Silencer™ Negative Control No. 1 siRNA
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Invitrogen™

Silencer™ Negative Control No. 1 siRNA

Ambion™ Silencer™ネガティブコントロール#1 siRNAは、マウス、ラット、またはヒトの遺伝子配列との有意な配列の類似性はありません。このコントロールは細胞ベースのスクリーニングでも試験されており、細胞の増殖、生存、形態に大きな影響を与えないことが証明されています詳細を見る
製品番号(カタログ番号)数量
AM463540 nmol
AM46115 nmol
AM46365 x 40 nmol
製品番号(カタログ番号) AM4635
価格(JPY)
93,700
Exklusiv online
Ends: 27-Mar-2026
133,900
割引額 40,200 (30%)
Each
お問い合わせください ›
数量:
40 nmol
Ambion™ Silencer™ネガティブコントロール#1 siRNAは、マウス、ラット、またはヒトの遺伝子配列との有意な配列の類似性はありません。このコントロールは細胞ベースのスクリーニングでも試験されており、細胞の増殖、生存、形態に大きな影響を与えないことが証明されています。それぞれ40 nmol入りの5本のチューブで提供されます。

•ノンターゲティングで、既知の遺伝子との配列の類似性が限られている
• ヒト、マウス、ラットの細胞での使用について検証済み
• 細胞の増殖や生存に対する影響がきわめて小さいことが機能的に実証されている
• HPLCで精製して二重化されており、すぐに使用可能

ネガティブコントロールsiRNAは、トランスフェクション効率の測定やsiRNA送達効果のコントロールに不可欠です。siRNAスクリーニングアプリケーションでは、ネガティブコントロールsiRNAは、ある特定のアッセイにおいてsiRNAがポジティブ、ネガティブ、ニュートラルのいずれの効果を持つと考えられるかを判定する「ヒット」しきい値を設定するためにも重要となります。

関連製品:Silencer™ siRNAスクリーニングコントロールパネル(SKU#AM4640)
Silencer™ siRNAスクリーニングコントロールパネルには、7種類のネガティブコントロールsiRNAが含まれており、1回の実験で数百または数千のsiRNAを使用してsiRNAスクリーニングを行う場合に適しています。ネガティブコントロールsiRNAは特定のアッセイにおいて意図しない効果をもたらす可能性があるため、慎重に選ぶ必要があります。Silencer™ siRNAスクリーニングコントロールパネルは、このプロセスを簡単にします。さらに、ヒト、マウス、ラットのKIF11(Eg5)に対するポジティブコントロールsiRNAが含まれているという利点もあります。KIF11はキネシンファミリーのモータータンパク質をコードするため、KIF11のノックダウンは有糸分裂停止につながります。Silencer™コントロールsiRNAは非修飾の21-merであり、Silencer™ siRNAやBLOCK-iT™ siRNAなどの非修飾21mer siRNAと組み合わせて使用するように設計されています。Ambion™ Silencer™セレクトsiRNAやSTEALTH RNAi™ siRNAなどの他のsiRNA製品を使用する場合は、より信頼性の高い実験結果を得るために、これらのsiRNAと組み合わせて使用するように設計されたコントロールsiRNAを使用することを推奨します。
研究用にのみ使用できます。診断用には使用いただけません。
仕様
使用対象(アプリケーション)トランスフェクション、RNAi
標識または色素非コンジュゲート
製品ラインSilencer、Ambion
製品タイプsiRNA
純度HPLC
数量40 nmol
出荷条件室温
制御タイプネガティブコントロール
RNAi TypesiRNA
ヒト, マウス, ラット
Unit SizeEach
組成および保存条件
このsiRNAは乾燥した状態で単一のチューブに入っており、再懸濁用のヌクレアーゼフリー水が付属しています。-20°Cで保管してください。

よくあるご質問(FAQ)

What are the benefits of using a vector to deliver RNAi?

Vector technologies allow you to:

Achieve transient or stable target knockdown
Perform RNAi in any cell type, even hard-to-transfect, primary, and non-dividing cells
Regulate gene inhibition with inducible siRNA expression
Select for a pure population of cells stably expressing an siRNA sequence
Control gene expression in vivo with tissue-specific promoters

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Why are my cells dying after transfection?

We would suggest running a transfection reagent control only to determine if your cells are sensitive to the transfection reagent. Additionally, you can try using different cell densities and siRNA concentrations to diminish any toxic effects from the transfection itself.

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I transfected my siRNA and the mRNA levels are down, but the protein is not. Why is that?

In some cases, knockdown of a protein can be affected by other variables such as protein turnover rate, even though the RNA is knocked down. Additionally, a longer time course may be needed to see an effect on protein compared to mRNA.

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I am not getting my target knockdown. What could be the cause of this?

Please see the following possibilities and suggestions:

- How many siRNA did you test? Is there any knockdown? If there is no knockdown (<10%) in any of the siRNA, then the assay is likely the problem. Try using a different qRT-PCR assay to assess knockdown.
- What was the positioning of the qRT-PCR assay target site relative to the cut site for the siRNA? If greater than 3,000 bases away, the problem could be alternative splice transcripts.
- What are the Cts for the experiment? They should be below 35 in a 40-cycle qRT-PCR experiment.
- Did you confirm the siRNA got into the cell? We recommend using a validated positive control siRNA to check the transfection efficiency.

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I am not getting any knockdown with my siRNA. What do you suggest I try?

Please see the following possibilities and suggestions:

- Were the mRNA levels checked? The most reliable method is real-time PCR. In some cases, knockdown of a protein can be affected by other variables, such as protein turnover rate, even though the RNA is knocked down.
- How is the RNA being isolated? Has the quality of the isolated RNA been checked? Ensure that the RNA has not been degraded.
- Was a positive control used? This can help to determine whether the reagents are working and whether the siRNA was delivered correctly to the cell. Run your experiment in parallel with the positive control siRNA.
- Was a transfection control used? What is the percentage of transfected cells?
- Was a time course used? Generally, gene silencing can be assessed as early as 24 hours posttransfection. However, the duration and level of knockdown are dependent on cell type and concentration of siRNA.
- Was optimization of transfection conditions performed? You can try using different cell densities and siRNA concentrations.
- Which concentration of siRNA did you use? We recommend testing multiple concentrations between 5 nM and 100 nM.

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