoxigénine
• Compatible avec les conditions de liaison établies précédemment pour les interactions ADN-protéines populaires
• Comprend un système de contrôle EBNA pour aider les nouveaux utilisateurs à développer un dosage de travail et à comprendre les méthodes utilisées pour confirmer la spécificité de l’interaction de liaison

Le principe pour la détection EMSA LightShift est similaire à un transfert Western. L’ADN en duplex marqué aux extrémités par la biotine est incubé avec un extrait nucléaire ou un facteur purifié et soumis à l’électrophorèse sur un gel natif. L’ADN est ensuite transféré rapidement (30 minutes) vers une membrane de nylon positive, réticulé aux UV, analysé avec le conjugué streptavidine-HRP et incubé avec le substrat. Le protocole, du marquage aux résultats, peut être réalisé en une seule journée.

L’interaction des protéines avec l’ADN est essentielle au contrôle de nombreux processus cellulaires, notamment la réplication de l’ADN, la recombinaison et la réparation, la transcription et l’assemblage viral. Une technique centrale pour étudier la régulation des gènes et déterminer les interactions protéine-ADN est le retard sur gel (EMSA).

La technique EMSA repose sur l’observation que les complexes protéine-ADN migrent plus lentement que les molécules d’ADN libres lorsqu’ils sont soumis à une électrophorèse sur gel d’agarose ou polyacrylamide non dénaturant. Étant donné que le débit de migration d’ADN est décalé ou retardé lors de la liaison protéinique, on dit aussi que l’analyse est un retard sur gel ou un dosage de retard sur gel. Avant l’EMSA, les interactions protéine-ADN étaient étudiées principalement par des dosages de liaison filtration par nitrate de cellulose.

Pour effectuer un tel dosage, il suffit de se procurer une cible d’ADN purifié et marqué aux extrémités par la biotine, un extrait de protéine à tester, une membrane en nylon et des équipements d’électrophorèse de base. Les cibles d’ADN peuvent être synthétisées avec des marqueurs de biotine 5’ ou 3’, ou encore marquées après la synthèse à l’aide du kit Thermo Scientific de marquage d’ADN à la biotine sur l’extrémité 3’ (N° de catalogue 89818). Plusieurs méthodes permettent d’obtenir des extraits protéiques de cellules nucléaires, cytosoliques ou entières. Parmi ces méthodes, nous pouvons citer le kit de réactif d’extraction nucléaire et cytoplasmique Thermo Scientific NE-PER (produit n°78833).

Plus de données sur le produit
Transfert de gels d’EMSA en utilisant l’appareil de transfert rapide Pierce G2

Produits associés
Kit de contrôle et d’optimisation d’EMSA LightShift™
Poly (dI-dC) LightShift™
For Research Use Only. Not for use in diagnostic procedures.
Spécifications
DoserDosage EMSA
Nbre de réactions100 réactions
Gamme de produitsLightShift™
Type de produitKit de dosage d’interaction liaison protéine-ADN
Quantité100 réactions
Spécificité cibleNon spécifique à la cible
TechniqueChimiluminescence améliorée, transfert de membrane, retard sur gel
Méthode de détectionChimiluminescence
FormatKit
Unit Size100 reactions

Foire aux questions (FAQ)

If the LightShift Chemiluminescent EMSA kit has been improperly stored (i.e., at room temperature, -20°C or +4°C), will it still work correctly?

The LightShift Chemiluminescent EMSA Kit is composed of two sets of components that require different storage temperatures. One component set consists of the chemiluminescent substrates and various buffers that are stored at 4°C. The other component set consists of the control DNAs and various optimization reagents that are stored at -20°C. The EBNA extract must be maintained at -20°C or it will lose activity (proteins will degrade). Short-term storage (overnight) of the other kit components at temperatures ranging from room temperature to -20°C will not adversely affect kit performance.

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I am using the LightShift Chemiluminescent EMSA kit. Can I probe for the proteins by performing a Western blot?

This has not been tested but may be possible. A better alternative is to perform a DNA binding protein pull-down assay using a probe. The following journal article is a good example of how the LightShift Chemiluminescent EMSA Kit and pull-down assays were used to detect a transcription factor bound to a DNA probe: Ragione, A.L., et al. (2003), J. Biol. Chem. 278(26):23360-8.

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I am using the LightShift Chemiluminescent EMSA kit. How much protein do I need for each reaction?

The amount of protein extract needed for a binding reaction depends on how much active DNA binding protein is in the sample. The LightShift Kit is sensitive and will easily detect 5 fmol of active protein bound to 5 fmol of biotinylated probe. If the protein being studied is abundant, 0.25 µg of a cell lysate may be sufficient for each binding reaction. However, if the protein of interest is rare, 10 µg or more of cell lysate may be needed. Using a large excess of protein extract may lead to high background signal and non-specific bands.

