Fluo-5N, Pentapotassium Salt, cell impermeant
Fluo-5N, Pentapotassium Salt, cell impermeant
Invitrogen™

Fluo-5N, Pentapotassium Salt, cell impermeant

標識カルシウム指示薬は、Ca2+と結合すると蛍光が増加する分子です。Fluo-5F、Fluo-5N、およびFluo-4ffは、より低いCa2+結合親和性を持つFluo-4の類似体で、Fluo-3およびFluo-4の応答を飽和させる1 µM~1 mMの範囲で細胞内のカルシウム濃度を検出するのに適しています。細胞には詳細を見る
製品番号(カタログ番号)数量
F14203
または、製品番号F-14203
500 μg
製品番号(カタログ番号) F14203
または、製品番号F-14203
価格(JPY)
71,100
Each
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数量:
500 μg
標識カルシウム指示薬は、Ca2+と結合すると蛍光が増加する分子です。Fluo-5F、Fluo-5N、およびFluo-4ffは、より低いCa2+結合親和性を持つFluo-4の類似体で、Fluo-3およびFluo-4の応答を飽和させる1 µM~1 mMの範囲で細胞内のカルシウム濃度を検出するのに適しています。細胞には、パッチピペット、マイクロインジェクション、または当社のInflux™飲作用性細胞ローディング試薬を使用して、これらインジケーターの細胞非透過性塩形態を物理的に添加できます。これらのインジケーターは、アルゴンイオンレーザー光源による488 nmの励起に対応しているため、共焦点顕微鏡、フローサイトメトリー、およびマイクロプレートスクリーニングの各アプリケーションで有用です。

カルシウム、カリウム、pH、膜電位インジケーターなどのイオンインジケーターの詳細をご覧ください›

カルシウムインジケーター(細胞不透過性塩)の仕様:
•ラベル(Ca2+–結合型のEx/EM):fluo-5N(494/516 nm)
• Ca2+結合時の蛍光強度の増加:>
バッファー中のCa2+に対する100倍のKd:約90 μM
• Ca2+結合時に、波長のわずかな変化を伴いながら、蛍光強度が増加


TPENを使用した重金属陽イオンの制御
さらに、BAPTAベースのインジケーターはさまざまな重金属陽イオン(Mn2+、Zn2+、Pb2+など)に結合し、Ca2+よりもはるかに高い親和性を示します。これらのイオンの存在によって引き起こされるカルシウム測定値への摂動は、重金属選択性キレート剤であるTPENを使用して制御できます。

蛍光カルシウムインジケーターの幅広い選択肢
さまざまな実験シナリオで使用できる多様なMolecular Probes™カルシウムインジケーターをご用意しています。詳細については、Molecular Probesハンドブックの「可視光で励起された蛍光Ca2+インジケータ」—セクション19.3™を参照してください。

UV-exitable Ca2+指示薬、タンパク質ベースCa2+指示薬、Ca2+指示薬のコンジュゲート用、その他の金属イオン(Mg2+、Zn2+)の蛍光ベースのインジケータ については、Molecular Probesハンドブック™のCa 2+、Mg 2+、Zn 2+およびその他の金属イオンのインジケータ—第19章を参照してください。

研究用途にのみご使用ください。ヒトまたは動物の治療もしくは診断目的には使用できません。
研究用にのみ使用できます。診断用には使用いただけません。
仕様
検出法蛍光
染色剤タイプ蛍光色素ベース
数量500 μg
出荷条件室温
使用対象 (装置)共焦点顕微鏡, 蛍光顕微鏡, ハイコンテント装置, HTSリーダー, マイクロプレートリーダー, 蛍光イメージャー
製品タイプカルシウムインジケーター
Unit SizeEach
組成および保存条件
フリーザー(-5℃~-30℃)に保存し、遮光してください。

引用および参考文献 (7)

引用および参考文献
Abstract
Rational design of protein-based MRI contrast agents.
Authors:Yang JJ, Yang J, Wei L, Zurkiya O, Yang W, Li S, Zou J, Zhou Y, Maniccia AL, Mao H, Zhao F, Malchow R, Zhao S, Johnson J, Hu X, Krogstad E, Liu ZR,
Journal:J Am Chem Soc
PubMed ID:18576649
We describe the rational design of a novel class of magnetic resonance imaging (MRI) contrast agents with engineered proteins (CAi.CD2, i = 1, 2,..., 9) chelated with gadolinium. The design of protein-based contrast agents involves creating high-coordination Gd(3+) binding sites in a stable host protein using amino acid residues and ... More
Concurrent maturation of inner hair cell synaptic Ca2+ influx and auditory nerve spontaneous activity around hearing onset in mice.
Authors:Wong AB, Jing Z, Rutherford MA, Frank T, Strenzke N, Moser T,
Journal:
PubMed ID:23804089
Hearing over a wide range of sound intensities is thought to require complementary coding by functionally diverse spiral ganglion neurons (SGNs), each changing activity only over a subrange. The foundations of SGN diversity are not well understood but likely include differences among their inputs: the presynaptic active zones (AZs) of ... More
Low-affinity Ca2+ indicators compared in measurements of skeletal muscle Ca2+ transients.
Authors:Hollingworth S, Gee KR, Baylor SM,
Journal:Biophys J
PubMed ID:19804716
The low-affinity fluorescent Ca(2+) indicators OGB-5N, Fluo-5N, fura-5N, Rhod-5N, and Mag-fluo-4 were evaluated for their ability to accurately track the kinetics of the spatially averaged free Ca(2+) transient (Delta[Ca(2+)]) in skeletal muscle. Frog single fibers were injected with one of the above indicators and, usually, furaptra (previously shown to rapidly ... More
Tuning of synapse number, structure and function in the cochlea.
Authors:Meyer AC, Frank T, Khimich D, Hoch G, Riedel D, Chapochnikov NM, Yarin YM, Harke B, Hell SW, Egner A, Moser T,
Journal:Nat Neurosci
PubMed ID:19270686
Cochlear inner hair cells (IHCs) transmit acoustic information to spiral ganglion neurons through ribbon synapses. Here we have used morphological and physiological techniques to ask whether synaptic mechanisms differ along the tonotopic axis and within IHCs in the mouse cochlea. We show that the number of ribbon synapses per IHC ... More
Confocal imaging of CICR events from isolated and immobilized SR vesicles.
Authors:Shannon TR, Bers DM, Blatter LA, Niggli E
Journal:Cell Calcium
PubMed ID:16122794
The Ca2+ concentration inside the sarcoplasmic reticulum ([Ca2+]SR) is a difficult parameter to measure in ventricular cardiac myocytes. Interference from Ca2+-sensitive dye loading into cellular compartments other than the SR interferes with free Ca2+ measurement. In addition, the composition of the cytosol surrounding the SR in intact cells cannot be ... More