Silencer™ Select Negative Control No. 1 siRNA
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Invitrogen™

Silencer™ Select Negative Control No. 1 siRNA

サイレンサー™選択ネガティブコントロール番号1 siRNAは、有効性の向上のために、他のサイレンサー™選択siRNAと同様の化学的修飾を有する非標的ネガティブコントロールsiRNAです。サイレンサー™選択コントロールsiRNAの特性:•siRNA実験の最適化のために検証済みのsiRNAコントロール• いくつかの一般的な細胞株で機能的な試験を行ったGAPDHポジティブコントロール• 細胞の増殖と生存率への影響が最小限であることが機能的に実証されているネガティブコントロール機能• 改善された特異性のためにサイレンサー™選択修飾を含めます• ヒト、マウス詳細を見る
製品番号(カタログ番号)数量
43908435 nmol
439084440 nmol
製品番号(カタログ番号) 4390843
価格(JPY)
45,000
Each
お問い合わせください ›
数量:
5 nmol
サイレンサー™選択ネガティブコントロール番号1 siRNAは、有効性の向上のために、他のサイレンサー™選択siRNAと同様の化学的修飾を有する非標的ネガティブコントロールsiRNAです。サイレンサー™選択コントロールsiRNAの特性:

•siRNA実験の最適化のために検証済みのsiRNAコントロール
• いくつかの一般的な細胞株で機能的な試験を行ったGAPDHポジティブコントロール
• 細胞の増殖と生存率への影響が最小限であることが機能的に実証されているネガティブコントロール機能
• 改善された特異性のためにサイレンサー™選択修飾を含めます
• ヒト、マウス、およびラットの細胞での使用

サイレンサー選択™siRNAとは何ですか?
サイレンサー選択™siRNAは、当社の次世代siRNAです。これらのsiRNAには、最新の研究に基づいて改良されたsiRNAデザイン、オフターゲット効果予測アルゴリズム、および化学修飾が取り入れられており、その有効性、効力、特異性は他に類を見ません。その結果、サイレンシングが不十分で、よりクリーンで一貫性のある表現型データにより、失敗した実験が減少します。

サイレンサー™選択ネガティブコントロールsiRNA
ネガティブコントロールsiRNA — 遺伝子産物をターゲットとしない配列のあるsiRNA — siRNA導入の効果を判断し、siRNA処理サンプルと比較して、ベースラインを提供するために不可欠です。当社は、2つのサイレンサー™選択ネガティブコントロールsiRNAを設計し、広範に試験を行いました。これらのsiRNAには、他のサイレンサー™選択siRNAと同じようにオフターゲット効果を低減するための修飾が含まれており、マウス、ラット、またはヒトの遺伝子配列との間に有意な配列の類似性はありません。これらのネガティブコントロールsiRNAはマイクロアレイ分析により試験が行われており、遺伝子発現への影響は最小限であることが示されています。さらに、これらの2つのコントロールは、マルチパラメトリックな細胞ベースのアッセイで試験が行われており、試験済みの細胞株の細胞増殖、生存率、形態に大きな影響がないことが証明されています。

品質管理
当社は、最先端の施設で各サイレンサー™選択siRNAを合成および浄化し、最高品質の基準を満たします。当社の厳格な品質管理手順の一部として、各RNAオリゴヌクレオチドをMALDI-TOF質量分析で分析し、分析HPLCを使用して純度をモニタリングします。最高の品質を提供するために、ゲル電気泳動によって各アニールsiRNAを評価し、鎖が適切にアニールされていることを確認します。その結果、浄化済みですぐに使用可能な高品質のsiRNAが得られます。
研究用にのみ使用できます。診断用には使用いただけません。
仕様
使用対象(アプリケーション)RNAi、トランスフェクション
標識または色素非コンジュゲート
製品ラインSilencerSilencerセレクト、Ambion
製品タイプsiRNA
純度HPLC
数量5 nmol
出荷条件室温
制御タイプネガティブコントロール
RNAi TypesiRNA
Unit SizeEach
組成および保存条件
乾燥siRNA(5 nmol)およびヌクレアーゼ不含の水(1.75 mL)が含まれ、室温で出荷されます。受け取り後、siRNAは霜取り不要でない冷凍庫に-20°C以下で保管してください。

よくあるご質問(FAQ)

What are the benefits of using a vector to deliver RNAi?

Vector technologies allow you to:

Achieve transient or stable target knockdown
Perform RNAi in any cell type, even hard-to-transfect, primary, and non-dividing cells
Regulate gene inhibition with inducible siRNA expression
Select for a pure population of cells stably expressing an siRNA sequence
Control gene expression in vivo with tissue-specific promoters

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Why are my cells dying after transfection?

We would suggest running a transfection reagent control only to determine if your cells are sensitive to the transfection reagent. Additionally, you can try using different cell densities and siRNA concentrations to diminish any toxic effects from the transfection itself.

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I transfected my siRNA and the mRNA levels are down, but the protein is not. Why is that?

In some cases, knockdown of a protein can be affected by other variables such as protein turnover rate, even though the RNA is knocked down. Additionally, a longer time course may be needed to see an effect on protein compared to mRNA.

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I am not getting my target knockdown. What could be the cause of this?

Please see the following possibilities and suggestions:

- How many siRNA did you test? Is there any knockdown? If there is no knockdown (<10%) in any of the siRNA, then the assay is likely the problem. Try using a different qRT-PCR assay to assess knockdown.
- What was the positioning of the qRT-PCR assay target site relative to the cut site for the siRNA? If greater than 3,000 bases away, the problem could be alternative splice transcripts.
- What are the Cts for the experiment? They should be below 35 in a 40-cycle qRT-PCR experiment.
- Did you confirm the siRNA got into the cell? We recommend using a validated positive control siRNA to check the transfection efficiency.

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I am not getting any knockdown with my siRNA. What do you suggest I try?

Please see the following possibilities and suggestions:

- Were the mRNA levels checked? The most reliable method is real-time PCR. In some cases, knockdown of a protein can be affected by other variables, such as protein turnover rate, even though the RNA is knocked down.
- How is the RNA being isolated? Has the quality of the isolated RNA been checked? Ensure that the RNA has not been degraded.
- Was a positive control used? This can help to determine whether the reagents are working and whether the siRNA was delivered correctly to the cell. Run your experiment in parallel with the positive control siRNA.
- Was a transfection control used? What is the percentage of transfected cells?
- Was a time course used? Generally, gene silencing can be assessed as early as 24 hours posttransfection. However, the duration and level of knockdown are dependent on cell type and concentration of siRNA.
- Was optimization of transfection conditions performed? You can try using different cell densities and siRNA concentrations.
- Which concentration of siRNA did you use? We recommend testing multiple concentrations between 5 nM and 100 nM.

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