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Citations & References (24)
Invitrogen™
CellLight™ Golgi-GFP, BacMam 2.0
CellLight™ゴルジ-GFP、BacMam 2.0は、生細胞中のゴルジを緑色蛍光タンパク質（GFP）で標識する簡単な方法を提供します。試薬を細胞に添加し、一晩インキュベートするだけで、翌朝にはイメージングの準備が整います。他の細胞構造をラベリングするには？CellLight™f蛍光タンパク質ラベリングツールの詳細はこちらこのすぐに使用可能なコンストラクトをBacMam詳細を見る
| 製品番号（カタログ番号） | 数量 |
|---|---|
| C10592 | 1バイアル |
製品番号（カタログ番号） C10592
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52,000
Each
数量:
1バイアル
CellLight™ゴルジ-GFP、BacMam 2.0は、生細胞中のゴルジを緑色蛍光タンパク質（GFP）で標識する簡単な方法を提供します。試薬を細胞に添加し、一晩インキュベートするだけで、翌朝にはイメージングの準備が整います。
他の細胞構造をラベリングするには？CellLight™f蛍光タンパク質ラベリングツールの詳細はこちら
このすぐに使用可能なコンストラクトをBacMam 2.0テクノロジーを用いて細胞に導入し、GFPのヒトのゴルジレジデント酵素（N-アセチルガラクトサミン転移酵素）への融合を発現させます。蛍光イメージングを使用し、他の蛍光タンパク質や有機色素と多重化することで、生細胞におけるゴルジ-GFPの挙動を観察できます。
CellLight™コンストラクトを発現する細胞をホルムアルデヒドで固定し、免疫細胞化学技術を用いたマルチプレックスイメージングを行うこともできます。
CellLight™テクノロジーとは：
•迅速で便利：CellLight試薬™を細胞に添加し、アッセイに対応した凍結細胞を一晩インキュベートし、イメージング—または保存するだけで、後で使用できるようになります。
• 高効率：初代細胞、幹細胞、神経細胞など、さまざまな哺乳類細胞株の最大90%の形質導入。
• 柔軟性：マルチプレックス実験や共局在研究向けに複数のBacMam試薬を共輸送。線量を簡単に変化させることで、発現レベルを厳密に制御します。
• 低毒性：CellLight™試薬は哺乳類細胞では複製されず、バイオセーフティレベル（BSL）1の取り扱いに適しています。
BacMamテクノロジー
CellLight™ゴルジ-GFP、BacMam 2.0は、ヒトのゴルジレジデント酵素（N-アセチルガラクトサミン転移酵素）とemGFPの融合コンストラクトで、細胞のゴルジ-GFPを正確かつ特異的に標的にします。この融合コンストラクトは昆虫ウイルスであるバキュロウイルスにパッケージされており、ヒト細胞では再現されず、ほとんどのラボで生物学的安全レベル（BSL）1で使用することが安全であると指定されています。BacMam技術により、ほとんどの哺乳類細胞タイプが、高効率かつ最小限の毒性で形質導入およびトランスフェクションされます。この一過性トランスフェクションは、一晩のインキュベーション後に最大5日間検出できます—ほとんどの動的細胞分析を実行するのに十分な期間です。あらゆるトランスフェクションおよび形質導入技術と同様に、BacMam法はすべての細胞を同等の効率でトランスフェクション/形質導入しないため、細胞集団研究または自動イメージングおよび自動カウントにはあまり適していません。CellLight™試薬は、細胞または細胞内の共局方化が必要な実験や、特別な分解能を必要とする細胞機能研究に最適です。
他の細胞構造をラベリングするには？CellLight™f蛍光タンパク質ラベリングツールの詳細はこちら
このすぐに使用可能なコンストラクトをBacMam 2.0テクノロジーを用いて細胞に導入し、GFPのヒトのゴルジレジデント酵素（N-アセチルガラクトサミン転移酵素）への融合を発現させます。蛍光イメージングを使用し、他の蛍光タンパク質や有機色素と多重化することで、生細胞におけるゴルジ-GFPの挙動を観察できます。
CellLight™コンストラクトを発現する細胞をホルムアルデヒドで固定し、免疫細胞化学技術を用いたマルチプレックスイメージングを行うこともできます。
CellLight™テクノロジーとは：
•迅速で便利：CellLight試薬™を細胞に添加し、アッセイに対応した凍結細胞を一晩インキュベートし、イメージング—または保存するだけで、後で使用できるようになります。
• 高効率：初代細胞、幹細胞、神経細胞など、さまざまな哺乳類細胞株の最大90%の形質導入。
• 柔軟性：マルチプレックス実験や共局在研究向けに複数のBacMam試薬を共輸送。線量を簡単に変化させることで、発現レベルを厳密に制御します。
• 低毒性：CellLight™試薬は哺乳類細胞では複製されず、バイオセーフティレベル（BSL）1の取り扱いに適しています。
BacMamテクノロジー
CellLight™ゴルジ-GFP、BacMam 2.0は、ヒトのゴルジレジデント酵素（N-アセチルガラクトサミン転移酵素）とemGFPの融合コンストラクトで、細胞のゴルジ-GFPを正確かつ特異的に標的にします。この融合コンストラクトは昆虫ウイルスであるバキュロウイルスにパッケージされており、ヒト細胞では再現されず、ほとんどのラボで生物学的安全レベル（BSL）1で使用することが安全であると指定されています。BacMam技術により、ほとんどの哺乳類細胞タイプが、高効率かつ最小限の毒性で形質導入およびトランスフェクションされます。この一過性トランスフェクションは、一晩のインキュベーション後に最大5日間検出できます—ほとんどの動的細胞分析を実行するのに十分な期間です。あらゆるトランスフェクションおよび形質導入技術と同様に、BacMam法はすべての細胞を同等の効率でトランスフェクション/形質導入しないため、細胞集団研究または自動イメージングおよび自動カウントにはあまり適していません。CellLight™試薬は、細胞または細胞内の共局方化が必要な実験や、特別な分解能を必要とする細胞機能研究に最適です。
研究用にのみ使用できます。診断用には使用いただけません。
仕様
色Green
検出法蛍光
染色剤タイプGFP(EmGFP)
発光可視
励起波長域488⁄510
使用対象 (装置)共焦点顕微鏡, 蛍光顕微鏡
形状液体
製品ラインCellLight
数量1バイアル
出荷条件湿氷
技術蛍光強度
標識タイプ蛍光タンパク質
製品タイプゴルジ
SubCellular Localizationゴルジ
Unit SizeEach
組成および保存条件
2°C∼6°Cで保管し、遮光してください。冷凍しないでください。
よくあるご質問（FAQ）