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What is a "supershift"?

A supershift assay is a method for positively identifying a protein:DNA interaction on an EMSA. An antibody (typically 1 µg) is added to the binding reaction. During electrophoresis, the antibody:protein:DNA complex migrates slowly, causing a “supershift” compared to the “shift” caused by a protein:DNA complex. Not all antibodies will cause a supershift. Some antibodies do not bind to proteins once they are bound to DNA. Some antibodies can prevent protein:DNA interactions but can still be used to confirm the identity of a protein that causes a shift in the absence of the antibody.

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Can the LightShift Chemiluminescent EMSA Kit be used to perform supershifts?

Yes, the LightShift Chemiluminescent EMSA Kit can be used to detect supershifts. However, not all antibodies will work for supershift assays. Some antibodies will prevent protein:DNA interactions. In addition, the order in which the components of the binding reaction are assembled may affect the results of a supershift assay. Generally, 1 µg antibody is added as the last component in the binding reaction. For examples of how the LightShift Chemiluminescent EMSA Kit was used to detect supershifts, see the following:

Adimoolam, S. and Ford, J.M. (2002). PNAS. 99(20):12985-90
Magid, R., et al. (2003). J. Biol. Chem. 278(35):32994-9
Ragione, F.D., et al. (2003). J. Biol. Chem. 278(26):23360-8
Rinaldi, A.L., et al. (2002). Cancer Research. 62(19):5451-6


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Citations et références (26)

Citations et références
Abstract
Salidroside inhibits migration, invasion and angiogenesis of MDA‑MB 231 TNBC cells by regulating EGFR/Jak2/STAT3 signaling via MMP2.
Authors:Kang DY,Sp N,Kim DH,Joung YH,Lee HG,Park YM,Yang YM
Journal:International journal of oncology
PubMed ID:29901185
The major hallmarks of tumor progression are angiogenesis, migration and metastasis. Among the components of Rhodiola rosea, salidroside (p‑hydroxyphenethyl-β‑d-glucoside) is one of the most potent, and is present in all Rhodiola species. Recent data have revealed the anticancer effects of salidroside; however, the mechanism underlying its ability to inhibit tumor ... More
Exo70 is transcriptionally up-regulated by hepatic nuclear factor 4α and contributes to cell cycle control in hepatoma cells
Authors:Zhao Y, Hou J, Mi P, Mao L, Xu L, Zhang Y, Xiao L, Cao H, Zhang W, Zhang B, Song G, Hu T, Zhan YY.
Journal:Oncotarget
PubMed ID:26848864
Exo70, a member of the exocyst complex, is involved in cell exocytosis, migration, invasion and autophagy. However, the expression regulation and function of Exo70 in hepatocellular carcinoma are still poorly understood. In this study, we found Exo70 expression in human hepatoma cells was greatly reduced after knocking down hepatic nuclear ... More
Disruption of chaperone-mediated autophagy-dependent degradation of MEF2A by oxidative stress-induced lysosome destabilization.
Authors:Zhang L,Sun Y,Fei M,Tan C,Wu J,Zheng J,Tang J,Sun W,Lv Z,Bao J,Xu Q,Yu H
Journal:Autophagy
PubMed ID:24879151
Oxidative stress has been implicated in both normal aging and various neurodegenerative disorders and it may be a major cause of neuronal death. Chaperone-mediated autophagy (CMA) targets selective cytoplasmic proteins for degradation by lysosomes and protects neurons against various extracellular stimuli including oxidative stress. MEF2A (myocyte enhancer factor 2A), a ... More
Estrogen Regulates Angiotensin II Receptor Expression Patterns and Protects the Heart from Ischemic Injury in Female Rats.
Authors:Xue Q, Xiao D, Zhang L
Journal:
PubMed ID:25972014
'Previous studies have shown that female offspring are resistant to fetal stress-induced programming of ischemic-sensitive phenotype in the heart; however, the mechanisms responsible remain unclear. The present study tested the hypothesis that estrogen plays a role in protecting females in fetal programming of increased heart vulnerability. Pregnant rats were divided ... More
The solution structure of the forkhead box-O DNA binding domain of Brugia malayi DAF-16a.
Authors:Casper SK, Schoeller SJ, Zgoba DM, Phillips AJ, Morien TJ, Chaffee GR, Sackett PC, Peterson FC, Crossgrove K, Veldkamp CT
Journal:
PubMed ID:25297652
Brugia malayi is a parasitic nematode that causes lymphatic filariasis in humans. Here the solution structure of the forkhead DNA binding domain of Brugia malayi DAF-16a, a putative ortholog of Caenorhabditis elegans DAF-16, is reported. It is believed to be the first structure of a forkhead or winged helix domain ... More