Di-2-ANEPEQ (JPW 1114)
Di-2-ANEPEQ (JPW 1114)
Invitrogen™

Di-2-ANEPEQ (JPW 1114)

ANEP色素は、環境中の電位変化に反応して蛍光を発する分子です。これらは、周囲の電場の変化に反応して電子構造を変化させ、その結果として蛍光特性を変化させることで動作する高速応答プローブです。これらの光学的応答は十分に高速で、単一ニューロン、心臓細胞、無傷の脳などの励起性細胞における一過性(ミリ秒詳細を見る
製品番号(カタログ番号)数量
D6923
または、製品番号D-6923
5 mg
製品番号(カタログ番号) D6923
または、製品番号D-6923
価格(JPY)
67,300
온라인 행사
Ends: 26-Dec-2025
112,200
割引額 44,900 (40%)
Each
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数量:
5 mg
ANEP色素は、環境中の電位変化に反応して蛍光を発する分子です。これらは、周囲の電場の変化に反応して電子構造を変化させ、その結果として蛍光特性を変化させることで動作する高速応答プローブです。これらの光学的応答は十分に高速で、単一ニューロン、心臓細胞、無傷の脳などの励起性細胞における一過性(ミリ秒)の潜在的な変化を検出します。しかし、潜在的に依存する蛍光変化の大きさは小さいことが多く、高速応答プローブは通常、100 mV あたり 2–10 % の蛍光変化を示します。さらに、これらの色素は励起スペクトルに電位依存性のシフトを示すため、励起比測定を使用して膜電位の定量が可能です

カルシウム、カリウム、pH、膜電位インジケータの訴訟祭については、こちらを参照してください ›

電位感受性ANEP色素の仕様:
• モデルのリン脂質膜に結合したEx/Em最大値は、約465/635 nmです(ただし、スペクトル特性は環境に大きく依存します)
•膜に結合するまで非蛍光
•陽イオン分子;水溶性(di-2-ANEPEQは水溶性ANEP色素です)
•色素は、通常、マイクロインジェクションによって細胞に導入されます
• サブミリ秒の膜電位の変化を検出するのに適した高速応答プローブ


電位差プローブの応用
細胞膜は、通常、活性輸送プロセスによって維持されるK+、Na+、Cl–濃度勾配の結果として、膜貫通電位が約–70 mV(内部はマイナス)になります。電位差プローブは、これらのイオンの転座を間接的に検出する方法を提供します。

膜電位の増加と減少は、それぞれ膜の過分極と—脱分極と呼ばれ、神経インパルスの伝播、—筋収縮、細胞シグナル伝達、イオンチャネルゲーティングなど、多くの生理学的プロセスで中心的な役割を果たしています。電位差プローブは、これらのプロセスを研究するための重要なツールです。

ANEP色素をもっと見る
当社では、さまざまな形態のANEP色素を提供しています。これらのプローブの詳細については、「Molecular Probes ハンドブック」の「Fast-Response Probes」—セクション22.2™を参照してください。

研究用途にのみご使用ください。ヒトまたは動物の治療もしくは診断目的には使用できません。
研究用にのみ使用できます。診断用には使用いただけません。
仕様
検出法蛍光
数量5 mg
出荷条件室温
細胞内局在細胞膜&脂質
赤外線
使用対象 (装置)蛍光顕微鏡, マイクロプレートリーダー
製品タイプANEP色素
Unit SizeEach
組成および保存条件
室温で保存し、光から保護します。

よくあるご質問(FAQ)

I am seeing high background outside of my neuronal cells when using membrane potential indicators. What can I do to reduce background?

If you use our FluoVolt Membrane Potential Kit (Cat. No. F10488), the kit provides a background suppressor to reduce this problem. For other indicators, consider the use of BackDrop Background Suppressor (Cat no. R37603, B10511, and B10512).

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Cell Analysis Support Center.

What is the difference between fast and slow-response membrane potential probes?

Molecules that change their structure in response to the surrounding electric field can function as fast-response probes for the detection of transient (millisecond) potential changes. Slow-response dyes function by entering depolarized cells and binding to proteins or membranes. Increased depolarization results in additional dye influx and an increase in fluorescence, while hyperpolarization is indicated by a decrease in fluorescence. Fast-response probes are commonly used to image electrical activity from intact heart tissues or measure membrane potential changes in response to pharmacological stimuli. Slow-responding probes are often used to explore mitochondrial function and cell viability.

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What type of membrane potential indicators do you offer and how should I choose one for my experiment?

A membrane potential indicator selection guide can be found here (https://www.thermofisher.com/us/en/home/life-science/cell-analysis/cell-viability-and-regulation/ion-indicators/membrane-potential-indicators.html).

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引用および参考文献 (26)

引用および参考文献
Abstract
Dye screening and signal-to-noise ratio for retrogradely transported voltage-sensitive dyes.
Authors:Tsau Y, Wenner P, O'Donovan MJ, Cohen LB, Loew LM, Wuskell JP
Journal:J Neurosci Methods
PubMed ID:9007751
'Using a novel method for retrogradely labeling specific neuronal populations, we tested different styryl dyes in attempt to find dyes whose staining would be specific, rapid, and lead to large activity dependent signals. The dyes were injected into the ventral roots of the isolated chick spinal cord from embryos at ... More
Intrasarcomere [Ca2+] gradients and their spatio-temporal relation to Ca2+ sparks in rat cardiomyocytes.
Authors:Tanaka H, Sekine T, Kawanishi T, Nakamura R, Shigenobu K
Journal:J Physiol
PubMed ID:9490830
'1. Line-scan analyses of spontaneous Ca2+ sparks, non-propagating local rises in Ca2+ concentration, and the early phase of Ca2+ transients in cardiomyocytes were performed with a rapid-scanning laser confocal microscope (Nikon RCM8000) and fluo-3. 2. On electrical stimulation, points at which rise in Ca2+ began earliest were observed at regular ... More
Optical recording from cerebellar Purkinje cells using intracellularly injected voltage-sensitive dyes.
Authors:Kogan A, Ross WN, Zecevic D, Lasser-Ross N
Journal:Brain Res
PubMed ID:8624715
'We evaluated several techniques for their ability to record membrane potential changes with voltage-sensitive dyes introduced into CNS neurons in the brain slice preparation. Using a probe designed for intracellular application, JPW1114, we found that iontophoresis or pressure pulses could not push the lipophilic dye through electrodes whose resistance was ... More
Visual stimuli induce waves of electrical activity in turtle cortex.
Authors:Prechtl JC, Cohen LB, Pesaran B, Mitra PP, Kleinfeld D
Journal:Proc Natl Acad Sci U S A
PubMed ID:9207142
'The computations involved in the processing of a visual scene invariably involve the interactions among neurons throughout all of visual cortex. One hypothesis is that the timing of neuronal activity, as well as the amplitude of activity, provides a means to encode features of objects. The experimental data from studies ... More
Comparison of fluorescent voltage-sensitive dyes for multisite optical recording in hamster cerebral cortex by measurement of bicuculline-induced epileptiform events.
Authors:deBeer Zeiger J
Journal:Neuroimage
PubMed ID:9345545
'Two fluorescent voltage-sensitive dyes, RH795 and DI-2-ANEPPQ, were compared for in vivo multisite optical recording from the gustatory insular cortex of the golden Syrian hamster, the first reported use of DI-2-ANEPPQ in a mammalian brain preparation. The exposed cortex of the anesthetized hamster was stained with a 500 microM solution ... More