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Invitrogen™
BODIPY™ TMR-X NHS Ester (Succinimidyl Ester)
BODIPY™ TMR-Xは明るくオレンジ色の蛍光色素で、テトラメチルローダミン（TRITC）またはAlexa Fluor™ 555色素と同様の励起および発光を示します。高い吸光係数と蛍光量子収率を有し、溶媒極性やpHの変化に比較的影響を受けません。水溶性の高いフルオロフォアAlexa詳細を見る
| 製品番号（カタログ番号） | 数量 |
|---|---|
| D6117 または、製品番号D-6117 | 5 mg |
製品番号（カタログ番号） D6117
または、製品番号D-6117
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89,200
Each
数量:
5 mg
BODIPY™ TMR-Xは明るくオレンジ色の蛍光色素で、テトラメチルローダミン（TRITC）またはAlexa Fluor™ 555色素と同様の励起および発光を示します。高い吸光係数と蛍光量子収率を有し、溶媒極性やpHの変化に比較的影響を受けません。水溶性の高いフルオロフォアAlexa Fluor™ 488色素やフルオレセイン（FITC）とは異なり、BODIPY™色素は脂質、膜、およびその他の親油性化合物の染色に最適な独自の疎水性特性を有しています。BODIPY™ TMR-X色素は、励起状態の寿命が比較的長く（通常5ナノ秒以上）、蛍光偏光ベースのアッセイや、多光子励起用の大きな2光子断面に有用です。反応性色素製剤に加えて、細胞の標識と検出に最適化されたさまざまな抗体、ペプチド、タンパク質、トレーサー、および増幅基質に結合したBODIPY™ TMR-X色素も提供しています。
BODIPY™ TMR-XのNHSエステル（またはスクシンイミジルエステル）は、タンパク質または抗体に色素を結合させるための最も一般的なツールです。NHSエステルは、タンパク質、アミン修飾オリゴヌクレオチド、およびその他のアミン含有分子の一級アミン（R-NH2）を標識化できます。結果として生じるBODIPY™ TMR-Xコンジュゲートは、明るい蛍光、狭い発光帯域幅、比較的長い励起状態の寿命を示します。これは、蛍光偏光アッセイや2光子励起（TPE）顕微鏡に有用です。
この反応性色素には、蛍光色素とNHSエステル基の間に7原子アミノヘキサノイル（'X'）スペーサーが含まれます。このスペーサーは、蛍光色素分子をその結合点から分離するのに役立ち、蛍光色素分子と結合先の生体分子との相互作用を低減する可能性があります。
この BODIPY™ TMR-X NHSエステルの詳細情報：
蛍光色素標識：BODIPY™ TMR-X色素
反応基：NHSエステル（スクシンイミジルエステル）
反応性：タンパク質およびリガンドの一級アミン、アミン修飾オリゴヌクレオチド
コンジュゲートの励起／発光：544／570 nm
減衰係数：60,000 cm-1M-1
分子量：608.45
標準的な結合反応
アミノ基反応性試薬をほぼあらゆるタンパク質またはペプチドと結合させることができます。提供されているプロトコルはIgG抗体用に最適化されています。反応は任意の量のタンパク質に対応させることができますが、最適な結果を得るにはタンパク質の濃度を2 mg/mL以上にする必要があります。反応試薬とタンパク質の3つのモル比を使用して、3つの異なる標識度を試すことが推奨されます。
BODIPY™ NHSエステルは通常、高品質の無水ジメチルホルムアミド（DMF）またはジメチルスルホキシド（DMSO）に溶解し、反応は室温で0.1～0.2 Mの炭酸水素ナトリウム緩衝液（pH 8.3）で1時間行います。末端アミンのpKaはリジンのエプシロンアミノ基のpKaよりも低いため、中性pHに近いバッファーを使用するとアミン末端をより選択的に標識できます。
コンジュゲート精製
標識抗体は、通常、Sephadex™ G-25、BioGel™ P-30、または同等のゲルろ過カラムを使用して、遊離BODIPY™色素から分離されます。大容量または小容量のタンパク質の場合は、適切な分子量のカットオフまたは透析による精製を行うゲルろ過培地を選択してください。当社は、さまざまな量の抗体コンジュゲート用に最適化された精製キットを複数提供しています：
0.5～1 mg用Antibody Conjugate Purification Kit（A33086）
20～50 µg用Antibody Conjugate Purification Kit（A33087）
50～100 µg用Antibody Conjugate Purification Kit（A33088）
タンパク質および抗体の標識に関する詳細
当社は、 お客様の出発物質および実験のセットアップに適したMolecular Probes™抗体およびタンパク質標識キットを幅広く提供しています。その他の選択肢は、当社の抗体標識キットをご覧になるか、当社の標識化学選択ツールをご利用ください。標識キットの詳細については、Molecular Probes™ハンドブックのタンパク質および核酸の標識キット—セクション 1.2をご覧ください。
当社では、お客様に合わせてカスタムコンジュゲートを実施
当社のオンラインカタログで目的の製品が見つからない場合は、カスタム抗体またはタンパク質コンジュゲートをご用意ください。当社のカスタム結合サービスは効率的かつ機密性が確保され、品質が保証されています。当社はISO 9001：2000認証を取得しています。
BODIPY™ TMR-XのNHSエステル（またはスクシンイミジルエステル）は、タンパク質または抗体に色素を結合させるための最も一般的なツールです。NHSエステルは、タンパク質、アミン修飾オリゴヌクレオチド、およびその他のアミン含有分子の一級アミン（R-NH2）を標識化できます。結果として生じるBODIPY™ TMR-Xコンジュゲートは、明るい蛍光、狭い発光帯域幅、比較的長い励起状態の寿命を示します。これは、蛍光偏光アッセイや2光子励起（TPE）顕微鏡に有用です。
この反応性色素には、蛍光色素とNHSエステル基の間に7原子アミノヘキサノイル（'X'）スペーサーが含まれます。このスペーサーは、蛍光色素分子をその結合点から分離するのに役立ち、蛍光色素分子と結合先の生体分子との相互作用を低減する可能性があります。
この BODIPY™ TMR-X NHSエステルの詳細情報：
蛍光色素標識：BODIPY™ TMR-X色素
反応基：NHSエステル（スクシンイミジルエステル）
反応性：タンパク質およびリガンドの一級アミン、アミン修飾オリゴヌクレオチド
コンジュゲートの励起／発光：544／570 nm
減衰係数：60,000 cm-1M-1
分子量：608.45
標準的な結合反応
アミノ基反応性試薬をほぼあらゆるタンパク質またはペプチドと結合させることができます。提供されているプロトコルはIgG抗体用に最適化されています。反応は任意の量のタンパク質に対応させることができますが、最適な結果を得るにはタンパク質の濃度を2 mg/mL以上にする必要があります。反応試薬とタンパク質の3つのモル比を使用して、3つの異なる標識度を試すことが推奨されます。
BODIPY™ NHSエステルは通常、高品質の無水ジメチルホルムアミド（DMF）またはジメチルスルホキシド（DMSO）に溶解し、反応は室温で0.1～0.2 Mの炭酸水素ナトリウム緩衝液（pH 8.3）で1時間行います。末端アミンのpKaはリジンのエプシロンアミノ基のpKaよりも低いため、中性pHに近いバッファーを使用するとアミン末端をより選択的に標識できます。
コンジュゲート精製
