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Citations & References (94)
Invitrogen™
Di-8-ANEPPS
ANEP色素は、環境中の電位変化に反応して蛍光を発する分子です。これらは、周囲の電場の変化に反応して電子構造を変化させ、その結果として蛍光特性を変化させることで動作する高速応答プローブです。これらの光学的応答は十分に高速で、単一ニューロン、心臓細胞、無傷の脳などの励起性細胞における一過性（ミリ秒詳細を見る
| 製品番号（カタログ番号） | 数量 |
|---|---|
| D3167 | 5 mg |
製品番号（カタログ番号） D3167
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129,900
Each
数量:
5 mg
ANEP色素は、環境中の電位変化に反応して蛍光を発する分子です。これらは、周囲の電場の変化に反応して電子構造を変化させ、その結果として蛍光特性を変化させることで動作する高速応答プローブです。これらの光学的応答は十分に高速で、単一ニューロン、心臓細胞、無傷の脳などの励起性細胞における一過性（ミリ秒）の潜在的な変化を検出します。しかし、電位依存性の蛍光変化の大きさは小さいことが多く、高速応答プローブは通常、100 mVあたり2～10%の蛍光変化を示します。さらに、これらの色素は励起スペクトルに電位依存性のシフトを示すため、励起比測定を使用して膜電位の定量が可能です。
カルシウム、カリウム、pH、および膜電位インジケータなどのイオンインジケータの詳細については、こちらを参照してください›
電位感受性ANEP色素の仕様：
• 両性イオン分子は、di-4-ANEPPSよりも内在化の影響を受けにくく、長時間の観察が可能です
• モデルのリン脂質膜に結合したEx/Em最大値は、約465/635 nmです（ただし、スペクトル特性は環境に大きく依存します）
• 膜に結合するまで非蛍光
• エタノール、DMSO、DMFに溶解（di-2-ANEPEQは水溶性ANEP色素です）
• 色素は、細胞培養培地へのストック溶液の直接添加か、Pluronic™ F-127を使用するか、または、逆行性ラベリングによって細胞に導入されます
• サブミリ秒の膜電位の変化を検出するのに適した高速応答プローブ
電位差プローブの応用
細胞膜は、通常、活性輸送プロセスによって維持されるK+、Na+、Cl-濃度勾配の結果として、膜貫通電位が約-70 mV（内部はマイナス）になります。電位差プローブは、これらのイオンの転座を間接的に検出する方法を提供します。
膜電位の増加と減少は、それぞれ膜の過分極と脱分極と呼ばれ、神経インパルスの伝播、筋収縮、細胞シグナル伝達、イオンチャネルゲーティングなど、多くの生理学的プロセスで中心的な役割を果たしています。電位差プローブは、これらのプロセスを研究するための重要なツールです。
ANEP色素をもっと見る
当社では、さまざまな形態のANEP色素を提供しています。これらのプローブの詳細については、「Molecular Probesハンドブック」の「Fast-Response Probes」セクション22.2™を参照してください。
研究用途にのみご使用ください。ヒトまたは動物の治療もしくは診断目的には使用できません。
カルシウム、カリウム、pH、および膜電位インジケータなどのイオンインジケータの詳細については、こちらを参照してください›
電位感受性ANEP色素の仕様：
• 両性イオン分子は、di-4-ANEPPSよりも内在化の影響を受けにくく、長時間の観察が可能です
• モデルのリン脂質膜に結合したEx/Em最大値は、約465/635 nmです（ただし、スペクトル特性は環境に大きく依存します）
• 膜に結合するまで非蛍光
• エタノール、DMSO、DMFに溶解（di-2-ANEPEQは水溶性ANEP色素です）
• 色素は、細胞培養培地へのストック溶液の直接添加か、Pluronic™ F-127を使用するか、または、逆行性ラベリングによって細胞に導入されます
• サブミリ秒の膜電位の変化を検出するのに適した高速応答プローブ
電位差プローブの応用
細胞膜は、通常、活性輸送プロセスによって維持されるK+、Na+、Cl-濃度勾配の結果として、膜貫通電位が約-70 mV（内部はマイナス）になります。電位差プローブは、これらのイオンの転座を間接的に検出する方法を提供します。
膜電位の増加と減少は、それぞれ膜の過分極と脱分極と呼ばれ、神経インパルスの伝播、筋収縮、細胞シグナル伝達、イオンチャネルゲーティングなど、多くの生理学的プロセスで中心的な役割を果たしています。電位差プローブは、これらのプロセスを研究するための重要なツールです。
ANEP色素をもっと見る
当社では、さまざまな形態のANEP色素を提供しています。これらのプローブの詳細については、「Molecular Probesハンドブック」の「Fast-Response Probes」セクション22.2™を参照してください。
研究用途にのみご使用ください。ヒトまたは動物の治療もしくは診断目的には使用できません。
研究用にのみ使用できます。診断用には使用いただけません。
仕様
検出法蛍光
数量5 mg
出荷条件室温
細胞内局在細胞膜&脂質
色オレンジ
使用対象 (装置)蛍光顕微鏡
製品タイプANEP色素
Unit SizeEach
組成および保存条件
室温で保存し、光から保護します。
よくあるご質問（FAQ）
What are the excitation/emission maxima for Di-8-ANEPPS (Cat. No. D3167)?
