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Citations & References (18)
Invitrogen™
Dextran, Alexa Fluor™ 568; 10,000 MW, Anionic, Fixable
標識デキストランは親水性多糖類で、細胞分裂のモニタリング、生細胞の動きの追跡、細胞質マトリックスのハイドロダイナミック特性の報告など、顕微鏡研究でもっとも一般的に使用されています。標識デキストランは、一般にマイクロインジェクションを介して細胞に導入されます。異なる蛍光スペクトルや長いトラッキングが必要ですか？その他の哺乳類細胞トラッキング製品をご覧ください。デキストラン仕様：•標識（Ex/Em詳細を見る
| 製品番号（カタログ番号） | 数量 |
|---|---|
| D22912 または、製品番号D-22912 | 5 mg |
製品番号（カタログ番号） D22912
または、製品番号D-22912
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101,100
Each
数量:
5 mg
標識デキストランは親水性多糖類で、細胞分裂のモニタリング、生細胞の動きの追跡、細胞質マトリックスのハイドロダイナミック特性の報告など、顕微鏡研究でもっとも一般的に使用されています。標識デキストランは、一般にマイクロインジェクションを介して細胞に導入されます。
異なる蛍光スペクトルや長いトラッキングが必要ですか？その他の哺乳類細胞トラッキング製品をご覧ください。
デキストラン仕様：
•標識（Ex/Em）：Alexa Fluor™ 568（578/603）
• サイズ：10,000 MW
• 電荷：陰イオン
• 固定可能：遊離アミンで固定
分子プローブの高い製造基準™ デキストラン
当社では、いくつかの分子量範囲で50種類を超える蛍光性およびビオチンデキストランコンジュゲートを提供しています。デキストランは親水性多糖類で、中程度から高分子量、優れた水溶性、および低毒性を特徴としています。また、一般的に免疫原性が低いことも示しています。デキストランは、ポリ（α-D-1,6グルコース）結合がまれであるため生物学的に不活性であり、ほとんどの内因性細胞グリコシダーゼによる開裂に耐性があります。
ほとんど™ の場合、分子プローブの蛍光性デキストランは、他のソースから入手可能なデキストランよりもはるかに明るく、高い負電荷を持っています。さらに、実用的な量の非標識色素を除去するための厳格な方法を使用し、さらに、低分子量の汚染物質がないように、薄層クロマトグラフィーでデキストランコンジュゲートをアッセイします。
置換基と分子量の幅広い選択
分子プローブ™ デキストランは、当社の Alexa Fluor™色素（分子プローブデキストランコンジュゲート - 表14.4）を含むビオチンまたはさまざまなフルオロフォアに結合されており、これらの公称分子量（MW）でご利用いただけます。3,000、10,000、40,000、70,000、500,000、2,000,000ダルトン。
デキストラン正味電荷と固定性
当社は、デキストラン分子に色素をスクシンイミジル結合させることで、ほとんどの場合中性または陰イオン性デキストランを生成します。ローダミングリーン™とAlexa Fluor™ 488デキストランの生成に使用される反応により、最終製品は中性、陰イオン性、陽イオン性になります。Alexa Fluor™、Cascade Blue™、ルシファーイエロー、フルオレセイン、Oregon Green™デキストランは本質的に陰イオン性ですが、ほとんどのデキストランには両性イオン性ローダミンB、テトラメチルローダミン、Texas Red™の色素が標識されたデキストランのほとんどは基本的に中性です。さらに高い陰イオン性デキストランを生産するために、当社は、デキストランキャリアに負電荷基を付加する独自の手順を開発しました。これらの製品は、“ポリアニオン性”デキストランに指定されています。
一部の用途では、その後の分析のためにデキストラントレーサーをホルムアルデヒドまたはグルタルアルデヒドで処理する必要があります。このような用途のために、当社では、ほとんどのフルオロフォアまたはビオチンのデキストランコンジュゲートの“リジン固定可能な”バージョンをご用意しています。これらのデキストランには共有結合したリジン残基があり、これによりデキストラントレーサーをアルデヒド介在性固定により周辺の生体分子に結合させ、免疫組織化学的および超構造的手法による検出が可能になります。™ また、当社の10,000 MW Alexa Fluorデキストランコンジュゲートは、すべてアルデヒドベースの固定剤で固定できることもわかっています。
標識デキストランを使用する主な用途
標識デキストランの使用について説明する多数の引用があります。もっとも一般的な用途は次のとおりです。
•生細胞における神経細胞トレーシング（順行性および逆行性）
• 生細胞における細胞系統トレーシング
• 神経解剖学的トレーシング
• 細胞間コミュニケーションの検査（ギャップジャンクション、創傷治癒期間、胚発生時など）
• 血管透過性と血液脳関門の完全性の調査
•エンドサイトーシスの追跡
• 酸性化モニタリング（デキストラン色素の一部はpH感受性）
• 細胞質マトリックスの流体力学的特性に関する研究
研究用途にのみ使用できます。ヒトまたは動物の治療もしくは診断用には使用できません。
