TA Cloning™ Kit, Dual Promoter, with pCR™II Vector, without competent cells
TA Cloning™ Kit, Dual Promoter, with pCR™II Vector, without competent cells
Invitrogen™

TA Cloning™ Kit, Dual Promoter, with pCR™II Vector, without competent cells

pCR™IIベクター付きTAクローニング™キットデュアルプロモーターは、Taq増幅PCR産物をプラスミドベクターに直接挿入するための迅速なワンステップクローニング戦略を実現します。pCR™IIベクターのT7プロモーターおよびSp6プロモーターは、インサートの in vitro 転写によりセンスまたはアンチセンス転写産物を生成することが可能です。TAクローニングキットデュアルプロモーターは、pCR™IIクローニングベクターとExpressLink T4詳細を見る
製品番号(カタログ番号)反応数
K20704040反応
K20702020反応
製品番号(カタログ番号) K207040
価格(JPY)
52,900
Online offer
Ends: 26-Dec-2025
88,200
割引額 35,300 (40%)
Each
お問い合わせください ›
反応数:
40反応
pCR™IIベクター付きTAクローニング™キットデュアルプロモーターは、Taq増幅PCR産物をプラスミドベクターに直接挿入するための迅速なワンステップクローニング戦略を実現します。pCR™IIベクターのT7プロモーターおよびSp6プロモーターは、インサートの in vitro 転写によりセンスまたはアンチセンス転写産物を生成することが可能です。TAクローニングキットデュアルプロモーターは、pCR™IIクローニングベクターとExpressLink T4 DNAリガーゼをキャンペーン情報使用して、15分間の室温でのライゲーションステップでライゲーション産物を生成します。反応によって通常は、80%以上のインサートを含む組換えが生成されます。

TAクローニング™キットデュアルプロモーターの特長:
高速で便利— 室温での15分間のライゲーション
効率的—青/白スクリーニングおよび正しいインサートを使用した80%を超えるクローン
柔軟性—カナマイシン耐性またはアンピシリン耐性を選択できるため、抗生物質の選択が柔軟です
手間のかからない— PCR産物の酵素的修飾を排除します
合理化— 制限部位を含むPCRプライマーを使用する必要はありません

pCR™IIベクターの特長:
Taq増幅PCR産物の直接ライゲーションのための3'-Tオーバーハング
in vitro RNA転写およびシーケンシング用のT7プロモーターおよびSp6プロモーター
• インサート配列を簡単に切り出すためのEcoR I部位に隣接する多用途ポリリンカーシーケンス用の Taq 増幅PCR産物 T7 プロモーターの直接ライゲーションに使用
• シーケンシング用のM13フォワード/リバースプライマー部位

TAクローニング™の仕組み
Taqポリメラーゼにはテンプレートに依存しない活性があり、単一のデオキシアデノシン(A)をPCR産物の3'末端に付加します。このキットで提供される線形化ベクターには、単一の3'デオキシアデノシン(T)残基があります。PCRインサートでベクターによって効率的にライゲーションできます

キット構成
TAクローニング™キットは、さまざまな構成で提供されます:One Shot™ INVFのケミカルコンピテント大腸菌あり(K2050-01およびK2050-40)、One Shot™ TOP10Fのケミカルコンピテント大腸菌あり(K2060-01およびK2060-40)、コンピテントセルなし(K2750-20およびK2750-40)、および20-と40-の反応キット。
研究用にのみ使用できます。診断用には使用いただけません。
仕様
菌株または酵母株含まれない
クローニング法TAクローニング
使用対象(アプリケーション)PCRクローニング
反応数40反応
製品ラインTAクローニング
製品タイプCloning Kit
プロモーターT7、SP6
数量40 rxns
ベクターpCRII
フォーマットキット
Unit SizeEach
組成および保存条件
このキットには、線形化pCR™IIベクター、ExpressLink™ T4 DNAリガーゼ、5X ExpressLink™ T4 DNAライゲーションバッファー、dNTP、10X PCRバッファー、滅菌水、コントロールが含まれています。

すべてのコンポーネントを-20°Cで保管してください。すべての試薬は、適切な保管条件であれば、6カ月間安定していることが保証されています。

よくあるご質問(FAQ)

How do you recommend that I prepare my DNA for successful electroporation of E. coli?

For best results, DNA used in electroporation must have a very low ionic strength and a high resistance. A high-salt DNA sample may be purified by either ethanol precipitation or dialysis.

The following suggested protocols are for ligation reactions of 20ul. The volumes may be adjusted to suit the amount being prepared.

Purifying DNA by Precipitation: Add 5 to 10 ug of tRNA to a 20ul ligation reaction. Adjust the solution to 2.5 M in ammonium acetate using a 7.5 M ammonium acetate stock solution. Mix well. Add two volumes of 100 % ethanol. Centrifuge at 12,000 x g for 15 min at 4C. Remove the supernatant with a micropipet. Wash the pellet with 60ul of 70% ethanol. Centrifuge at 12,000 x g for 15 min at room temperature. Remove the supernatant with a micropipet. Air dry the pellet. Resuspend the DNA in 0.5X TE buffer [5 mM Tris-HCl, 0.5 mM EDTA (pH 7.5)] to a concentration of 10 ng/ul of DNA. Use 1 ul per transformation of 20 ul of cell suspension.

Purifying DNA by Microdialysis: Float a Millipore filter, type VS 0.025 um, on a pool of 0.5X TE buffer (or 10% glycerol) in a small plastic container. Place 20ul of the DNA solution as a drop on top of the filter. Incubate at room temperature for several hours. Withdraw the DNA drop from the filter and place it in a polypropylene microcentrifuge tube. Use 1ul of this DNA for each electrotransformation reaction.

Have you compared in vitro transcription levels between SP6 and T7 promoters in your pCRII vectors?

No, we have not done in-house comparisons of transcription levels. It is widely known though that T7 polymerase produces more RNA than SP6 (on the order of 10-fold higher).

When should DMSO, formamide, glycerol and other cosolvents be used in PCR?

Cosolvents may be used when there is a failure of amplification, either because the template contains stable hairpin-loops or the region of amplification is GC-rich. Keep in mind that all of these cosolvents have the effect of lowering enzyme activity, which will decrease amplification yield. For more information see P Landre et al (1995). The use of co-solvents to enhance amplification by the polymerase chain reaction. In: PCR Strategies, edited by MA Innis, DH Gelfand, JJ Sninsky. Academic Press, San Diego, CA, pp. 3-16.

Additionally, when amplifying very long PCR fragments (greater than 5 kb) the use of cosolvents is often recommended to help compensate for the increased melting temperature of these fragments.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our PCR and cDNA Synthesis Support Center.