Pierce™ 16% Formaldehyde (w/v), Methanol-free
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Pierce™ 16% Formaldehyde (w/v), Methanol-free
Pierce™ 16% Formaldehyde (w/v), Methanol-free
Thermo Scientific™

Pierce™ 16% Formaldehyde (w/v), Methanol-free

Thermo Scientific Pierceホルムアルデヒドアンプルはメタノールフリーの高品質ホルムアルデヒドのバイアルで、汎用なIHC固定剤として、またタンパク質および核酸組織サンプルの可逆的アミンクロスリンカーとして使用できます。アンプルに密封された高品質ホルムアルデヒド溶液の使用は貴重な時間を節約し、溶液をパラホルムアルデヒドから直接調製する必要や、その際の危険を排除します。Pierce Formaldehydeは粒状パラホルムアルデヒドから直接入念に調製され詳細を見る
製品番号(カタログ番号)数量
2890610 x 1 mL
2890810 x 10 mL
製品番号(カタログ番号) 28906
価格(JPY)
15,200
Each
カートに追加
数量:
10 x 1 mL
一括またはカスタム形式をリクエストする
価格(JPY)
15,200
Each
カートに追加
Thermo Scientific Pierceホルムアルデヒドアンプルはメタノールフリーの高品質ホルムアルデヒドのバイアルで、汎用なIHC固定剤として、またタンパク質および核酸組織サンプルの可逆的アミンクロスリンカーとして使用できます。

アンプルに密封された高品質ホルムアルデヒド溶液の使用は貴重な時間を節約し、溶液をパラホルムアルデヒドから直接調製する必要や、その際の危険を排除します。Pierce Formaldehydeは粒状パラホルムアルデヒドから直接入念に調製され、不活性ガス下で1 mLおよび10 mLのアンプルに封入されています。アンプルパッケージは溶液を空気酸化と光の両方から保護することで製剤を安定化するため、毎回新鮮なホルムアルデヒドを使用できます。

メタノールフリー16%ホルムアルデヒドアンプルの特長:

新鮮—ホルムアルデヒド溶液は切れ目入りの褐色アンプルに封入されているため安定性が維持され、コンタミネーションなし。
適切なサイズ—培養ターゲット細胞固定から細胞内タンパク質ベースのアプリケーションまで、多様な用途に適合するパッケージサイズ。
便利な開始濃度—16%(w/v)のホルムアルデヒド溶液であるため、必要な使用濃度にまで希釈するのがシンプル
廃棄を最小化—1 mLおよび10 mLのパッケージサイズを選択できるため無駄を削減し、廃棄処理の問題を最小限に軽減。

アプリケーションに合わせたアンプルパッケージ
16%ホルムアルデヒド溶液(ホルマリン)のパッケージサイズは、小量および大量の両方を対象にしています。メタノールフリーの新鮮なホルムアルデヒド溶液を必要とするもっとも一般的なアプリケーションに基づいて適切なパッケージサイズを選択できます。16%(w/v)溶液であるため、それぞれのアプリケーションに応じて希釈するのがシンプルで、アプリケーションに合わせたパッケージは廃棄を最小限に低減します。

•1 mLアンプルは、クロマチン免疫沈降(ChIP)やタンパク質相互作用研究などの、タンパク質ベースの細胞内アプリケーションを想定しています。
•10 mLアンプルは、画像解析前に培養プレートに細胞を固定するなど、バイオイメージング(ハイコンテントスクリーニング/解析)を想定しています。

調製時の鮮度をアンプルに封入
当社のホルムアルデヒド溶液は、パラホルムアルデヒド(高純度の粒状固体)を蒸留/脱イオン水で16%(w/v)溶液に調製したものです。ホルムアルデヒド溶液はギ酸に酸化し、最終的にはパラホルムアルデヒドに再重合するため、溶液の安定化は重要です。メタノールフリーのホルムアルデヒドを必要とするほとんどのプロトコルは、ホルムアルデヒドを新鮮調製することを推奨しています。このホルムアルデヒド溶液は、調製後すぐに不活性ガス下でアンプルに封入されています。アンプルパッケージは製剤を安定化するため、毎回新鮮なホルムアルデヒドを使用できます。

