Silencer™ Select GAPDH Positive Control siRNA
Product Image
Invitrogen™

Silencer™ Select GAPDH Positive Control siRNA

Ambion™サイレンサー™SelectGAPDHポジティブコントロールsiRNAは広範に検証されており、siRNA実験の多くの側面に最適なコントロールです。5 nmolが提供されます。•高品質のsiRNA、高浄化、すぐに使用可能• いくつかの一般的な細胞株で機能試験済み• 改善された特異性のためにSilencer™ Select修飾を含めます•詳細を見る
製品番号(カタログ番号)数量
43908495 nmol
439085040 nmol
製品番号(カタログ番号) 4390849
価格(JPY)
45,000
Each
お問い合わせください ›
数量:
5 nmol
Ambion™サイレンサー™SelectGAPDHポジティブコントロールsiRNAは広範に検証されており、siRNA実験の多くの側面に最適なコントロールです。5 nmolが提供されます。

•高品質のsiRNA、高浄化、すぐに使用可能
• いくつかの一般的な細胞株で機能試験済み
• 改善された特異性のためにSilencer™ Select修飾を含めます
• ヒト、マウス、およびラットの細胞で使用されています

Silencer™ Select siRNAとは何ですか?
Silencer™ Select siRNAには、siRNA設計、オフターゲット効果予測アルゴリズム、および化学的修飾における最新の改良を取り入れ、他に類を見ない有効性、潜在性、および特異性でsiRNAを産出します。その結果、抑制が低減された、よりクリーンで一貫性のある表現型データにより、実験の失敗数が減少します。

Silencer™セレクトGAPDHポジティブコントロールsiRNA:
Silencer™セレクトGAPDHポジティブコントロールは広範囲に検証されており、複数の細胞株で機能することが検証されているため、siRNA実験を開始したばかりのお客様に最適な「試験用」siRNAとなります。GAPDH mRNA(一般的な内部コントロール)をターゲットとするため、リアルタイムRT-PCRやAmbion™ KDalert™ GAPDHアッセイキットなど、多くのアッセイを使用してその効果を測定できます。

品質管理:
Silencer™セレクトsiRNAは、最高品質標準で最先端の施設で製造されています。その厳格な品質管理手順には、MALDI-TOF質量分析や、分析HPLCによる純度モニタリングが含まれます。また、各siRNAはゲル電気泳動によって評価され、鎖のアニールが適切であることが確認されます。

アクセサリ製品:siPORT™ NeoFX™トランスフェクション試薬(SKU #AM4510および#AM4511)
siPORT™ NeoFX™トランスフェクション試薬は、培養細胞へのsiRNAの効率的なトランスフェクションを可能にする、汎用性の高い脂質ベースのトランスフェクション試薬です。プロトコルは、ハイスループットアプリケーションを含む幅広い細胞および実験計画に適応できます。Silencer™セレクトsiRNAコントロールには、特定の化学修飾が施されています。これらのコントロールは、Silencer™セレクトsiRNAと組み合わせて使用するように設計されています。BLOCK-iT™ siRNA、Ambion™ Silencer™ siRNA、STEALTH RNAi™ siRNAなどの他のsiRNA製品を使用する場合は、より信頼性の高い実験結果を得るために、これらのsiRNAと組み合わせて使用するように設計されたコントロールsiRNAを使用することを推奨します。
研究用にのみ使用できます。診断用には使用いただけません。
仕様
使用対象(アプリケーション)RNAi、トランスフェクション
標識または色素非コンジュゲート
製品ラインSilencerSilencerセレクト、Ambion
製品タイプsiRNA
純度HPLC
数量5 nmol
出荷条件室温
制御タイプポジティブコントロール
RNAi TypesiRNA
TargetGAPDH
Unit SizeEach
組成および保存条件
このsiRNAは乾燥した状態で単一のチューブに入っており、再懸濁用のヌクレアーゼフリー水が付属しています。–20℃で保管してください。

よくあるご質問(FAQ)

What are the benefits of using a vector to deliver RNAi?

Vector technologies allow you to:

Achieve transient or stable target knockdown
Perform RNAi in any cell type, even hard-to-transfect, primary, and non-dividing cells
Regulate gene inhibition with inducible siRNA expression
Select for a pure population of cells stably expressing an siRNA sequence
Control gene expression in vivo with tissue-specific promoters

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our RNAi Support Center.

Why are my cells dying after transfection?

We would suggest running a transfection reagent control only to determine if your cells are sensitive to the transfection reagent. Additionally, you can try using different cell densities and siRNA concentrations to diminish any toxic effects from the transfection itself.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our RNAi Support Center.

I transfected my siRNA and the mRNA levels are down, but the protein is not. Why is that?

In some cases, knockdown of a protein can be affected by other variables such as protein turnover rate, even though the RNA is knocked down. Additionally, a longer time course may be needed to see an effect on protein compared to mRNA.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our RNAi Support Center.

I am not getting my target knockdown. What could be the cause of this?

Please see the following possibilities and suggestions:

- How many siRNA did you test? Is there any knockdown? If there is no knockdown (<10%) in any of the siRNA, then the assay is likely the problem. Try using a different qRT-PCR assay to assess knockdown.
- What was the positioning of the qRT-PCR assay target site relative to the cut site for the siRNA? If greater than 3,000 bases away, the problem could be alternative splice transcripts.
- What are the Cts for the experiment? They should be below 35 in a 40-cycle qRT-PCR experiment.
- Did you confirm the siRNA got into the cell? We recommend using a validated positive control siRNA to check the transfection efficiency.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our RNAi Support Center.

I am not getting any knockdown with my siRNA. What do you suggest I try?

Please see the following possibilities and suggestions:

- Were the mRNA levels checked? The most reliable method is real-time PCR. In some cases, knockdown of a protein can be affected by other variables, such as protein turnover rate, even though the RNA is knocked down.
- How is the RNA being isolated? Has the quality of the isolated RNA been checked? Ensure that the RNA has not been degraded.
- Was a positive control used? This can help to determine whether the reagents are working and whether the siRNA was delivered correctly to the cell. Run your experiment in parallel with the positive control siRNA.
- Was a transfection control used? What is the percentage of transfected cells?
- Was a time course used? Generally, gene silencing can be assessed as early as 24 hours posttransfection. However, the duration and level of knockdown are dependent on cell type and concentration of siRNA.
- Was optimization of transfection conditions performed? You can try using different cell densities and siRNA concentrations.
- Which concentration of siRNA did you use? We recommend testing multiple concentrations between 5 nM and 100 nM.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our RNAi Support Center.