異なる蛍光スペクトルや長いトラッキングが必要ですか？その他の哺乳類細胞トラッキング製品をご覧ください。
デキストラン仕様：
•標識（Ex/Em）：Alexa Fluor™ 568（578/603）
• サイズ：10,000 MW
• 電荷：陰イオン
• 固定可能：遊離アミンで固定
分子プローブの高い製造基準™ デキストラン
当社では、いくつかの分子量範囲で50種類を超える蛍光性およびビオチンデキストランコンジュゲートを提供しています。デキストランは親水性多糖類で、中程度から高分子量、優れた水溶性、および低毒性を特徴としています。また、一般的に免疫原性が低いことも示しています。デキストランは、ポリ（α-D-1,6グルコース）結合がまれであるため生物学的に不活性であり、ほとんどの内因性細胞グリコシダーゼによる開裂に耐性があります。
ほとんど™ の場合、分子プローブの蛍光性デキストランは、他のソースから入手可能なデキストランよりもはるかに明るく、高い負電荷を持っています。さらに、実用的な量の非標識色素を除去するための厳格な方法を使用し、さらに、低分子量の汚染物質がないように、薄層クロマトグラフィーでデキストランコンジュゲートをアッセイします。
置換基と分子量の幅広い選択
分子プローブ™ デキストランは、当社の Alexa Fluor™色素（分子プローブデキストランコンジュゲート - 表14.4）を含むビオチンまたはさまざまなフルオロフォアに結合されており、これらの公称分子量（MW）でご利用いただけます。3,000、10,000、40,000、70,000、500,000、2,000,000ダルトン。
デキストラン正味電荷と固定性
当社は、デキストラン分子に色素をスクシンイミジル結合させることで、ほとんどの場合中性または陰イオン性デキストランを生成します。ローダミングリーン™とAlexa Fluor™ 488デキストランの生成に使用される反応により、最終製品は中性、陰イオン性、陽イオン性になります。Alexa Fluor™、Cascade Blue™、ルシファーイエロー、フルオレセイン、Oregon Green™デキストランは本質的に陰イオン性ですが、ほとんどのデキストランには両性イオン性ローダミンB、テトラメチルローダミン、Texas Red™の色素が標識されたデキストランのほとんどは基本的に中性です。さらに高い陰イオン性デキストランを生産するために、当社は、デキストランキャリアに負電荷基を付加する独自の手順を開発しました。これらの製品は、“ポリアニオン性”デキストランに指定されています。
一部の用途では、その後の分析のためにデキストラントレーサーをホルムアルデヒドまたはグルタルアルデヒドで処理する必要があります。このような用途のために、当社では、ほとんどのフルオロフォアまたはビオチンのデキストランコンジュゲートの“リジン固定可能な”バージョンをご用意しています。これらのデキストランには共有結合したリジン残基があり、これによりデキストラントレーサーをアルデヒド介在性固定により周辺の生体分子に結合させ、免疫組織化学的および超構造的手法による検出が可能になります。™ また、当社の10,000 MW Alexa Fluorデキストランコンジュゲートは、すべてアルデヒドベースの固定剤で固定できることもわかっています。
標識デキストランを使用する主な用途
標識デキストランの使用について説明する多数の引用があります。もっとも一般的な用途は次のとおりです。
•生細胞における神経細胞トレーシング（順行性および逆行性）
• 生細胞における細胞系統トレーシング
• 神経解剖学的トレーシング
• 細胞間コミュニケーションの検査（ギャップジャンクション、創傷治癒期間、胚発生時など）
• 血管透過性と血液脳関門の完全性の調査
•エンドサイトーシスの追跡
• 酸性化モニタリング（デキストラン色素の一部はpH感受性）
• 細胞質マトリックスの流体力学的特性に関する研究
研究用途にのみ使用できます。ヒトまたは動物の治療もしくは診断用には使用できません。
研究用にのみ使用できます。診断用には使用いただけません。
仕様
標識または色素Alexa Fluor色素
製品タイプデキストラン
数量5 mg
出荷条件室温
Excitation/Emission578/603 nm
製品ラインAlexa Fluor
Unit SizeEach
組成および保存条件
フリーザー（-5～-30度）に保存し、遮光してください。
よくあるご質問（FAQ）
I can't see the structural details of neurons when I inject my fluorescent dextran. What can I do to improve the detailed structure?
Why isn't my fluorescently conjugated dextran signal retained after fixation?
What are the charges of the dextrans?
What size dextran is best for neuronal tracing?
Do you have a neuronal tracing protocol?
引用および参考文献 (18)
引用および参考文献
Abstract
Visually guided injection of identified reticulospinal neurons in zebrafish: a survey of spinal arborization patterns.
