AmpliTaq™ 360 Buffer, 25 mM MgCl2 and 360 GC Enhancer
AmpliTaq&trade; 360 Buffer, 25 mM MgCl<sub>2</sub> and 360 GC Enhancer
Applied Biosystems™

AmpliTaq™ 360 Buffer, 25 mM MgCl2 and 360 GC Enhancer

Green features
Applied Biosystems™ AmpliTaq™ 360バッファーキットは、AmpliTaq 360 DNAポリメラーゼとの組み合わせで、酵素に付属する試薬では研究者のニーズに十分に対応できない場合に、上述のような少数の実験で使用します。オプションの360詳細を見る
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製品番号（カタログ番号）数量
43988481.5 mL
製品番号（カタログ番号） 4398848
価格（JPY）
10,900
Each
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数量:
1.5 mL
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Applied Biosystems™ AmpliTaq™ 360バッファーキットは、AmpliTaq 360 DNAポリメラーゼとの組み合わせで、酵素に付属する試薬では研究者のニーズに十分に対応できない場合に、上述のような少数の実験で使用します。オプションの360 GCエンハンサーとの組み合わせて使用した場合、広範なDNA配列コンテキストを増幅します。AmpliTaq™ 360 DNAポリメラーゼは、360°のカバー範囲でターゲットの全域に対応します。

* 最も広域のターゲットに最適化—日常的なものから困難なものまで
* 市場をリードする360 GCエンハンサーによるGCリッチ配列の確実な増幅
* 最高品質の配列データを達成

簡単な、および困難なターゲットに最適化
困難なターゲットとしては、ATリッチ、GCリッチの、プライマー二量体形成アンプリコン、ホモポリマーの繰り返し、シーケンシングの諸課題を提起するアンプリコンが含まれます。これまでは、アンプリコンには特殊な酵素や反応条件が必要でしたが、標準化された条件下で、単一の試薬を使用して再現性の高い増幅ができるようになりました（図1）。有力な評価基準は、40を超えるアンプリコンにわたってAmpliTaq Gold™ 360が最高の性能を持つ酵素であると認めており、一般的なターゲットと困難なターゲットの両方の増幅において、最大の成功確率を達成しています（表1）。

図1に示すように、特にGCリッチな領域は、競合DNAポリメラーゼとオリジナルのAmpliTaq Goldによっては増幅が不十分であるのに対し、AmpliTaq Gold 360では安定した増幅が保証されます。

注記：限定的なラベルライセンスおよび商標情報については、ユーザーマニュアルまたはパッケージの添付文書を参照してください。研究用途にのみご使用ください。診断には使用できません。
研究用にのみ使用できます。診断用には使用いただけません。
仕様
グリーン機能持続可能なパッケージ
ポリメラーゼAmpliTaq DNAポリメラーゼ
製品タイプGCエンハンサー
数量1.5 mL
反応形態キット
出荷条件室温またはウェットアイスでの出荷
容量1.5 mL
濃度5 U/μL
使用対象（アプリケーション）Standard PCR
GC-Rich PCR Performance高
反応速度スタンダード
Unit SizeEach
組成および保存条件
AmpliTaq™ 360バッファーキット は、10X AmpliTaq™ 360バッファー、25mM M2Cl 2、および360 GCエンハンサーそれぞれの1.5 mLの容量で提供されます。通常、AmpliTaq 360バッファー、25mM MgCl2、および360 GCエンハンサーの各1.5mLは、250Uの酵素での使用に十分です。

すべての溶液は、脱イオン、フィルター滅菌水で調製されています。この製品は、-15～-25℃で保管すると、少なくともチューブラベルの有効期限まで性能を維持します。使用前に、凍結したコンポーネントを室温まで解凍し、ウェルを混合します。

製品は有効期限に示されているとおり、最長12か月間保証されています。

よくあるご質問（FAQ）

AmpliTaq Gold® DNA polymeraseを使用する際のPCR条件は2-stepと3-stepのどちらが良いですか？

プライマーのアニーリング温度が60℃以上の場合には2-stepでご利用ください。増幅産物がGCリッチな場合やプライマーのアニーリング温度が60℃未満の際には3-stepが推奨です。

My oligonucleotide does not appear to be the right length when I checked by gel electrophoresis. Why is this?

Oligos should be run on a polyacrylamide gel containing 7 M urea and loaded with a 50% formamide solution to avoid compressions and secondary structures. Oligos of the same length and different compositions can electrophorese differently. dC's migrate fastest, followed by dA's, dT's, and then dG's. Oligos containing N's tend to run as a blurry band and generally have a problem with secondary structure.

The primers I am using worked for PCR initially, but over time, have stopped working. What happened?

Primers should be aliquoted for single use before PCR set-up. Heat just the aliquoted primers to 94 degrees for 1 min. Quick chill the primer on ice before adding to the PCR reaction. Some primers may anneal to themselves or curl up on themselves.

I don't see a pellet in my oligo tube order. Should I ask for a replacement?

The drying method dries the primer in a thin layer along the sidewalls of the tube instead of the bottom, therefore a pellet is not always visible and should still be ready to use.

There is a ball-shaped pellet at the bottom of my oligo tube. What is this and can I still use my oligo?

If the oligo was overheated, it will appear as a “ball”-shaped pellet attached to the bottom of the tube. This should not affect the quality of the oligo, and the oligo should be readily soluble in water.

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