ElectroMAX™ DH5α-E Competent Cells
ElectroMAX™ DH5α-E Competent Cells
Invitrogen™

ElectroMAX™ DH5α-E Competent Cells

ElectroMAX DH5α-EコンピテントセルはDH5α株から得られ、エレクトロポレーションによる形質転換に適しています。cDNAライブラリの生成や、限られたインプットDNAによる形質転換など、高い形質転換効率を必要とする手順で使用できます。ElectroMAX DH5-Eαセルの特長:•エレクトロポレーションにより、>1 x詳細を見る
製品番号(カタログ番号)数量
113190195 x 100 μL
製品番号(カタログ番号) 11319019
価格(JPY)
85,000
Each
お問い合わせください ›
数量:
5 x 100 μL
ElectroMAX DH5α-EコンピテントセルはDH5α株から得られ、エレクトロポレーションによる形質転換に適しています。cDNAライブラリの生成や、限られたインプットDNAによる形質転換など、高い形質転換効率を必要とする手順で使用できます。ElectroMAX DH5-Eαセルの特長:

•エレクトロポレーションにより、>1 x 1010の形質転換体/µgの効率
endA1変異によるプラスミドの収量と品質が大幅に向上
•30 kbサイズのプラスミドを用いた高効率形質転換
lacZΔM15による組換えクローンの青/白スクリーニング
recA1変異によるインサート安定性の確保
研究用にのみ使用できます。診断用には使用いただけません。
仕様
抗生物質耐性菌No
青/白スクリーニング
メチル化DNAのクローニング不可
不安定DNAのクローニング不安定なDNAのクローニングには不適
F'エピソームを含むF’エピソームが欠落しています
高スループット適合性ハイスループット非対応(手動)
プラスミドの品質を向上
プラスミドプラスミド>20 kb に使用可能
非メチル化DNAの調製非メチル化DNAの調製には適していません
製品ラインDH5a、ElectroMAX
製品タイプコンピテントセル
数量5 x 100 μL
組換えを抑制
出荷条件ドライアイス
T1ファージ-耐性(tonA)不可
形質転換効率レベル高効率(> 10^9 cfu⁄µg)
フォーマットチューブ
E. coli
Unit SizeEach
組成および保存条件
内容:
•ElectroMAX DH5α-Eコンピテントセル:5バイアル、各100 µl
• pUC19 DNA(10 pg/µl):1バイアル、50 µL
• S.O.C.培地:

2 ボトル、各 6 ml、コンピテントセルは-80℃で保存します。pUC19 DNAは-20℃で保存してください。SOC培地は4℃または室温で保存してください。

よくあるご質問(FAQ)

How do you recommend that I prepare my DNA for successful electroporation of E. coli?

For best results, DNA used in electroporation must have a very low ionic strength and a high resistance. A high-salt DNA sample may be purified by either ethanol precipitation or dialysis.

The following suggested protocols are for ligation reactions of 20ul. The volumes may be adjusted to suit the amount being prepared.

Purifying DNA by Precipitation: Add 5 to 10 ug of tRNA to a 20ul ligation reaction. Adjust the solution to 2.5 M in ammonium acetate using a 7.5 M ammonium acetate stock solution. Mix well. Add two volumes of 100 % ethanol. Centrifuge at 12,000 x g for 15 min at 4C. Remove the supernatant with a micropipet. Wash the pellet with 60ul of 70% ethanol. Centrifuge at 12,000 x g for 15 min at room temperature. Remove the supernatant with a micropipet. Air dry the pellet. Resuspend the DNA in 0.5X TE buffer [5 mM Tris-HCl, 0.5 mM EDTA (pH 7.5)] to a concentration of 10 ng/ul of DNA. Use 1 ul per transformation of 20 ul of cell suspension.

Purifying DNA by Microdialysis: Float a Millipore filter, type VS 0.025 um, on a pool of 0.5X TE buffer (or 10% glycerol) in a small plastic container. Place 20ul of the DNA solution as a drop on top of the filter. Incubate at room temperature for several hours. Withdraw the DNA drop from the filter and place it in a polypropylene microcentrifuge tube. Use 1ul of this DNA for each electrotransformation reaction.

When should DMSO, formamide, glycerol and other cosolvents be used in PCR?

Cosolvents may be used when there is a failure of amplification, either because the template contains stable hairpin-loops or the region of amplification is GC-rich. Keep in mind that all of these cosolvents have the effect of lowering enzyme activity, which will decrease amplification yield. For more information see P Landre et al (1995). The use of co-solvents to enhance amplification by the polymerase chain reaction. In: PCR Strategies, edited by MA Innis, DH Gelfand, JJ Sninsky. Academic Press, San Diego, CA, pp. 3-16.

Additionally, when amplifying very long PCR fragments (greater than 5 kb) the use of cosolvents is often recommended to help compensate for the increased melting temperature of these fragments.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our PCR and cDNA Synthesis Support Center.