DH5α Competent Cells for Subcloning
DH5α Competent Cells for Subcloning
Thermo Scientific™

DH5α Competent Cells for Subcloning

サブクローニング用Thermo Scientific DH5αコンピテントセルは、プラスミドベクターへのルーチンサブクローニングに推奨される、化学的コンピテントE. coliセルです。サブクローニング用高効率セルは、cDNAライブラリの生成には適していません。φ80dlacZΔM15マーカーは、pUCまたは同等のベクターから得られたβ-galactosidase遺伝子のα相補性を提供し詳細を見る
製品番号(カタログ番号)数量
EC01114 x 500 μL
製品番号(カタログ番号) EC0111
価格(JPY)
9,700
Each
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数量:
4 x 500 μL
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サブクローニング用Thermo Scientific DH5αコンピテントセルは、プラスミドベクターへのルーチンサブクローニングに推奨される、化学的コンピテントE. coliセルです。サブクローニング用高効率セルは、cDNAライブラリの生成には適していません。φ80dlacZΔM15マーカーは、pUCまたは同等のベクターから得られたβ-galactosidase遺伝子のα相補性を提供し、Bluo-GalまたはX-Galを含む細菌寒天プレート上で青/白コロニースクリーニングを可能にします。

• 形質転換効率:>1x106 cfu/μg pUC19 DNA
•日常的なクローニング用途に適しています
•便利で経済的なパッケージ
•青/白コロニースクリーニングが可能な遺伝子マーカーを含みます

アプリケーション
サブクローニング用DH5αコンピテントセルは、標準的なDNAクローニングアプリケーションに適しています:
•PCRまたは制限消化反応後のDNAクローニング
•サブクローニング(親ベクターから目標ベクターへのDNAの転写)
•プラスミド単離

遺伝子型
F– φ80lacZΔ M15 Δ (lacZYA-argF) U169 recA1 endA1 hsdR17 (rK– mK+) phoA supE44 λ- thi–1 gyrA96 relA1
研究用途にのみご使用ください。診断目的には使用できません。
仕様
菌株または酵母株DH5α
青/白スクリーニング
細胞タイプケミカルコンピテント
メチル化DNAのクローニング不可
F'エピソームを含むF’エピソームが欠落しています
効率1x10^6 cfu/μg
使用対象(アプリケーション)クローニング
高スループット適合性ハイスループットに対応しません
製品ラインThermo Scientific
製品タイプコンピテントセル
増殖ccdBベクターccdBベクターの増殖には使用できません
数量4 x 500 μL
出荷条件ドライアイス
フォーマットチューブ
E. coli
Unit SizeEach
組成および保存条件
• 4 x サブクローニング用のDH5αコンピテントセル(500 µL)
• pUC19 DNA(50 µL)(100 pg/µL)

-80℃で保存してください。

よくあるご質問(FAQ)

Can I store my competent E. coli in liquid nitrogen?

We do not recommend storing competent E. coli strains in liquid nitrogen as the extreme temperature can be harmful to the cells. Also, the plastic storage vials are not intended to withstand the extreme temperature and may crack or break.

How should I store my competent E. coli?

We recommend storing our competent E. coli strains at -80°C. Storage at warmer temperatures, even for a brief period of time, will significantly decrease transformation efficiency.

I'm getting overgrowth of colonies. Why?

Ensure that you are using the correct antibiotic at the appropriate concentration. Additionally, make sure the antibiotic is not expired. If colonies exhibit unexpected morphologies, contamination could be a factor. Check your S.O.C. medium and LB growth medium.

I'm only getting white colonies, but none of the clones have an insert. What can I do?

Here are a few suggestions:

- Small fragments/linkers are cloning in to your vector instead of your insert; to correct this, gel-purify the insert before ligation
- Ensure that the correct concentrations of X-gal and/or IPTG (if vector contains the lacIq marker) are used
- If spreading X-gal and/or IPTG on your plate, allow sufficient time for the reagents to diffuse into the plate
- Incubate your plate for a longer period to ensure full color development

I'm getting no colonies at all on my plates. Can you help?

We recommend trying the following:
- Carry out the puc19 transformation control; this gives you information about the performance of the cells.
- Check plates for expiration and correct media used (LB/agar).
- Confirm that the correct antibiotic and concentration was used.