I am seeing high background outside of my neuronal cells when using membrane potential indicators. What can I do to reduce background?
What is the difference between fast and slow-response membrane potential probes?
What type of membrane potential indicators do you offer and how should I choose one for my experiment?
引用および参考文献 (94)
引用および参考文献
Abstract
Journal:
PubMed ID:18198177
Exercise training attenuates coronary smooth muscle phenotypic modulation and nuclear Ca2+ signaling.
Journal:Am J Physiol Heart Circ Physiol
PubMed ID:12388302
'Physical inactivity is an independent risk factor for coronary heart disease, yet the mechanism(s) of exercise-related cardioprotection remains unknown. We tested the hypothesis that coronary smooth muscle after exercise training would have decreased mitogen-induced phenotypic modulation and enhanced regulation of nuclear Ca(2+). Yucatan swine were endurance exercise trained (EX) on
Ratiometric measurement of endothelial depolarization in arterioles with a potential-sensitive dye.
Journal:Am J Physiol
PubMed ID:8764277
'A fluorescence ratio technique based on the voltage-sensitive dye 1-(3-sulfonatopropyl)-8-[beta-[2-di-n-butylamino)-6-naphythyl++ +]vinyl] pyridinium betaine (di-8-ANEPPS)has been developed for recording membrane potential changes during vascular responses of arterioles. Perfusion of hamster cheek pouch arterioles with the dye labeled the endothelial cell layer. voltage responses from the endothelium of intact arterioles were determined
Spatially non-uniform Ca2+ signals induced by the reduction of transverse tubules in citrate-loaded guinea-pig ventricular myocytes in culture.
Journal:J Physiol
PubMed ID:9003546
'1. Ratiometric confocal microscopy and the whole-cell patch clamp technique were used to simultaneously record intracellular Ca2+ transients and membrane currents from guinea-pig ventricular myocytes. Intracellular dialysis with the low-affinity Ca2+ buffer citrate enabled us to record and analyse Ca2+ transients caused by Ca2+ influx alone and by additional Ca2+
The effect of asymmetric surface potentials on the intramembrane electric field measured with voltage-sensitive dyes.
Journal:Biophys J
PubMed ID:12668484
'Ratiometric imaging of styryl potentiometric dyes can be used to measure the potential gradient inside the membrane (intramembrane potential), which is the sum of contributions from transmembrane potential, dipole potential, and the difference in the surface potentials at both sides of the membrane. Here changes in intramembrane potential of the