Journal:J Comp Neurol
PubMed ID:12640669
'We report here the pattern of axonal branching for 11 descending cell types in the larval brainstem; eight of these cell types are individually identified neurons. Large numbers of brainstem neurons were retrogradely labeled in living larvae by injecting Texas-red dextran into caudal spinal cord. Subsequently, in each larva a
Beclin1-binding UVRAG targets the class C Vps complex to coordinate autophagosome maturation and endocytic trafficking.
Journal:Nat Cell Biol
PubMed ID:18552835
'Autophagic and endocytic pathways are tightly regulated membrane rearrangement processes that are crucial for homeostasis, development and disease. Autophagic cargo is delivered from autophagosomes to lysosomes for degradation through a complex process that topologically resembles endosomal maturation. Here, we report that a Beclin1-binding autophagic tumour suppressor, UVRAG, interacts with the
COPII-Golgi protein interactions regulate COPII coat assembly and Golgi size.
Journal:J Cell Biol
PubMed ID:16818719
'Under experimental conditions, the Golgi apparatus can undergo de novo biogenesis from the endoplasmic reticulum (ER), involving a rapid phase of growth followed by a return to steady state, but the mechanisms that control growth are unknown. Quantification of coat protein complex (COP) II assembly revealed a dramatic up-regulation at
Correlative light-electron microscopy (CLEM) combining live-cell imaging and immunolabeling of ultrathin cryosections.
Journal:Nat Methods
PubMed ID:18974735
'The visualization of fluorescent proteins in living cells is a powerful approach to study intracellular dynamics. A limitation of fluorescence imaging, however, is that it lacks fine structural information; a fluorescent spot could represent an entire organelle, an organellar subdomain or even aggregates of proteins or membranes. These limitations can
Automated organelle-based colocalization in whole-cell imaging.
Journal:Cytometry A
PubMed ID:19746416
The use of fluorescence microscopy to investigate protein colocalization is an invaluable tool for understanding subcellular structures and their associated proteins. However, current techniques are largely limited to two-dimensional (2D) imaging and often require manual segmentation. Here, we present OBCOL, a methodology to automatically segment and quantify protein colocalization not