Silencer™ siRNA Transfection II Kit
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Invitrogen™

Silencer™ siRNA Transfection II Kit

このAmbion™キットは、特定の細胞タイプに対するトランスフェクションプロトコルの最適化に使用します。この製品には、2種類のトランスフェクション試薬(siPORT™ Amineトランスフェクション試薬とsiPORT™ NeoFX™トランスフェクション試薬)各0.4 mLと、コントロールsiRNAが含まれています詳細を見る
製品番号(カタログ番号)数量
AM16311 mL
製品番号(カタログ番号) AM1631
価格(JPY)
142,500
Each
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数量:
1 mL
このAmbion™キットは、特定の細胞タイプに対するトランスフェクションプロトコルの最適化に使用します。この製品には、2種類のトランスフェクション試薬(siPORT™ Amineトランスフェクション試薬とsiPORT™ NeoFX™トランスフェクション試薬)各0.4 mLと、コントロールsiRNAが含まれています。
• 広範な細胞株に対応 - キットには、siPORT™ AmineおよびsiPORT™ NeoFX™トランスフェクション試薬が含まれています
• 迅速なプロトコルに最適 - キットには、すぐにトランスフェクションできるGAPDHおよびネガティブsiRNAコントロールが含まれています。トランスフェクション試薬の選択は、遺伝子サイレンシング実験に極めて重要です。トランスフェクション試薬はそれぞれ、異なる細胞タイプで使用した場合の導入効率が異なります。総合的なトランスフェクション効率と遺伝子サイレンシングの程度は、トランスフェクション試薬/siRNA複合体の性質によって異なります。初めてRNAi研究を行う方も、実験をさまざまな細胞株に拡大したい方も、Silencer™ siRNAトランスフェクションIIキットを使用することで、特定の細胞タイプに合わせてトランスフェクションプロトコルを最適化できます。Silencer™ siRNAトランスフェクションIIキットには、siPORT™ Amineトランスフェクション試薬(ポリアミン混合物)と、新しいsiPORT™ NeoFX™トランスフェクション試薬(陽イオンおよび中性脂質混合物)が含まれています。これらの試薬は、さまざまな細胞タイプにおける効率的で再現性のあるsiRNAトランスフェクションをサポートします。さらに、どちらも継代培養中の細胞トランスフェクションに使用できるため、細胞毒性を高めることなく、まる1日の貴重な時間を節約できます。トランスフェクション試薬が選べることに加え、このキットには、トランスフェクション条件の最適化に使用できる、特性のはっきりしたGAPDH合成siRNAが含まれています。GAPDH特異的抗体を使用して、タンパク質レベルで結果を検証することもできます。目的のsiRNAの特異性を確認し、非特異的で毒性のある効果がないことを示すために、スクランブルされたネガティブコントロールsiRNAも提供されています。
研究用途にのみご使用ください。診断目的には使用できません。
仕様
制御タイプネガティブコントロール、ポジティブコントロール
使用対象(アプリケーション)siRNAトランスフェクション
製品ラインSilencer、Ambion
製品タイプsiRNAトランスフェクション最適化キット
数量1 mL
RNAiタイプsiRNA
細胞タイプ哺乳動物
フォーマットキット
サンプルタイプ合成siRNA, miRNA
Transfection Technique脂質ベースのトランスフェクション
Unit SizeEach
組成および保存条件
siPORT™ NeoFX™トランスフェクション試薬、およびsiPORT™ Amineトランスフェクション試薬は、4℃で保存してください。GAPDH siRNAおよびネガティブコントロールsiRNAは、–20℃で保存してください。

よくあるご質問(FAQ)

What are the benefits of using a vector to deliver RNAi?

Vector technologies allow you to:

Achieve transient or stable target knockdown
Perform RNAi in any cell type, even hard-to-transfect, primary, and non-dividing cells
Regulate gene inhibition with inducible siRNA expression
Select for a pure population of cells stably expressing an siRNA sequence
Control gene expression in vivo with tissue-specific promoters

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Why are my cells dying after transfection?

We would suggest running a transfection reagent control only to determine if your cells are sensitive to the transfection reagent. Additionally, you can try using different cell densities and siRNA concentrations to diminish any toxic effects from the transfection itself.

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I transfected my siRNA and the mRNA levels are down, but the protein is not. Why is that?

In some cases, knockdown of a protein can be affected by other variables such as protein turnover rate, even though the RNA is knocked down. Additionally, a longer time course may be needed to see an effect on protein compared to mRNA.

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I am not getting my target knockdown. What could be the cause of this?

Please see the following possibilities and suggestions:

- How many siRNA did you test? Is there any knockdown? If there is no knockdown (<10%) in any of the siRNA, then the assay is likely the problem. Try using a different qRT-PCR assay to assess knockdown.
- What was the positioning of the qRT-PCR assay target site relative to the cut site for the siRNA? If greater than 3,000 bases away, the problem could be alternative splice transcripts.
- What are the Cts for the experiment? They should be below 35 in a 40-cycle qRT-PCR experiment.
- Did you confirm the siRNA got into the cell? We recommend using a validated positive control siRNA to check the transfection efficiency.

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I am not getting any knockdown with my siRNA. What do you suggest I try?

Please see the following possibilities and suggestions:

- Were the mRNA levels checked? The most reliable method is real-time PCR. In some cases, knockdown of a protein can be affected by other variables, such as protein turnover rate, even though the RNA is knocked down.
- How is the RNA being isolated? Has the quality of the isolated RNA been checked? Ensure that the RNA has not been degraded.
- Was a positive control used? This can help to determine whether the reagents are working and whether the siRNA was delivered correctly to the cell. Run your experiment in parallel with the positive control siRNA.
- Was a transfection control used? What is the percentage of transfected cells?
- Was a time course used? Generally, gene silencing can be assessed as early as 24 hours posttransfection. However, the duration and level of knockdown are dependent on cell type and concentration of siRNA.
- Was optimization of transfection conditions performed? You can try using different cell densities and siRNA concentrations.
- Which concentration of siRNA did you use? We recommend testing multiple concentrations between 5 nM and 100 nM.

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