Bac-to-Bac™ C-His TOPO™ Expression System
Bac-to-Bac™ C-His TOPO™ Expression System
Gibco™

Bac-to-Bac™ C-His TOPO™ Expression System

Bac-to-Bacバキュロウイルス発現は、昆虫細胞における高レベルのタンパク質発現のためのバキュロウイルス生成の効率的な方法です。これは、昆虫細胞の相同組換えではなく、E. coliにおける部位特異的転移による組換えウイルスの生成に依存しています。pFastBac C-His TOPO発現システムの特長は以下のとおりです。•柔軟性—Bac-to-Bac詳細を見る
製品番号(カタログ番号)数量
A1110020反応
製品番号(カタログ番号) A11100
価格(JPY)
627,800
Each
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数量:
20反応
Bac-to-Bacバキュロウイルス発現は、昆虫細胞における高レベルのタンパク質発現のためのバキュロウイルス生成の効率的な方法です。これは、昆虫細胞の相同組換えではなく、E. coliにおける部位特異的転移による組換えウイルスの生成に依存しています。pFastBac C-His TOPO発現システムの特長は以下のとおりです。

柔軟性—Bac-to-Bac C-His TOPOベクターは、ニッケルキレート樹脂(Invitrogen ProBond生成システムなど)でHisタグ付きタンパク質を簡単に精製し、Invitrogen AcTEVプロテアーゼの助けを借りてネイティブタンパク質を生成するために、TEV開裂部位のあるC末端Hisタグを含んでいます。

高速クローニング、簡単なスクリーニング— Blunt TOPOクローニングテクノロジーにより、5分で平滑端末PCR産物をpFastBac TOPOベクターにクローニングできます。さらに、pFastBac TOPO発現キットには、他の標準的なクローニング株と比べて時間が2倍短縮されているため、アンピシリン選択プレートでプレーティングしてから8時間後のコロニーの可視化を可能にするMach1-T1R E. coliが付属しています。TOPOクローニングの利点の詳細を見る›

ExpiFectamine SFトランスフェクション試薬による高いトランスフェクション効率— Bac-to-Bac TOPO発現キットには、迅速で柔軟なプロトコルを用いた昆虫細胞への効率的なDNAトランスフェクションを実現する次世代のExpiFectamine SFトランスフェクション試薬が付属しています。この試薬の詳細を見る›

時間を節約する発現バクミド— Bac-to-Bacシステムで、pFastBacベクターの発現カセットがDH10Bac E. coliコンピテント細胞の親バクミドと再結合し、発現バクミドを形成します。その後、バクミドを昆虫細胞にトランスフェクションして組換え型バキュロウイルス粒子を産生します。

簡単なコロニースクリーニング—DH10Bac大腸菌の親バクミドは、lacZa遺伝子のセグメントを含みます。lacZa遺伝子は、発現カセットがバクミドに転移すると破壊され、組換えコロニーの同定を容易にする組換え体の青/白選択が可能になります。

高タンパク質発現— pFastBacベクターは、強力なポリヘドリンプロモーターを使用して、Sf9、Sf21、High Five細胞などのさまざまな昆虫細胞株で高レベルの発現を生成します。

研究用にのみ使用できます。診断用には使用いただけません。
仕様
抗生物質耐性菌アンピシリン(AmpR)、ゲンタマイシン(GMR)
クローニング法Blunt TOPO™
発現メカニズム細胞ベースの発現
フォーマット液体
製品ラインBac-to-Bac、TOPO
タンパク質タグHisタグ(6x)
数量20反応
発現システムバキュロウイルス
プロモーターポリヘドリン
タイプ発現システム
Unit SizeEach
組成および保存条件
Bac-to-Bac C-His TOPO Expression Kit:
• 20 TOPOクローニング反応用ベクターキット、-20℃で保管
   –pFastBac/CT-TOPOベクター(C末端TEV開裂部位とHis-タグを含みます)
   –pFastBac 1-Gus制御プラスミド(制御発現ベクター)
   –その他のキット試薬:10X PCR、dNTP混合、塩類溶液、滅菌水、コントロールPCRテンプレート、ポリヘドリンフォワードプライマー、SV40 pAリバースプライマー
• One Shot Mach1-T1RケミカルコンピテントE. coli(20反応用)(20 x 50 µL)、-80°Cで保管
• MAX Efficiency DH10BacコンピテントE. coli(20反応用)(4キット、各キットに5 x 0.1 mL)、-80°Cで保管
• ExpiFectamine Sfトランスフェクション試薬(1 mL)、4°Cで保管、凍結禁止

よくあるご質問(FAQ)

I cannot detect any recombinant fusion protein after using the BaculoDirect Expression Kit. What could be the cause for this and what do you suggest I try?

Please check the construction of your entry clone, and ensure that the insert is in frame with the vector. Analyze the recombinant viral DNA by PCR to confirm the correct size and orientation of your insert after the LR reaction. Sequence your PCR product to verify the proper reading frame for expression of the epitope tag.

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I'm getting a low-titer P1 viral stock and would like to generate a high-titer stock. What should I do?

To get a high-titer stock, reinfect cells with the P1 stock and generate a P2 high-titer stock. Follow the directions in the BaculoDirect manual on page 18 to generate your P2 stock.

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I performed an LR reaction, followed by transfection into Sf9/Sf21 insect cells, but do not see any signs of infection even though it's been 72 hours. What should i do?

Please see our recommendations below:

- Check the LR reaction by PCR analysis prior to transfection into insect cells.
- We recommend using Grace's Insect Cell Culture Medium, Unsupplemented during the transfection experiment instead of serum-free medium, as components in serum-free medium may interfere with transfection.
- Ensure that FBS, supplements, or antibiotics are not included during transfection, as the proteins in these materials can interfere with the Cellfectin II Reagent.
- Use the LR recombination reaction using the pENTR/CAT plasmid as a positive control and Cellfectin II Reagent only (mock transfection) as a negative control.
- Ensure that cells are in the log phase of growth with >95% viability, and the amount of cells are in accordance with the suggestions in the manual.
- Cells may not show signs of viral infection for up to a week depending on transfection efficiency; continue culturing and monitor cells daily for signs of infection.

I see a precipitate in my ganciclovir solution. What can I do?

Warm the ganciclovir solution in a water bath at 37 degrees C for 5-10 min, then vortex for a few minutes. The precipitate should go back into solution.

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I am purifying my secreted protein expressed in insect cells with a His-tagged purification column and getting no yield of my protein. Why and what can I do?

Media used to culture insect cells usually have an acidic pH (6.0-6.5) or contain electron-donating groups that can prevent binding of the 6xHis-tagged protein to Ni-NTA. Amino acids such as glutamine, glycine, or histidine are present at significantly higher concentrations in media for growing insect cells than in media for growing mammalian cells, and compete with the 6xHis-tagged protein for binding sites on Ni-NTA matrices. Grace's medium (Thermo Fisher Scientific), for example, contains approximately 10 mM glutamine, 10 mM glycine, and 15 mM histidine.

Dialysis of the medium against a buffer with the appropriate composition and pH (8.0) similar to the lysis buffer recommended for purification under native conditions usually restores optimal binding conditions. Note that depending on the medium used, a white precipitate (probably made up of insoluble salts) can occur, but normally the 6xHis-tagged protein remains in solution. This can be tested by either protein quantitation if using a protein-free medium or by monitoring the amount of 6xHis-tagged protein by western-blot analysis. After centrifugation, 6xHis-tagged protein can be directly purified from the cleared supernatant.

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