ガラス製アンプルを開封する際の安全性を高めるに、当社のAmpule Breakersの使用をご検討ください。この製品は使い捨ての安全性器具で、ガラスアンプルの開封時に手指を保護します。

研究用途にのみご使用ください。診断目的には使用できません。
仕様
化学物質名または材質ホルムアルデヒド
推奨保存方法元の容器に入れ、直射日光を避け、低温で乾燥した換気の良い場所に保存。
物理的フォーム液体
製品ラインPierce
数量10 x 1 mL
Unit SizeEach

よくあるご質問(FAQ)

Where do I find the expiry date of Pierce 16% Formaldehyde (w/v), Methanol-free (Cat. No. 28906)?

We guarantee the functionality of Pierce 16% Formaldehyde (w/v), Methanol-free for one year from date of shipment, if stored correctly. See Limited Warranties for consumables under the General Terms and Conditions of Sale.

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What are the options for crosslinking proteins to nucleic acids, and what are the differences between them?

We offer the following crosslinkers for protein to nucleic acids: formaldehyde (Cat. No. 28906), SPB (Cat. No. 23013), SDAD (Cat. No. 26169), sulfo-SDAD (Cat. No. 26175), and sulfo-SBED (Cat. No. A39260).
Formaldehyde can be used for DNA-DNA crosslinking as well as DNA-protein crosslinking. While it is good for crosslinking proteins that are in direct contact with DNA, formaldehyde cannot link proteins that may be bound in a complex with other proteins but are not in direct contact with DNA. EGS or DSG can crosslink proteins to other proteins that are in direct contact with DNA and crosslinked to DNA by formaldehyde.
SPB, Sulfo-SDAD, and Sulfo-SBED are all photoreactive crosslinkers. SPB is an NHS-ester and psoralen heterobifunctional crosslinker that conjugates primary amines on proteins to DNA via photo-activated intercalation of psoralen to pyrimidine bases. The psoralen tricyclic planar ring system intercalates into double-stranded, and to a lesser extent, single-stranded DNA and RNA. The photoreactive psoralen group provides more selective covalent binding to nucleic acids than either phenyl azide or diazerine linkers, which makes SPB the best choice. The diazerine on sulfo-SDAD and the phenyl azide on sulfo-SBED are not selective for nucleic acids and can crosslink other biomolecules in the same besides any protein-DNA interactions. Sulfo-SBED involves biotin transfer rather than actual linking.

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What fixative should I use to fix my cells or tissues for antibody labeling?

Aldehyde-based fixatives (e.g., formaldehyde, glutaraldehyde) crosslink various cellular components, which helps retain proteins and cell morphology, but some antigens can be masked by the crosslinking, requiring antigen retrieval methods to unmask the antigen binding sites. Also, aldehyde-based fixation requires permeabilization to allow entry of antibodies. Organic solvents such as methanol and acetone condense proteins and permeabilize the cells, but cell morphology can be compromised. Surface antigens can be labeled without fixation.

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What is the difference between formalin and formaldehyde?

The terms “formalin” and “formaldehyde” are often used interchangeably, although the chemical composition of each fixative is different. Formalin is made with formaldehyde but the percentage denotes a different formaldehyde concentration than formaldehyde solutions. For example, 10% neutral-buffered formalin (NBF or simply formalin) is really a 4% formaldehyde solution; the basis for this difference is that historically, formalin was prepared with commercial-grade stock formaldehyde, which is 37 to 40% formaldehyde, by diluting it 1:10 in phosphate buffer.

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What is the difference between Formaldehyde and Paraformaldehyde?

Most commercial formaldehyde is prepared with paraformaldehyde (polymeric formaldehyde) dissolved in distilled/deionized water, with methanol added to stabilize the aqueous formaldehyde. Solution stabilization is important to prevent oxidation to formic acid and the eventual repolymerization to paraformaldehyde, and therefore commercial formaldehyde may contain up to 10% methanol. To avoid using methanol-contaminated formaldehyde for fixation, many protocols recommend making “fresh” formaldehyde from paraformaldehyde immediately before sample fixation. This preparation is not necessary if using Cat. Nos. 28906 and 28908.

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