Novex™ WedgeWell™ 4 à 20 %, Tris-Glycine, 1,0 mm, mini-gels de protéines
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Novex™ WedgeWell™ 4 à 20 %, Tris-Glycine, 1,0 mm, mini-gels de protéines
Invitrogen™

Novex™ WedgeWell™ 4 à 20 %, Tris-Glycine, 1,0 mm, mini-gels de protéines

Les mini-gels Invitrogen Novex Tris-Glycine, format WedgeWell, sont des gels de polyacrylamide permettant une séparation reproductible d’une vaste gamme deAfficher plus
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RéférencePuitsQuantité
XP04205BOX15 puits10 gels/boîte
XP04200PK210 puits2 gels/boîte
XP04200BOX10 puits10 gels/boîte
XP04202BOX12 puits10 gels/boîte
Référence XP04205BOX
Prix (EUR)
99,65
Online Exclusive
144,00
Économisez 44,35 (31%)
10 gels (1 box)
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Puits:
15 puits
Quantité:
10 gels/boîte
Prix (EUR)
99,65
Online Exclusive
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Les mini-gels Invitrogen Novex Tris-Glycine, format WedgeWell, sont des gels de polyacrylamide permettant une séparation reproductible d’une vaste gamme de protéines en bandes bien résolues avec une capacité de charge doublée. Les mini-gels Novex Tris-Glycine se basent sur l’électrophorèse des protéines classiques selon Laemmli, ce qui permet l’utilisation de tampons de migration et d’échantillons de Laemmli.

En savoir plus sur nos gels Novex Tris-Glycine ›

Consultez les tableaux de migration ›

Caractéristiques des gels Novex Tris-Glycine, format WedgeWell :
• Durée de conservation améliorée — stockage des gels pendant au plus 6 mois à 4°C
• Diversité — utilisation pour des dosages de protéines dénaturantes et natives
• Puits en biseau — charge facilement jusqu’à deux fois plus de volume d’échantillon
• Conditions de migration rapide — sépare vos protéines en moins de 60 minutes en utilisant une tension constante

Choisir le format de gel adapté à vos expériences
Les gels Novex WedgeWell Tris-Glycine sont disponibles en une variété de concentrations fixes allant de 4 – 12 %, 4 – 20 %, 8 – 16 % et 10 – 20 %. Vous pouvez choisir parmi nos nombreux formats de puits : 10, 12 et 15 puits, et différents formats d’emballage.

Migre vos protéines dans une forme native ou dénaturée
Les gels Novex Tris-Glycine, avec format de puits en biseau ne contiennent pas de SDS et peuvent être utilisés pour migrer vos protéines dans une forme native ou dénaturée. Pour les protéines dénaturées, nous recommandons l’utilisation d’un tampon d’échantillon Novex Tris-Glycine SDS et d’un tampon de charge Novex Tris-Glycine SDS. Pour les protéines natives, nous recommandons l’utilisation d’un tampon d’échantillon Novex Tris-Glycine Native et d’un tampon de migration Novex Tris-Glycine Native.

Pratiques à utiliser
Les gels Novex Tris-Glycine, format WedgeWell, ont des puits en forme de biseau innovante qui permettent de déposer jusqu’à deux fois plus de volume de charge d’échantillon que les autres gels de 1,0 mm d’épaisseur. Les puits en biseau ont également des ouvertures plus larges, ce qui facilite le chargement des échantillons.

Pour transférer vos protéines vers une membrane, nous recommandons l’utilisation du tampon de transfert Novex Tris-Glycine en procédant à un transfert humide traditionnel à l’aide du module Invitrogen Mini Blot. Les transferts peuvent aussi être réalisés avec un transfert semi-sec rapide à l’aide de Invitrogen Power Blotter ou un transfert rapide sec à l’aide du Dispositif de transfert de gel iBlot 2.
For Research Use Only. Not for use in diagnostic procedures.
Spécifications
Gel Thickness1,0 mm
Longueur (métrique)8 cm
Mode de séparationPoids moléculaire
Gamme de produitsNovex, WedgeWell
Quantité10 gels/boîte
Applications recommandéesDénaturation, natif
Volume de chargement des échantillonsJusqu’à 35 µl
Durée de conservation7 mois
Conditions d’expéditionGlace humide
Conditions de stockageÀ stocker entre 2° et 8°C. Ne pas congeler.
Largeur (métrique)8 cm
À utiliser avec (équipement)Mini-cuve à gel Mini Gel Tank, Minicellule XCell SureLock
Pourcentage de gel4 à 20%
Dimensions de gelMini
Type de gelTris-Glycine Plus
Plage de séparation20 à 200 kDa
Type de séparationDénaturation, natif
Puits15 puits
Unit Size10 gels (1 box)
Contenu et stockage
Conserver au réfrigérateur (2–à 8°C). Durée de conservation jusqu’à 7 mois.

Foire aux questions (FAQ)

Is it okay to use protein gels past their expiration date?

We do not recommend using gels past their expiration date because over time, the polyacrylamide hydrolyzes to acrylic acid and ammonia and this will affect the resolution of the proteins. Breakdown of polyacrylamide matrix is identified by:
- Ghost bands and doublets, seen first in the high molecular weight proteins
- Smiling of dye front across the gel, with bands in outer lanes becoming very slanted - proteins run slower there due to change in pH and pore size over time.


Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Protein Electrophoresis and Western Blotting Support Center.

Can I run your protein gels overnight?

This is not really recommended, but it is always possible to increase run time by lowering the voltage of the run. In general, the relationships are linear - i.e., decreasing voltage by half will double the run time.

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Do I need to increase the voltage when I run a 1.5 mm protein gel versus a 1.0 mm gel?

If you are running the gel at constant voltage, you do not need to increase the voltage regardless of the thickness of the gel.

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Why do you recommend running your protein gels at constant voltage?

Using constant voltage allows the current and power to decrease during the run, providing a safety margin in case of a break in the system. Having lower power is a safety benefit and will also decrease the chances of experiencing an overheating of the gel. Further, the constant voltage setting does not need adjustment to account for differences in number or thickness of gels being run.

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I am transferring a Tris-Glycine gel using constant voltage and the current reading is way over the expected starting current. Can you offer some suggestions?

The most common cause of abnormally high current is the transfer buffer. If the transfer buffer is too concentrated, this leads to increased conductivity and current. High current may also occur if Tris-HCl is accidentally substituted for the Tris base required in the transfer buffer. This will again result in low buffer pH and lead to increased conductivity and current and subsequently, overheating. We recommend checking the transfer buffer and its reagent components and re-diluting or remaking the buffer.

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