標識抗体は、通常、Sephadex™ G-25、BioGel™ P-30、または同等のゲルろ過カラムを使用して、遊離BODIPY™色素から分離されます。大容量または小容量のタンパク質の場合は、適切な分子量のカットオフまたは透析による精製を行うゲルろ過培地を選択してください。当社は、さまざまな量の抗体コンジュゲート用に最適化された精製キットを複数提供しています：
0.5～1 mg用Antibody Conjugate Purification Kit（A33086）
20～50 µg用Antibody Conjugate Purification Kit（A33087）
50～100 µg用Antibody Conjugate Purification Kit（A33088）
タンパク質および抗体の標識に関する詳細
当社は、 お客様の出発物質および実験のセットアップに適したMolecular Probes™抗体およびタンパク質標識キットを幅広く提供しています。その他の選択肢は、当社の抗体標識キットをご覧になるか、当社の標識化学選択ツールをご利用ください。標識キットの詳細については、Molecular Probes™ハンドブックのタンパク質および核酸の標識キット—セクション 1.2をご覧ください。
当社では、お客様に合わせてカスタムコンジュゲートを実施
当社のオンラインカタログで目的の製品が見つからない場合は、カスタム抗体またはタンパク質コンジュゲートをご用意ください。当社のカスタム結合サービスは効率的かつ機密性が確保され、品質が保証されています。当社はISO 9001：2000認証を取得しています。
研究用にのみ使用できます。診断用には使用いただけません。
仕様
化学反応性アミン
発光570 nm
励起544 nm
標識または色素BODIPY™ TMR
製品タイプ色素
数量5 mg
反応性部分活性エステル、スクシンイミジルエステル
出荷条件室温
標識タイプBODIPY色素
製品ラインBODIPY
Unit SizeEach
組成および保存条件
フリーザー(-5∼-30度)に保存し、遮光してください。
引用および参考文献 (10)
引用および参考文献
Abstract
Lanthanide-binding tags as luminescent probes for studying protein interactions.
Journal:J Am Chem Soc
PubMed ID:16734490
'Herein, we report a method for studying protein-peptide interactions which exploits the luminescence properties of Tb(III). Lanthanide-binding tags (LBTs) are short peptide sequences comprising 15-20 naturally occurring amino acids that bind Tb(III) with high affinity. These genetically encodable luminescent tags are smaller in size than the Aequorea victoria fluorescent proteins
Air-stable G protein-coupled receptor microarrays and ligand binding characteristics.
Journal:Anal Chem
PubMed ID:16383322
'This paper described novel strategies to achieve air-stable G protein-coupled receptor (GPCR) microarrays and the uses of the microarrays for ligand profiling. Specifically, GPCR cell membrane fragments were suspended in a buffered solution containing bovine serum albumin (BSA) and disaccharide sucrose or trehalose and used for fabricating GPCR microarrays. During
Multicolor in vitro translation.
Journal:Nat Biotechnol
PubMed ID:12910244
'In vitro translation is a widely used tool for both analytical and preparative purposes. For analytical purposes, small amounts of proteins are synthesized and visualized by detection of labeled amino acids incorporated during translation. The original strategy of incorporating radioactively labeled amino acids, such as [35S]methionine or [14C]leucine, has been
Impact of a red-shifted dye label for high throughput fluorescence polarization assays of G protein-coupled receptors.
Journal:J Biomol Screen
PubMed ID:11080691
'High throughput screening fluorescence polarization assays using G protein-coupled receptors (GPCRs) as targets have been compared using fluorescein and BODIPY TMR-labeled peptides. The red-shifted BODIPY TMR dye exhibits improved assay performance relative to fluorescein due to improvement in both ligand affinity to the GPCRs and assay precision brought about by
Considerations for using fluorescence polarization in the screening of G protein-coupled receptors.
Journal:J Biomol Screen
PubMed ID:12006109
Fluorescence polarization must be classified as a unique detection method relative to other intensity-based methods because both bound and unbound tracer is measured. Other fluorescence techniques require either physical removal of unbound tracer or a means for distinguishing only bound tracer. The presence of unbound tracer in the detection volume