Silencer™ Select Negative Control No. 2 siRNA
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Invitrogen™

Silencer™ Select Negative Control No. 2 siRNA

Ambion™サイレンサー™選択ネガティブコントロール#2siRNAは広範に検証されており、siRNA実験の多くの側面に最適なコントロールです。40 nmolで提供されます。•高品質のsiRNA、高浄化、すぐに使用可能• 細胞の増殖と生存率への影響が最小限であることが機能的に実証されている機能• 改善された特異性のためにサイレンサー™選択修飾を含めます• ヒト詳細を見る
製品番号(カタログ番号)数量
43908465 nmol
439084740 nmol
製品番号(カタログ番号) 4390846
価格(JPY)
45,000
Each
お問い合わせください ›
数量:
5 nmol
Ambion™サイレンサー™選択ネガティブコントロール#2siRNAは広範に検証されており、siRNA実験の多くの側面に最適なコントロールです。40 nmolで提供されます。

•高品質のsiRNA、高浄化、すぐに使用可能
• 細胞の増殖と生存率への影響が最小限であることが機能的に実証されている機能
• 改善された特異性のためにサイレンサー™選択修飾を含めます
• ヒト、マウス、およびラットの細胞での使用

サイレンサー™選択siRNAとは何ですか?
サイレンサー™選択siRNAには、siRNA設計、オフターゲット効果予測アルゴリズム、および化学的修飾における最新の改良を取り入れ、他に類を見ない有効性、潜在性、および特異性でsiRNAを産出します。その結果、サイレンシングが不十分で、よりクリーンで一貫性のある表現型データにより、失敗した実験が減少します。

サイレンサー™選択ネガティブコントロール#2 siRNA
ネガティブコントロールsiRNA — 遺伝子産物をターゲットとしない配列のあるsiRNA — siRNA導入の効果を判断し、siRNA処理サンプルと比較して、ベースラインを提供するために不可欠です。サイレンサー™選択ネガティブコントロール#2 siRNAは、慎重に設計され、広範に試験が行われてされており、マウス、ラット、またはヒトの遺伝子配列との間に有意な配列の類似性はありません。これらのネガティブコントロールsiRNAはマイクロアレイ分析により試験が行われており、遺伝子発現への影響は最小限であることが示されています。また、マルチパラメーター、細胞ベースのアッセイでも試験が行われており、試験済みの細胞株の細胞増殖、生存率、形態に大きな影響がないことが示されています。

品質管理:
サイレンサー™選択siRNAは、最高品質基準で最先端の施設で製造されています。その厳格な品質管理手順には、MALDI-TOF質量分析や、分析HPLCによる純度モニタリングが含まれます。また、各siRNAはゲル電気泳動によって評価され、鎖のアニールが適切であることが確認されます。

アクセサリ製品:siPORT™ NeoFX™トランスフェクション試薬(SKU #AM4510および#AM4511)
siPORT™ NeoFX™トランスフェクション試薬は、培養細胞へのsiRNAの効率的なトランスフェクションを可能にする、汎用性の高い脂質ベースのトランスフェクション試薬です。プロトコルは、ハイスループットアプリケーションを含む幅広い細胞および実験計画に適応できます。Silencer™セレクトsiRNAコントロールには、特定の化学修飾が施されています。これらのコントロールは、Silencer™セレクトsiRNAと組み合わせて使用するように設計されています。BLOCK-iT™ siRNA、Ambion™ Silencer™ siRNA、STEALTH RNAi™ siRNAなどの他のsiRNA製品を使用する場合は、より信頼性の高い実験結果を得るために、これらのsiRNAと組み合わせて使用するように設計されたコントロールsiRNAを使用することを推奨します。
研究用にのみ使用できます。診断用には使用いただけません。
仕様
使用対象(アプリケーション)RNAi、トランスフェクション
標識または色素非コンジュゲート
製品ラインSilencerSilencerセレクト、Ambion
製品タイプsiRNA
純度HPLC
数量5 nmol
出荷条件室温
制御タイプネガティブコントロール
RNAi TypesiRNA
Unit SizeEach
組成および保存条件
このsiRNAは乾燥した状態で単一のチューブに入っており、再懸濁用のヌクレアーゼフリー水が付属しています。–20℃で保管してください。

よくあるご質問(FAQ)

What are the benefits of using a vector to deliver RNAi?

Vector technologies allow you to:

Achieve transient or stable target knockdown
Perform RNAi in any cell type, even hard-to-transfect, primary, and non-dividing cells
Regulate gene inhibition with inducible siRNA expression
Select for a pure population of cells stably expressing an siRNA sequence
Control gene expression in vivo with tissue-specific promoters

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Why are my cells dying after transfection?

We would suggest running a transfection reagent control only to determine if your cells are sensitive to the transfection reagent. Additionally, you can try using different cell densities and siRNA concentrations to diminish any toxic effects from the transfection itself.

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I transfected my siRNA and the mRNA levels are down, but the protein is not. Why is that?

In some cases, knockdown of a protein can be affected by other variables such as protein turnover rate, even though the RNA is knocked down. Additionally, a longer time course may be needed to see an effect on protein compared to mRNA.

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I am not getting my target knockdown. What could be the cause of this?

Please see the following possibilities and suggestions:

- How many siRNA did you test? Is there any knockdown? If there is no knockdown (<10%) in any of the siRNA, then the assay is likely the problem. Try using a different qRT-PCR assay to assess knockdown.
- What was the positioning of the qRT-PCR assay target site relative to the cut site for the siRNA? If greater than 3,000 bases away, the problem could be alternative splice transcripts.
- What are the Cts for the experiment? They should be below 35 in a 40-cycle qRT-PCR experiment.
- Did you confirm the siRNA got into the cell? We recommend using a validated positive control siRNA to check the transfection efficiency.

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I am not getting any knockdown with my siRNA. What do you suggest I try?

Please see the following possibilities and suggestions:

- Were the mRNA levels checked? The most reliable method is real-time PCR. In some cases, knockdown of a protein can be affected by other variables, such as protein turnover rate, even though the RNA is knocked down.
- How is the RNA being isolated? Has the quality of the isolated RNA been checked? Ensure that the RNA has not been degraded.
- Was a positive control used? This can help to determine whether the reagents are working and whether the siRNA was delivered correctly to the cell. Run your experiment in parallel with the positive control siRNA.
- Was a transfection control used? What is the percentage of transfected cells?
- Was a time course used? Generally, gene silencing can be assessed as early as 24 hours posttransfection. However, the duration and level of knockdown are dependent on cell type and concentration of siRNA.
- Was optimization of transfection conditions performed? You can try using different cell densities and siRNA concentrations.
- Which concentration of siRNA did you use? We recommend testing multiple concentrations between 5 nM and 100 nM.

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