CellLight や Premo FUCCI cell cycle sensor などの BacMam 2.0試薬にて、どのようにすれば形質転換効率を上げることができますか？
How can I increase the transduction efficiency with the BacMam 2.0 reagents such as the the CellLight and Premo products?
Is there any way to preserve the CellLights labeling beyond 5 days?
Are the CellLights products toxic to cells?
For how long will the CellLights products label my cells?
引用および参考文献 (24)
引用および参考文献
Abstract
Substrate stiffness regulates cadherin-dependent collective migration through myosin-II contractility.
Journal:J Cell Biol
PubMed ID:23091067
'The mechanical microenvironment is known to influence single-cell migration; however, the extent to which mechanical cues affect collective migration of adherent cells is not well understood. We measured the effects of varying substrate compliance on individual cell migratory properties in an epithelial wound-healing assay. Increasing substrate stiffness increased collective cell
Dynamic colocalization microscopy to characterize intracellular trafficking of nanomedicines.
Journal:ACS Nano
PubMed ID:21923168
'To gain a better understanding of intracellular processing of nanomedicines, we employed quantitative live-cell fluorescence colocalization microscopy to study endosomal trafficking of polyplexes in retinal pigment epithelium cells. A new, dynamic colocalization algorithm was developed, based on particle tracking and trajectory correlation, allowing for spatiotemporal characterization of internalized polyplexes in
Intracellular trafficking mechanism, from intracellular uptake to extracellular efflux, for phospholipid/cholesterol liposomes.
Journal:Biomaterials
PubMed ID:22858002
'Liposomes are widely used as drug delivery vehicles to transfer chemotherapeutic agents, proteins, and nucleic acids into target cells. To improve therapeutic effects and reduce unexpected toxic side-effects, it is necessary to understand the mechanism of liposomal uptake into cells, and the intracellular fate of internalized liposomes. The intracellular fate
Glycophthalocyanines as photosensitizers for triggering mitotic catastrophe and apoptosis in cancer cells.
Journal:Chem Res Toxicol
PubMed ID:22394248
'Photodynamic therapy (PDT) is a treatment modality for different forms of cancer based on the combination of light, molecular oxygen, and a photosensitizer (PS) compound. When activated by light, the PS generates reactive oxygen species leading to tumor destruction. Phthalocyanines are compounds that have already shown to be efficient PSs
A Review of Reagents for Fluorescence Microscopy of Cellular Compartments and Structures, Part III: Reagents for Actin, Tubulin, Cellular Membranes, and Whole Cell and Cytoplasm.
Journal:
PubMed ID:24510770
'Non-antibody commercial fluorescent reagents for imaging of cytoskeletal structures have been limited primarily to tubulin and actin, with the main factor in choice based mainly on whether cells are live or fixed and permeabilized. A wider range of options exist for cell membrane dyes, and the choice of reagent primarily