Exosome Immunoprecipitation Reagent (Protein G)
Exosome Immunoprecipitation Reagent (Protein G)
Exosome Immunoprecipitation Reagent (Protein G)
Exosome Immunoprecipitation Reagent (Protein G)
Invitrogen™

Exosome Immunoprecipitation Reagent (Protein G)

エキソソーム免疫沈降試薬(プロテインG)は、エキソソームタンパク質を迅速かつ穏やかに磁気単離し、標的タンパク質への物理的ストレスを最小限に抑えるとともに、同一ゲル上で複数サンプルの比較を可能にします。•インタクトなエキソソームタンパク質複合体を維持• バックグラウンドを大幅に削減—非特異結合を抑制• 迅速なプロトコル時間—わずか30分• 最大の比較—感度が非常に高いため詳細を見る
製品番号(カタログ番号)数量
10612D1 mL
製品番号(カタログ番号) 10612D
価格(JPY)
-
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数量:
1 mL
エキソソーム免疫沈降試薬(プロテインG)は、エキソソームタンパク質を迅速かつ穏やかに磁気単離し、標的タンパク質への物理的ストレスを最小限に抑えるとともに、同一ゲル上で複数サンプルの比較を可能にします。

•インタクトなエキソソームタンパク質複合体を維持
• バックグラウンドを大幅に削減—非特異結合を抑制
• 迅速なプロトコル時間—わずか30分
• 最大の比較—感度が非常に高いため、同一ゲル上で多数のサンプルを処理できる

プロテインGに結合したDynabeads™は、免疫沈降(IP)、クロマチン免疫沈降(ChIP)、およびタンパク質単離に広く使用されています。磁気分離技術は他の方法よりも高速かつ穏やかであり、標的タンパク質への物理的ストレスを最小限に抑えることができるため、その磁気特性により、Dynabeads™は免疫沈降においてセファロースやアガローススラリーに代わる優れた代替品となります。これにより、長時間のインキュベーション中にプロテアーゼによって解離したり損傷したりする可能性のある不安定な複合体の単離と濃縮が可能になります。ネイティブタンパク質の立体構造と、インタクトで大きなタンパク質複合体は保持されます。

エキソソーム免疫沈降(プロテインG)は、Dynabeads™プロテインGを使用して抗体結合およびエキソソームタンパク質を免疫沈降します。抗体がDynabeads™懸濁液に添加されると、抗体のFc領域を介して結合が行われます。この混合物を磁石付近に配置すると、ビーズがチューブ側面に移動するため、上清を容易に除去できます。このようにして、ビーズ結合抗体をエキソソームタンパク質の免疫沈降に使用できるようになります。免疫沈降により、ウェスタンブロッティングなどのタンパク質分析の前にエキソソームタンパク質の濃度を10~50倍にすることができます。

エキソソーム免疫沈降(プロテインG)で捕捉されるIgの量は、開始サンプル中のIgの濃度によって異なります。1 mLビーズあたり約240 µgのヒトIgと結合します。

プロテインAを介したIgの単離には、エキソソーム免疫沈降(プロテインA)を使用することをおすすめします。

研究用途にのみご使用ください。ヒトまたは動物の治療もしくは診断目的には使用できません。
研究用にのみ使用できます。診断用には使用いただけません。
仕様
最終産物タイプタンパク質複合体、タンパク質(ネイティブ)
フォーマット懸濁液中のビーズ
高スループット適合性ハイスループット非対応(手動)
単離技術磁気ビーズ
リガンドタイプタンパク質G
製品ラインDynabeads
数量1 mL
サンプルタイプエキソソーム
出荷条件室温
ターゲット種全生物種
直径(メートル法)2.8 μm
製品タイプエキソソーム免疫沈降試薬
Unit SizeEach
組成および保存条件
2~8℃で保存します。

よくあるご質問(FAQ)

What is the best way to store my exosomes?

For the short-term, exosomes can be stored at 4 degrees C for up to 1 week. For the long-term, exosomes can be stored at -20 degrees C or -80 degrees C. When storing exosomes for the long term, it is important to consider whether they will need to be thawed more than once for the target application. If multiple applications (and thus multiple thaws) will be used for analysis, then we recommend aliquoting the exosome resuspensions into multiple tubes so that each tube will only undergo one freeze/thaw cycle. We have found that multiple freeze thaw cycles can cause damage to the exosomes and reduce their numbers.

There are two protocol options for exosome isolation from plasma samples, which one should I choose?

Unlike serum, plasma contains numerous clotting factors and some additional proteins that can make it difficult to work with. We‘ve provided two protocol options, one with proteinase K (PK) and one without, in order to ease this difficulty. The protocol using PK is most useful when the end goal is analysis of the RNA or protein cargo contained inside the exosomes. It can also be used to isolate exosomes for use in other downstream applications, but it is most useful for RNA and protein analysis. The protocol without PK also isolates good quality exosomes, just not quite as pure as the PK protocol. The “no PK” protocol is more useful for isolating exosomes that will be used for surface protein analysis or electron microscopy identification.

My Westerns do not seem to work after exosome isolation. Can you help?

There are several possible reasons why Western blotting analysis is challenging:

1. Not enough sample volume added. Exosomes can contain a fairly low amount of protein cargo, so for an initial experiment we recommend adding as much of the sample as possible.
2. Antibody concentration should be titrated. Also, they should ideally be used fresh and need to be stored properly.
3. Depending on the exosomal surface marker, certain gel conditions might be more optimal for the target antibody (e.g., reducing/nonreducing and denaturing/nondenaturing). We suggest checking with the manufacturer and exosome community about which Western blotting conditions are recommended for the specific marker you are targeting and the specific antibody you are using.
4. General Western techniques. Westerns can be tricky so we recommend the use of a positive control for initial testing to make sure the entire workflow is functioning as it should. Any protein or antibody can be used as long as they meet the conditions you need (e.g., denaturing vs. non-denaturing). In addition, when picking the protein, try to steer clear of those that are present at very high or very low concentrations in your sample to prevent overloading the blot or total absence of signal.

How much RNA can be recovered from the exosomes?

This can vary depending on the sample type, volume of sample, isolation method, and exosome content/concentration. Listed below are some examples:

1) When exosomes are isolated from 30 mL of HeLa cell culture medium using the Total Exosome Isolation Reagent, it is possible to recover approximately 8 ng exosomal RNA.
2) For exosomes recovered from 4 mL serum, approximately 2 ng exosomal RNA can be obtained.

In both cases, these amounts of RNA are sufficient for RNA library prep for Ion PGM or Ion Proton sequencing. For real-time PCR analysis, substantially smaller amounts of RNA are needed and much lower sample volumes can be used. For example, RNA recovered from 3 µL serum or 30 µL medium is enough for one qRT-PCR reaction.

I'm using the Total Exosome RNA & Protein Isolation Kit. When ethanol is added to buffer 2/3, the solution turns turbid. Does this affect the efficiency of RNA recovery?

No, the described effect does not have a negative impact on the RNA recovery.