Click-iT™ HPG Alexa Fluor™ 488 Protein Synthesis Assay Kit
Click-iT™ HPG Alexa Fluor™ 488 Protein Synthesis Assay Kit
Invitrogen™

Click-iT™ HPG Alexa Fluor™ 488 Protein Synthesis Assay Kit

Green features
Click-iT™ HPG Alexa Fluor™ 488タンパク質合成アッセイキットは、蛍光顕微鏡法、ハイコンテントイメージング、またはフローサイメトリーを利用し、迅速かつ高感度で新生タンパク質合成を検出する、非毒性詳細を見る
製品番号(カタログ番号)数量
C104281 kit
製品番号(カタログ番号) C10428
価格(JPY)
106,600
Each
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数量:
1 kit
Click-iT™ HPG Alexa Fluor™ 488タンパク質合成アッセイキットは、蛍光顕微鏡法、ハイコンテントイメージング、またはフローサイメトリーを利用し、迅速かつ高感度で新生タンパク質合成を検出する、非毒性、非放射性の方法を提供します。このキットには、アルキン部分を含むメチオニンのアミノ酸アナログであるL-ホモプロパルギルグリシン(HPG)と、Alexa Fluor™ 488アジドが含まれています。HPGを培養細胞に供給すると、アクティブなタンパク質合成の過程でタンパク質に取り込まれます。Alexa Fluor™ 488アジドを添加することで、緑色の蛍光アジドとアルキンの間に化学選択的ライゲーション(クリック反応)が生じ、イメージングベースの分析による修飾タンパク質の検出が可能になります。

非放射性—従来の35S-メチオニン法の非放射性代替法
バルクタンパク質の動力学を可視化—タンパク質の蛍光標識により、凝集を含む局在の特定が可能
特異的—ラベル標識と検出標識の間の選択的、特異的な反応
安定性 —不可逆的な共有結合を実現
マルチプレックス化—Click™-iT AHA(アジドアミノ酸およびアルキン色素)と同時に使用することで空間的および時間的差異を測定
生体サンプルに適用可能—複雑さにかかわらず、高感度かつ低バックグラウンドで容易に検出

Click-iT™ HPG Alexa Fluor™ 488タンパク質合成アッセイキットは、HeLa、A549、およびU-2 OS細胞において、シクロヘキシミドやアニソマイシンなどのどタンパク質合成阻害剤を使用した試験で良好な結果を示しています。これらのプローブをタンパク質分解のモニターに使用できることも、HeLa細胞でプロテオーム阻害剤(MG132およびボルテゾミブ)とオートファジーの遮断薬(クロロキン)を使用して証明されています。

また、Click-It™ HPG Alexa Fluor™ 488タンパク質合成アッセイキットと、Click™-iT AHAAlexa Fluor™ 594アルキンと共に使用した場合のClick-iT™ケミストリーの違いにより、これらの試薬を併用することで、新生タンパク質合成における空間的または時間的な違いを判別できます。
研究用にのみ使用できます。診断用には使用いただけません。
仕様
検出法蛍光
染色剤タイプタンパク質(新生)
形状液体
グリーン機能危険性が低い
数量1 kit
Green
Emission可視
使用対象(アプリケーション)タンパク質合成アッセイ
使用対象 (装置)蛍光顕微鏡, 蛍光イメージャー
製品ラインAlexa Fluor, Click-iT
製品タイプタンパク質合成アッセイキット
Unit SizeEach
組成および保存条件
  • 2℃~6℃で保存してください
  • 冷凍しないでください
  • 光に長時間曝露しないように材料を保護してください。光への短時間の曝露は可能です。

引用および参考文献 (5)

引用および参考文献
Abstract
Selective identification of newly synthesized proteins in mammalian cells using bioorthogonal noncanonical amino acid tagging (BONCAT).
Authors:Schuman EM
Journal:Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America
PubMed ID:16769897
In both normal and pathological states, cells respond rapidly to environmental cues by synthesizing new proteins. The selective identification of a newly synthesized proteome has been hindered by the basic fact that all proteins, new and old, share the same pool of amino acids and thus are chemically indistinguishable. We ... More
In situ visualization and dynamics of newly synthesized proteins in rat hippocampal neurons.
Authors:Schuman EM
Journal:Nature neuroscience
PubMed ID:20543841
Protein translation has been implicated in different forms of synaptic plasticity, but direct in situ visualization of new proteins is limited to one or two proteins at a time. Here we describe a metabolic labeling approach based on incorporation of noncanonical amino acids into proteins followed by chemoselective fluorescence tagging ... More
Two-color labeling of temporally defined protein populations in mammalian cells.
Authors:Tirrell DA
Journal:Bioorganic & medicinal chemistry letters
PubMed ID:18774715
The proteome undergoes complex changes in response to disease, drug treatment, and normal cellular signaling processes. Characterization of such changes requires methods for time-resolved protein identification and imaging. Here, we describe the application of two reactive methionine (Met) analogues, azidohomoalanine (Aha) and homopropargylglycine (Hpg), to label two protein populations in ... More
Fluorescence visualization of newly synthesized proteins in mammalian cells.
Authors:Tirrell DA
Journal:Angewandte Chemie (International ed. in English)
PubMed ID:17036290
Noncanonical amino acid tagging enables the selective fluorescent visualization of newly synthesized proteins in mammalian cells (see the picture). Susceptibility to tagging is determined by the spatial and temporal character of the protein synthesis, thus providing a complement to methods which identify relevant members of the proteome. ... More
Spatial coupling of mTOR and autophagy augments secretory phenotypes.
Authors:Narita M., et al
Journal:Science (New York, N.Y.)
PubMed ID:21512002
Protein synthesis and autophagic degradation are regulated in an opposite manner by mammalian target of rapamycin (mTOR), whereas under certain conditions it would be beneficial if they occurred in unison to handle rapid protein turnover. We observed a distinct cellular compartment at the trans side of the Golgi apparatus, the ... More