DH5α Competent Cells
DH5α Competent Cells
Thermo Scientific™

DH5α Competent Cells

Thermo Scientific DH5αコンピテントセルは、高効率な化学的コンピテントE. coliセルであり、プラスミド由来のベクターを用いた遺伝子バンクの構築やcDNAライブラリーの生成に最適です。φ80dlacZΔM15マーカーは、pUCまたは同等のベクターから得られたβ-galactosidase遺伝子のα相補性を提供し、Bluo-GalまたはX-Galを含む細菌寒天プレート上で青/白コロニースクリーニングを可能にします。DH5αセルにおけるRecA1変異およびendA1変異は詳細を見る
テクニカルサポートオーダーサポート
製品番号（カタログ番号）数量
EC011210 x 100 μL
製品番号（カタログ番号） EC0112
価格（JPY）
20,700
Each
お問い合わせください ›
数量:
10 x 100 μL
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Thermo Scientific DH5αコンピテントセルは、高効率な化学的コンピテントE. coliセルであり、プラスミド由来のベクターを用いた遺伝子バンクの構築やcDNAライブラリーの生成に最適です。φ80dlacZΔM15マーカーは、pUCまたは同等のベクターから得られたβ-galactosidase遺伝子のα相補性を提供し、Bluo-GalまたはX-Galを含む細菌寒天プレート上で青/白コロニースクリーニングを可能にします。DH5αセルにおけるRecA1変異およびendA1変異は、抽出されたプラスミドDNAのインサート安定性と品質を向上させます。

•高い形質転換効率：>1x109 cfu/μg pUC19 DNA
•日常およびハイスループットのクローニングアプリケーションに適しています
•青／白コロニースクリーニングを可能にする遺伝子マーカー
•便利な、バイアルパッケージごとに2反応
•S.O.C.Outgrowth培地を含みます。

アプリケーション
DH5αコンピテントセルは、高い形質転換効率を必要とするさまざまなアプリケーションに適しています。
•PCR から得られた効率的なDNAクローニング、cDNA生成反応
•recA1マーカーは形質転換が困難なDNAの作業を容易にします。
•プラスミド由来ベクターを使用したcDNAライブラリの作成に最適です。
•部位特異的変異誘発

遺伝子型
F– φ80lacZΔ M15 Δ (lacZYA-argF) U169 recA1 endA1 hsdR17 (rK– mK+) phoA supE44 λ- thi–1 gyrA96 relA1
研究用途にのみご使用ください。診断目的には使用できません。
仕様
菌株または酵母株DH5α
青／白スクリーニング可
細胞タイプケミカルコンピテント
メチル化DNAのクローニング不可
F'エピソームを含むF’エピソームが欠落しています
効率高効率（>1x10^9 cfu/μg pUC19 DNA）
使用対象（アプリケーション）クローニング
高スループット適合性ハイスループットに対応しません
ライブラリcDNA
製品ラインThermo Scientific
製品タイプコンピテントセル
増殖ccdBベクターccdBベクターの増殖には使用できません
数量10 x 100 μL
出荷条件ドライアイス
フォーマットチューブ
種E. coli
Unit SizeEach
組成および保存条件
• 10 x DH5αコンピテントセル（100 µL）
• pUC19 DNA（50 µL）（10 pg/µL）
• S.O.C.培地（5 mL）

-80℃で保存してください。

よくあるご質問（FAQ）

Can I store my competent E. coli in liquid nitrogen?

We do not recommend storing competent E. coli strains in liquid nitrogen as the extreme temperature can be harmful to the cells. Also, the plastic storage vials are not intended to withstand the extreme temperature and may crack or break.

How should I store my competent E. coli?

We recommend storing our competent E. coli strains at -80°C. Storage at warmer temperatures, even for a brief period of time, will significantly decrease transformation efficiency.

I'm getting overgrowth of colonies. Why?

Ensure that you are using the correct antibiotic at the appropriate concentration. Additionally, make sure the antibiotic is not expired. If colonies exhibit unexpected morphologies, contamination could be a factor. Check your S.O.C. medium and LB growth medium.

I'm only getting white colonies, but none of the clones have an insert. What can I do?

Here are a few suggestions:

- Small fragments/linkers are cloning in to your vector instead of your insert; to correct this, gel-purify the insert before ligation
- Ensure that the correct concentrations of X-gal and/or IPTG (if vector contains the lacIq marker) are used
- If spreading X-gal and/or IPTG on your plate, allow sufficient time for the reagents to diffuse into the plate
- Incubate your plate for a longer period to ensure full color development

I'm getting no colonies at all on my plates. Can you help?

We recommend trying the following:
- Carry out the puc19 transformation control; this gives you information about the performance of the cells.
- Check plates for expiration and correct media used (LB/agar).
- Confirm that the correct antibiotic and concentration was used.

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