T4 DNA Ligase Buffer
T4 DNA Ligase Buffer
Invitrogen™

T4 DNA Ligase Buffer

T4 DNAリガーゼは、3´ヒドロキシルおよび5´リン酸末端を持つ二本鎖DNA間にATPが存在する場合、ホスホジエステル結合の形成を触媒します。独自のT4 DNAリガーゼバッファーはライゲーションを最適化し、5分間で実行できます(1)。一本鎖核酸は詳細を見る
製品番号(カタログ番号)数量
463000182 x 1 mL
製品番号(カタログ番号) 46300018
価格(JPY)
9,500
Each
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数量:
2 x 1 mL
一括またはカスタム形式をリクエストする
T4 DNAリガーゼは、3´ヒドロキシルおよび5´リン酸末端を持つ二本鎖DNA間にATPが存在する場合、ホスホジエステル結合の形成を触媒します。独自のT4 DNAリガーゼバッファーはライゲーションを最適化し、5分間で実行できます(1)。一本鎖核酸は、この酵素の基質にはなりません。T4 DNAリガーゼ技術資料をご利用いただけます。

アプリケーション:クローニング(平滑末端または粘着性末端のライゲーション)(2)。平滑末端DNAへのリンカーまたはアダプターの付加(2)。

ソース:大腸菌ライゲーションNM989から浄化されます。

性能および品質検査:
Endodedoxyribonuclease、3´および5´exodedoxyribonucleaseアッセイ。ライゲーション効率試験済み。

ユニット定義:
1つのユニットで、37℃で20分間で1 nmolの32P-標識ピロリン酸塩のATPへの交換を触媒します。(1つのユニットは約300の粘着性末端ライゲーションユニットと同等です)。

ユニット反応条件:66 mMのTris-HCl(pH 7.6)、6.6 mMのMgCl2、10 mMのDTT、66 µMのATP、3.3 µMの32 P-標識ピロリン酸塩、および酵素(0.1 ml)を37℃で20分間
研究用にのみ使用できます。診断用には使用いただけません。
仕様
適合バッファー5倍バッファー
製品タイプT4 DNAリガーゼバッファー
数量2 x 1 mL
出荷条件氷水またはドライアイスでの出荷が承認されています
Unit SizeEach
組成および保存条件
T4 DNAリガーゼには、5倍の反応バッファー(250 mMのTris-HCl(pH 7.6)、50 mM MgCl2、5 mMのATP、5 mMのDTT、25%(w/v)ポリエチレングリコール-8000)のバイアルが付属しています。-20℃で保存

よくあるご質問(FAQ)

What are common inhibitors of the T4 DNA ligase?

dATP is a competitive inhibitor. Phosphate will reduce ligation efficiency. Detergents in your ligation buffer will likely not affect activity. High levels (0.2M) Na2+, K+, Cs+, Li+, and NH4+ inhibit the enzyme almost completely. Polyamines, spermine, and spermidine also serve as inhibitors.

Do both my insert and vector have to be phosphorylated for successful ligation?

At least one molecule in a ligase reaction (i.e., insert or vector) must be phosphorylated. Ligation reactions are dependent on the presence of a 5' phosphate on the DNA molecules. The ligation of a dephosphorylated vector with an insert generated from a restriction enzyme digest (phosphorylated) is most routinely performed. Although only one strand of the DNA ligates at a junction point, the molecule can form a stable circle, providing that the insert is large enough for hybridization to maintain the molecule in a circular form.

Which T4 DNA Ligase protocol do you recommend when ligating an insert containing one cohesive (sticky) end and one blunt end?

For cloning an insert with one cohesive end and one blunt end, use the conditions for blunt ends.  The sticky end may ligate quickly, but the blunt end ligation will still be inefficient. You should use the more stringent protocol to optimize the blunt end ligation. This usually means using more enzyme (5 U), a lower reaction temperature (14C) and a longer incubation time (16-24 hours). 

Why is it necessary to dilute ligated DNA products before adding them to competent bacterial cells?

Components of the ligation reaction (enzymes, salts) can interfere with transformation, and may reduce the number of recombinant colonies or plaques. We recommend a five-fold dilution of the ligation mix, and adding not more than 1/10 of the diluted volume to the cells. For best results, the volume added should also not exceed 10% of the volume of the competent cells that you are using.

What are the recommended conditions for blunt-ended ligations?

Generally, ligations are done in a 20 µL volume. Use a total of 100 to 1000 ng of DNA with an insert to vector ratio of 3:1. Add 1.0 units (Weiss) ligase to the reaction. Incubate at room temperature for 4 h or overnight at 14-16 degrees C.

Ideally, assemble several reactions with varying ratios of vector:insert (i.e. 3:1, 5:1, 10:1, 20:1, etc.) to determine the optimal ratio for ligation.

Thermo Fisher Scientific offers T4 DNA ligase at two concentrations: 1 U/µL (Cat. No. 15224-017) and 5 U/µL (Cat. No. 15224-041). When performing blunt or TA cloning ligations, the higher concentration of ligase is generally preferred since ligating a blunt or single base overhang requires more enzyme.