PichiaPink™ Media Kit
Product Image
Invitrogen™

PichiaPink™ Media Kit

PichiaPink™培地キットは、PichiaPink™酵母発現システムで使用する便利な包装済み培地パック一式です。PichiaPink™培地キット には、Pichia pastoris株を凍結ストックから培養にまで成長させるために必要な培地が含まれており、形質転換や選択が可能です。PichiaPink™培地キットは、タンパク質生産にPichia pastorisを使用する簡単な方法です詳細を見る
製品番号(カタログ番号)数量
A111561 Kit
製品番号(カタログ番号) A11156
価格(JPY)
82,600
線上優惠
Ends: 27-Mar-2026
137,700
割引額 55,100 (40%)
Each
お問い合わせください ›
数量:
1 Kit
PichiaPink™培地キットは、PichiaPink™酵母発現システムで使用する便利な包装済み培地パック一式です。PichiaPink™培地キット には、Pichia pastoris株を凍結ストックから培養にまで成長させるために必要な培地が含まれており、形質転換や選択が可能です。PichiaPink™培地キットは、タンパク質生産にPichia pastorisを使用する簡単な方法です。PichiaPink™培地キットを使用して、PichiaPink™酵母発現システムキットを補充します。

PichiaPink™培地キット には、以下の溶液用のパックがあらかじめパッケージされています。各袋に1リットルの溶液が入っています。培地袋は乾燥した状態で保管し、室温で保管してください。

培地用途ポーチ
YP+寒天培地コロニーをストリークアウトするためのプレート用2 pouches
YP液体培養用2 pouches
PAD(Pichia Adenine Dropout)+寒天培地PichiaPink™組み換え体を増殖させるためのプレート用2 pouches
YP+ソルバタル(YPS)PichiaPink™形質転換体の回収用2 pouches
デキストロースYPおよびYP+agarに追加します1 pouches

PichiaPink™酵母発現システムを選ぶ理由
PichiaPink™酵母発現システムは、酵母Pichia pastorisをベースにしています。Pichia pastorisの利点として、迅速な増殖、明確な遺伝的背景、シンプルな培地組成、および簡単な取り扱いが挙げられます。Pichia pastorisは30年以上にわたり、ヒトを含む多くの種から数百種類もの異なるタンパク質を生産するために世界中のラボで使用されてきました(REF 1、2)。PichiaPink™酵母発現システムを使用すると、小規模から大規模のスケールまで、便利で費用対効果の高いタンパク質生産が可能になります。

PichiaPink™酵母発現システムの商用使用ライセンスの取得については、outlicensing@lifetech.comまでお問い合わせください。

研究用途専用です。動物またはヒトの治療または診断用には使用できません。

関連リンク
PichiaPink™酵母発現システムの詳細をご覧ください。
当社のその他のタンパク質発現システムの詳細をご覧ください。

参考文献

1.Ceghino JL、Cregg JM.メチロ栄養酵母Pichia pastorisにおける異種タンパク質発現。FEMS Microbiol Rev. 2000年1月;24( 1): 45~66 。[PubMed]
2。Cereghino GP、Cereghino JL、Ilgen C、Cregg JM。酵母Pichia pastorisの発酵培養における組み換えタンパク質の産生。Curr Opin Biotechno。2002 Aug;13(4):329-32.[PubMed]
研究用にのみ使用できます。診断用には使用いただけません。
仕様
最終産物タイプ液体培地、寒天培地
使用対象 (装置)A11150, A11151, A11152, A11153
フォーマットキット
培地タイプPAD、YP、YPS
調製法オートクレーブ
数量1 Kit
出荷条件室温
菌株表示PichiaPink™
形状粉末
対象微生物クラスP. pastoris
Unit SizeEach
組成および保存条件

4種類の基本的な培地を作成するのに十分な袋を含みます:

ポーチPAD寒天培地2個、ポーチ YPDS 2個、ポーチYPD 2個、ポーチYPD寒天培地2 個、ポーチデキストロース1個


室温保存

よくあるご質問(FAQ)

I inoculated 25 mL of MGY with one colony and grew it overnight, but the OD is not 2-6 as mentioned in your manual. Is there something wrong?

This is likely due to low inoculum. We recommend having a starter culture to use, as it is more accurate than using a colony. You can use the doubling time to calculate the starting OD. In YPD, the doubling time is about 1.5 hours. In MGY, the doubling time is going to be about 3 hours.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Protein Expression Support Center.

When selecting for blasticidin-resistant transformants in the X-33 strain using pPIC6/pPIC6α vectors, why do I get large and small colonies on YPD plates containing 300 µg/ml blasticidin?

Generally, large colonies represent transformants containing pPIC6/pPIC6α integrants, while small colonies represent transformants containing pPIC6/pPIC6α non-integrants. These non-integrants have transduced the pPIC6/pPIC6α plasmid, and therefore, exhibit a low level of blasticidin resistance in the initial selection process. Upon subsequent screening, these non-integrant transformants do not retain blasticidin resistance.

When choosing a blasticidin-resistant transformant for your expression studies, we recommend that you pick blasticidin-resistant colonies from the initial transformation plate and streak them on a second YPD plate containing the appropriate concentration of blasticidin. Select transformants that remain blasticidin-resistant for further studies.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Protein Expression Support Center.

My transformation is not working. Do you have any suggestions?

Here are some suggestinos:

- Make sure that you have harvested cells during log-phase growth (OD <1.0 generally).
- If electroporation is being used, see the electroporator manual for suggested conditions. Vary electroporation parameters if necessary.
- Use more DNA.
- Use freshly made competent cells.
- If the LiCl transformation method is being used, try boiling the carrier DNA.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Protein Expression Support Center.

My spheroplasting of Pichia worked twice, but hasn't worked since. The OD of the culture simply does not drop.

Here are some things to consider:

- If the OD of cells that are used is too high, they will not spheroplast. Do not overgrow cells.
- Do not use old cells and make sure that they are in log phase of growth.
- Make sure to mix zymolyase well before using. Zymolyase is more of a suspension than a solution.
- Make the PEG solution fresh each time and check the pH.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Protein Expression Support Center.

Is there a functional difference between using peptone or tryptone for Pichia media?

Bacto-Tryptone and Bacto-Peptone are two different and specific types of peptones. Bacto-Tryptone is a slightly poorer nitrogen source, and more of the nitrogen is provided by tyrosine and tryptophan. When comparing the two as components of media for Pichia growth, growth curves may differ slightly, but there should be only minor differences between the two. In Pichia media formulations that include Yeast Nitrogen Base as a primary source of nitrogen, such as BMGY and BMMY, there should be very little or no difference.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Protein Expression Support Center.