GeneArt™ Chlamydomonas Protein Expression Vector
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Invitrogen™

GeneArt™ Chlamydomonas Protein Expression Vector

GeneArt™ Chlamydomonasタンパク質発現ベクターは、真核緑藻類Chlamydomonas reinhardtii 137cの核ゲノムからトランス遺伝子を発現するための第2世代Chlamydomonasタンパク質発現ベクターです。相対的に高レベルの発現用に最適化されており、遺伝子抑制に対する選択が可能で、目的遺伝子の検出および/または精製用の二重タンパク質タグを提供します。このキットには、発現ベクターとわかりやすいプロトコルが含まれています詳細を見る
製品番号(カタログ番号)数量
A2423110 reactions
製品番号(カタログ番号) A24231
価格(JPY)
58,100
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Ends: 27-Mar-2026
83,000
割引額 24,900 (30%)
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数量:
10 reactions
GeneArt™ Chlamydomonasタンパク質発現ベクターは、真核緑藻類Chlamydomonas reinhardtii 137cの核ゲノムからトランス遺伝子を発現するための第2世代Chlamydomonasタンパク質発現ベクターです。相対的に高レベルの発現用に最適化されており、遺伝子抑制に対する選択が可能で、目的遺伝子の検出および/または精製用の二重タンパク質タグを提供します。このキットには、発現ベクターとわかりやすいプロトコルが含まれています。Gibco™ TAP培地は別売りで、Chlamydomonasの増殖と維持に最適化されています。Chlamydomonas reinhardtii 137cは、Chlamydomonasリソースセンターから入手できます。

•目的遺伝子の全可溶性タンパク質を最大1%まで発現
• 複数の継代にわたる遺伝子抑制から選択
• 6His-TEVやV5-Hisエピトープタグを使用して目的遺伝子を検出および精製
• シームレスなアセンブリと互換性がありコンストラクトの作成が可能
• 株生存率と純度が非常に高いため、信頼性の高い結果を取得可能

Chlamydomonas pChlamy_4ベクター
Chlamydomonas核ゲノムからのトランス遺伝子発現は、翻訳後修飾やタンパク質標的化、分泌など、クロロプラス発現よりも優れた利点を提供します。しかし、核ゲノムからの発現は通常、安定性が低く、発現が不十分な分子メカニズムは完全には解明されていません。プロモーターの低下、ゲノム統合位置の影響、トランス遺伝子の抑制などの理由が考えられます。GeneArt Chlamydomonas Protein Expression Vectorは、相対的に高い発現レベルのタンパク質を提供し、抑制に対する選択が可能です。当社のpChlamy_4ベクターは、シームレスクローニングにも対応しています。シームレスクローニングは、オプションのクローニングメソッドであり、最終的なコンストラクトに余分な配列を生成することがありません。

ベクターの特長は以下のとおりです。
•内在性プロモーターで構成されるHsp70A-RbcS2は、活性剤Hsp70AとRBC S2イントロン配列の2つのコピーで構成されており、目的遺伝子の発現が向上
• ブレオマイシン/ゼオシン™耐性遺伝子に融合したHsp70A-RBC S2ハイブリッドプロモーターにより、陽性形質転換体は、複数の継代におけるタンパク質発現レベルを維持することが可能
• 口蹄疫ウイルス(FMDV)からの2Aペプチドの自己切断配列は、抵抗マーカーと目的タンパク質の間の適切な開裂を媒介して、2つの分離タンパク質を生成
• 3’ UTRは転写産物を適切に終端し、翻訳効率、mRNA安定性、ポリアデニル化シグナルの向上などの利点も提供
• 二重タンパク質タグ6His-TEVおよびV5-Hisエピトープは、目的遺伝子の両端またはいずれかの末端に融合させることも、タグをまったく使用しないことも可能

抑制に対する選択
C. reinhardtiiでよく起こる遺伝子組み換えの抑制を回避するため、新しいpChlamy_4ベクターでは、ブレオマイシン/ゼオシン耐性遺伝子のシュブルを用いた転写融合としてタンパク質が発現するように設計されています。口蹄疫ウイルス(FMDV)由来の2Aペプチドの自己切断配列は、抗生物質耐性遺伝子と目的遺伝子の間に配置されます。短い約20のアミノ酸配列にあり、適切な切断を仲介することで2つの独立したタンパク質が得られます。このシステムでは、選択圧力の有無にかかわらず、多くの継代を通過した後でも、陽性形質転換体が他のシステムよりはるかに長い間高い発現レベルを維持することが確認されています。

藻類用のMAX効率トランスフェクション試薬
Chlamydomonasを使用する研究開発における最大の障害の1つは、細胞壁の硬いChlamydomonas株への外来性DNAの導入です。
研究用途にのみご使用ください。診断目的には使用できません。
仕様
製品タイプタンパク質発現ベクター
数量10 reactions
出荷条件ドライアイス
製品ラインGeneArt
Unit SizeEach

よくあるご質問(FAQ)

What is the difference between pChlamy_4 in the Chlamydomonas Protein Expression kit compared to pChlamy_1 or pChlamy_3 in the engineering kits?

The pChlamy_4 vector was designed in order to circumvent the transgene silencing that often occurs in C. reinhardtii. This vector is also designed so that proteins are expressed as transcriptional fusions with the blemoycin/zeocin resistance gene (sh-ble). The self-cleaving sequence for the 2A peptide from the foot-and-mouth-disease-virus (FMDV) is placed between the antibiotic resistance gene and the gene of interest. It encodes a short ~20 amino acid sequence that mediates proper cleavage to yield two discrete proteins. With this system we have seen positive transformants maintain high expression levels for much longer than with other systems, even after many passages with or without selection pressure.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Protein Expression Support Center.

In the Chlamydomonas kit, there is already an ATG in the vector; does the insert need to be in frame with the ATG in the vector?

Yes. For the TOPO version, you can design the primer to make sure the coding sequence is in frame with the ATG in the vector.

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What is the expected time constant during transformation?

The expected time constant is 15-20 milliseconds (average is 17 milliseconds).

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What is the expected transformation efficiency?

We don't report transformation efficiency of the Chlamydomonas cells, since the end result of transformation is random integration into the genome. The electroporation results will depend on the gene of interest. The control vector should produce a minimum of 30 transformants per electroporation reaction. Approximately 90% of colonies picked should be positive clones containing your gene of interest.

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What is the mechanism of integration with the Chlamydomonas engineering kits?

Integration is at random. The engineering kit is based on a random insertion in which the gene of interest can be lost very quickly. For the protein expression kit, the pChlamy_4 vector is designed so proteins are expressed as transcriptional fusions with the bleomycin/zeocin resistance gene sh-ble (Rasala et al., 2012). The self-cleaving sequence for the 2A peptide from the foot-and-mouth disease virus (FMDV) is placed between the antibiotic resistance gene and the gene of interest. It encodes a short ˜20 amino acid sequence that mediates proper cleavage to yield two discrete proteins. With this system we have seen positive transformants maintain high expression levels for much longer than with other systems, even after many passages with or without selection pressure.

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