AbC™ Anti-Rat/Hamster Bead Kit
AbC™ Anti-Rat/Hamster Bead Kit
Citations & References (3)
Invitrogen™

AbC™ Anti-Rat/Hamster Bead Kit

AbC™抗ラット／ハムスター抗体補正ビーズキットは、フローサイトメトリーのレーザーで蛍光色素標識ラット抗体またはハムスター抗体を使用する場合に、フローサイトメトリー補償の設定に一貫した正確で使いやすい手法を提供します。•種反応性—あらゆるアイソタイプのラットおよびハムスター抗体結合で使用できる• 最大のレーザー適合性—あらゆるレーザーで使用できる正確な補正は、フローサイトメトリーにおける効果的なマルチカラー解析に不可欠です。しかし、細胞ベースの補正コントロールでは完全な効果が得られないことがよくあります。多くの抗原は高度に発現する訳ではなく、染色の弱い細胞が不正確な補正設定につながることがあるからです詳細を見る
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製品番号（カタログ番号）数量
A103891キット
製品番号（カタログ番号） A10389
価格（JPY）
76,900
Each
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数量:
1キット
AbC™抗ラット／ハムスター抗体補正ビーズキットは、フローサイトメトリーのレーザーで蛍光色素標識ラット抗体またはハムスター抗体を使用する場合に、フローサイトメトリー補償の設定に一貫した正確で使いやすい手法を提供します。

•種反応性—あらゆるアイソタイプのラットおよびハムスター抗体結合で使用できる
• 最大のレーザー適合性—あらゆるレーザーで使用できる

正確な補正は、フローサイトメトリーにおける効果的なマルチカラー解析に不可欠です。しかし、細胞ベースの補正コントロールでは完全な効果が得られないことがよくあります。多くの抗原は高度に発現する訳ではなく、染色の弱い細胞が不正確な補正設定につながることがあるからです。AbC™抗ラット/ハムスタービーズキットは、この問題に対処するために開発されました。

すべてのフローサイトメトリー補正ビーズの選択ガイドを表示。

キットの仕組み
各キットには、蛍光抗体コンジュゲート捕捉能力（ポジティブ補正ビーズ）または不活性（ネガティブ補正ビーズ）を持つポリスチレン製ミクロスフェアがあのます。蛍光色素結合ラットまたはハムスター抗体と混合した後、2つの成分によって適切な陰性集団を有する明確な高シグナル陽性コントロールが得られ、それを使用して、実際の実験における細胞の強度にかかわらず、適切な補正を設定できます。

種の反応性
AbC™抗ラット/ハムスタービーズキットは、すべてのアイソタイプのラット（IgG1、IgG2a、IgG2b、IgG2c、IgM）およびハムスター（アルメリアIgGおよびシリアIgG）免疫グロブリンでの補正に最適です。

最大のレーザー適合性
すべてのAbC™補正ビーズキットは、405 nmレーザーを含むあらゆる励起源での使用に最適です。このレーザーでは従来から、市販されている他のキットとの自動蛍光でより高いバックグラウンドシグナルが得られてきました。
研究用にのみ使用できます。診断用には使用いただけません。
仕様
検出法蛍光
直径（メートル法）6 μm
発光任意のレーザー（UV～633/635）
使用対象 (装置)フローサイトメーター
フォーマットチューブ
数量1キット
出荷条件室温
染色構成表面処理
製品ラインCompenFlow、Molecular Probes
製品タイプコンペンセーションビーズ
Unit SizeEach
組成および保存条件
1バイアルのAbC™抗ラット／ハムスター捕捉ビーズと1バイアルのネガティブビーズが含まれます。
  • 2℃～8℃で保存してください

    • よくあるご質問（FAQ）

    Does the AbC Anti-Rat/Hamster Bead Kit bind IgG2a kappa or IgG1 lambda rat with the same affinity?

    Sorry, we have not analyzed this.

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    I am performing flow cytometry. My compensation matrix has values over 100. That's not possible is it?

    It is possible. But if you have a lot of values over 100, you probably need to look at the voltages that you are using for your data collection.

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    I’ve been told that I need to compensate my data for flow cytometry analysis. What does that mean?

    By running single-color controls, it is possible to remove signal of one fluorophore that spills over into the collection channel for another fluorophore.

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    What kind of controls do I need for flow cytometry?

    For compensation, you need to prepare a singly stained sample (or compensation beads) for each color parameter that you are using. In addition, we recommend that you use FMO (flow minus one) controls. These are controls in which you label cells or beads with every color in your panel, omitting one. Make one FMO control for each color. These controls are important for helping you properly set gates on your data.

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    Why should I worry about compensation in flow cytometry analysis?

    In a perfect world, the fluorescence emission profile for each individual fluorophore would be a very intense, narrow peak, well separated from all other emission peaks. In reality, organic dyes and fluorescent proteins have broad emission peaks, and compensation must be employed (during or after data acquisition) to correctly assign fluorescence signal to each fluorophore. Compensation is important because it removes fluorescent signal from overlapping spectra so you know that the signal you see is only the signal from the fluorophore of interest.

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    引用および参考文献 (3)

    引用および参考文献
    Abstract
    Identification and characterization of intestinal antigen-presenting cells involved in uptake and processing of a nontoxic recombinant chimeric mucosal immunogen based on cholera toxin using imaging flow cytometry.
    Authors:Zhao W, Minderman H, Russell MW,
    Journal:
    PubMed ID:24197893
    'Intragastric immunization with recombinant chimeric immunogen, SBR-CTA2/B, constructed from the saliva-binding region (SBR) of Streptococcus mutans antigen AgI/II and the A2/B subunits of cholera toxin (CT) induces salivary and circulating antibodies against S. mutans that protect against dental caries. We previously found that SBR-CTA2/B activated dendritic cells (DC) in the ... More
    Multiparametric analysis of host response to murine cytomegalovirus in MHC class I-disparate mice reveals primacy of Dk-licensed Ly49G2+ NK cells in viral control.
    Authors:Prince J, Lundgren A, Stadnisky MD, Nash WT, Beeber A, Turner SD, Brown MG,
    Journal:
    PubMed ID:24068668
    MHC class I D(k) and Ly49G2 (G2) inhibitory receptor-expressing NK cells are essential to murine CMV (MCMV) resistance in MA/My mice. Without D(k), G2(+) NK cells in C57L mice fail to protect against MCMV infection. As a cognate ligand of G2, D(k) licenses G2(+) NK cells for effector activity. These ... More
    Self MHC class I-licensed NK cells enhance adaptive CD8 T-cell viral immunity.
    Authors:Stadnisky MD, Xie X, Coats ER, Bullock TN, Brown MG
    Journal:Blood
    PubMed ID:21436069
    MHC class I (MHC I) is essential to NK- and T-cell effector and surveillance functions. However, it is unknown whether MHC I polymorphism influences adaptive immunity through NK cells. Previously, we found that MHC I D(k), a cognate ligand for the Ly49G2 inhibitory receptor, was essential to NK control of ... More